DB51 T 875-2009 水稻稻瘟病菌对稻瘟灵抗药性室内测定技术规程.pdf

65.020.20 B16 DB51 四川省地方标准 DB51/T 8752009 水稻稻瘟病菌对稻瘟灵抗药性室内测定 技术规程 水稻稻瘟病菌对稻瘟灵抗药性室内测定 技术规程 Rule of Resistant Assessment of Pyricularia grisea（Cooke）Sacc. to Isoprothiolane in the Laboratory 2009-03-05 发布 2009-03-10 实施 四川省质量技术监督局 四川省质量技术监督局 发布 发布 49 DB51/T 8752009 I 目 次 前言 II 1 范围. 1 2 规范性引用文件. 1 3.原理.1 4 术语和定义. 1 5 试剂与材料. 3 6 仪器与用具 3 7 测定方法 4 8 数据统计与分析 4 9 原始记录和报告的形成及归档 5 附录 A6 附录 B6 附录 C7 DB51/T 8752009 II 前 言 本标准附录A、附录B是规范性附录，附录C是资料性附录。 本标准由四川省农业厅提出并归口。 本标准由四川省质量技术监督局批准。 本标准起草单位：四川省农业科学院植物保护研究所、四川省农业厅植物保护站。 本标准主要起草人：席亚东、彭丽年、刘波微、蔡方凯、彭化贤 DB51/T 8752009 1 水稻稻瘟病菌对稻瘟灵抗药性室内测定技术规程 1 范围 本标准规定了水稻稻瘟病菌(Pyricularia grisea (Cooke)Sacc. )对稻瘟灵抗药性室内测定技术方法,包 括水稻稻瘟病菌的室内分离和抗药性评价。 本标准适用于水稻稻瘟病病原菌室内对稻瘟灵抗药性评价。 2 规范性引用文件 下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注明日期的引用文件，其随后所 有的修改条款（不包括勘误的内容）或修改版均不适用于本标准，然而鼓励根据本标准达成协议的各方 研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件，其最新版本均适用于本标准。 本文没有规范性引用文件。 3 原理 稻瘟灵能够抑制稻瘟病菌生长,起到预防与治疗作用，一般采用生长速率法测定稻瘟病菌对稻瘟灵 的抗药性。生长速率法的原理是将不同浓度的药液与融化的培养基混合，制成带药培养基平板，在平板 上接种病原菌，以病菌生长速率的快慢来判定药剂毒力大小。 4 术语和定义 以下术语和定义适用于本标准。 4.1 水稻稻瘟病 Rice Blast 由无性世代为半知菌亚门梨孢属（Pyricularia grisea (Cooke)Sacc.）、有性世代为子囊菌亚门真菌 Magnaporthe属（Magnaporthe grisea （Hebert）Barr.）所引起的水稻病害。 2.1 4.2 生长速率法 Growth rate method 指测定菌丝生长快慢的方法，通常是用在单位时间内菌丝在适宜的平板培养基上在适宜的条件下 的生长量来表示。 药剂处理菌落直径菌块直径 菌丝生长抑制率（%）= (1 )100 对照菌落直径菌块直径 DB51/T 8752009 2 4.3 2.2 分离菌 Isolate 2.3 采用人工方法分离获得的病原物的纯培养菌。 2.4 4.4 原药 Technical grade material 未经加工的农药原产物。 4.5 2.5 药基培养基 Medicine medium 将实验药剂与培养基按一定比例混合，制成一种均匀的含有一定剂量药剂的培养基。 4.6 剂量反应曲线 Dosage reaction curve 反映药剂对病菌抑制效果的反应曲线，常用公式表示: Y = a + bx 其中:Y为抑制效果机率值,x为浓 度对数，a、b分别为常数。 4.7 抑制中浓度（EC50）Median effective concentration（EC50） 指在试验时间内，药剂抑制 50%菌丝生长或孢子萌发所需的药剂有效浓度。 4.8 敏感基线 Susceptible toxicity baseline 指对某种药剂对害虫或病原菌敏感品系毒力回归线的测定， 敏感基线是比较抗药性有无和抗药性水 平高低的标准。 4.9 2.6 敏感菌株 susceptible strain 在未接触过某种药剂的地区采集或在室内经多代隔离培养获得的菌株，即为对该药剂的敏感菌株。 4.10 抗性菌株 Resistant strain 一般指长期施用杀菌剂，出现对某种药物反应敏感性降低的病原菌，即为对该药剂的抗性菌株。 5 试剂与材料 除非另有说明，在本标准中仅使用确认的分析纯试剂或蒸馏水或去离子水。 5.1 试剂 DB51/T 8752009 3 可溶性淀粉 (C6H10O5)n, Starch soluble 酵母粉 Yeast extract powder 琼脂 Agar 蒸馏水 Distilled water 丙酮：分析纯（AR） 稻瘟灵原药：有效成份90%。 5.2 药液配制 5.2.1 母液配制： 称取一定的原药(精确至0.0001 g)，置于容量瓶中，用溶剂溶解稀释至刻度定容，摇匀备用。 5.2.2 供试药液浓度： 根据实验设计配制5 个6 个药液质量浓度梯度，推荐浓度梯度5个：40 g/mL、20 g /mL、10 g/mL、5 g/mL、2.5 g/mL。 试验药剂计算方法及母液取用方法见附录A。 5.3 药基培养基配制 根据试验要求，将配制好的稻瘟灵供试药液按浓度梯度分别和水稻培养基混合（13.5mL 培养基中加入 1.5mL 药液的药基培养基），最终分别配成 40 g/mL、20 g/mL、10 g/mL、5 g/mL、2.5 g/mL 的药基 培养基。 6 仪器及用具 超净工作台、生化恒温箱、冰箱、电子天平、高压消毒锅。 电炉、微量可调移液器（200 L1000 L、1 mL5 mL）、酒精灯、吸管、三角瓶、烧杯、容量 瓶、培养皿（直径为 90 mm）、刻度试管、手术刀或剪刀、镊子、接菌针、打孔器等。 7 测定方法 7.1 稻瘟病菌样品的采集 在水稻乳熟期腊熟期，在稻瘟病发生田里采集带有穗颈瘟的稻秆，装入纸质袋内，自然干燥，记 载采集地点、时间、品种名称和采集人。稻瘟病穗颈瘟田间症状见附录C。 7. 2 稻瘟病菌的分离和培养 稻瘟病病原菌必须是从当年采集样品中分离获得的分离物。 用清水将病稻秆表面洗净， 放入培养皿 内保湿培养 12 h24 h，保湿温度 26 1 ，待从病斑上长出分生孢子梗和分生孢子后，在超净工 作台上，用镊子将稻杆轻轻拿出，在装有培养基的培养皿上方轻轻抖动，连续在 4 个5 个培养皿上抖 DB51/T 8752009 4 动，将接有分生孢子的培养皿置于 26 1 的生化恒温箱内培养 24 h，再镜检，挑出单孢子萌发长 出的菌丝于试管中，在 26 1 的恒温箱中培养，该菌即为稻瘟病的单孢子菌种。待长出菌落后移 至到平板稻瘟病菌培养基中培养 7 d 备用。稻瘟病菌培养基配置方法见附录 B。 7.3 抗性测定 采用生长速率法测定，用灭菌的打孔器将菌龄相同、培养7d的平板菌边缘打成直径为5 mm的菌块， 用接菌针挑取菌块，菌面向下置于不同浓度梯度的平板药基培养基中心，每皿1块，置于恒温箱（26 1 ）内培养，每个处理重复3次，以加入无菌水的培养基为空白对照。培养7d后，用十字交叉法测 量菌落生长直径 (mm)，计算菌丝生长抑制率。 8 数据统计与分析 8.1 计算方法及统计分析 用十字交叉法测量菌落直径的平均值(mm)按依以下公式算出生长抑制率： 药剂处理菌落直径菌块直径 菌丝生长抑制率（%）= (1 )100 对照菌落直径菌块直径 将菌丝生长抑制率换算成抑制效果机率值(Y) , 药剂浓度换算成浓度对数(X)。 按浓度对数与机率值 回归法求得供试药剂对病原菌的剂量反应曲线 Y = a + bx , 并由剂量反应曲线计算试验药剂对病原菌 的抑制中浓度EC50。 8.2 敏感基线的确立 测定大量菌株的EC50，根据EC50值绘出菌株敏感性频率正态分布曲线，第一个正态分布曲线的中 值即稻瘟病菌对稻瘟灵的敏感基线。 8.3 结果判定 8.3.1 抗性水平划分 抗性水平供试菌株EC50/敏感基线。抗性水平1为敏感菌株；110为高抗水平。 8.2.2 抗性评价 根据抗性水平将参试菌株划分为敏感菌株和抗性菌株。 再根据抗性菌株在群体中出现频率计算出抗 性菌株频率。抗性菌株频率 = 抗性菌株/供试菌株100。 9 原始记录和报告的形成及归档 建立稻瘟病菌抗药性监测数据库，将测定的所有原始数据及计算结果按时间、地点建立档案，长期 保存。 DB51/T 8752009 5 附录 A （规范性附录） 试验药剂计算方法 原药取用量X1 (g)按式(1)计算: CV110-6 X1= P (1) 式中： X1原药取用量，单位mL； C母液质量浓度，单位g/mL； V1母液体积，单位mL； P原药浓度（有效成份），单位%。 母液取用量X2(g/mL)按式(2)计算: AV210-6 X2= C .(2) 式中： X2 供试药液质量浓度，单位g/mL； C 母液质量浓度，单位g/mL； V2药基培养基体积，单位mL A 试验浓度，单位g/mL。 DB51/T 8752009 6 附录 B （规范性附录） 稻瘟病菌培养基配制方法 2.7 将 20g 琼脂条置于 1000mL 无离子水中，煮沸 20min 后待琼脂条完全溶化，经三层纱布过滤 后，分别加入可溶性淀粉 10g、酵母粉 2g，待完全溶解，再将液体定容至 1000mL，用 pH 试纸测定其 pH，如果培养