IPTG诱导蛋白质表达实验步骤总结_第1页
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IPTG诱导蛋白质表达实验步骤总结_第3页
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文档简介

1、实验总结IPTG 诱导表达蛋白15-11-3配固体培养基和液体培养基,灭菌。配Binding Buffer和脱盐液各500ml。在400ml体积时调节溶液 pH 值至 7.4,定容后转移到试剂瓶中。溶液使用前要抽滤(滤除溶液 内的气泡和不溶性杂质)。倒板:(5 个灭菌的培养皿)微波加热溶解固体培养基(每次加热30s,待有沸腾的迹象时, 减少加热的时间)。超净台操作,以1 1000的比例(1ml培养基1讥抗生素)向 培养基中加入Kan+抗生素(50mg/ml),摇匀。倒板。培养皿放置在超净台上凝固,凝固后将培养皿倒着放入培养箱 中。15-11-4热转化:(将质粒导入大肠杆菌中)提前将大肠杆菌(冰

2、上融化)和质粒拿出来融化,混合(冰上 操作)后冰上放置 30min。42C热水浴1min (超过90s会损伤细菌),取出后立即放在冰 上冷却23min,加入lmlSOC培养基。摇床上摇45min,150rpm, 37C。(使菌体复苏)离心,3000rpm, 3min。涂板:取200pl上述液体,喷到板上,用玻璃涂布棒涂匀,放 入培养箱中30min晾干后倒着放置。(1216h)15-11-5配IPTG (0.2g/ml),用灭菌水,超净台操作。挑单克隆:(将细菌放入培养液中,以便进行扩大培养和后续实验)提前准备好几支装有3ml培养基的试管,每管加入3ul Kan+ 抗生素(50mg/ml),塞好

3、塞子,试管倾斜,是抗生素溶入培养液中。(塞子打开前和塞好后都要在酒精灯上过火灭菌)。小镊子过火灭菌后,夹取一个枪头,在培养皿上挑一个单个的 菌落,轻轻划过。将带有菌落的枪头放入试管中,塞好塞子 【试管中培养基液澄清】将试管放在摇床中培养一晚,37C,250rpm。(尽量不超过12h) 【试管中培养基液变混浊】 注意:操作尽量在靠近酒精灯的地方进行。15-11-6 扩大培养、诱导表达以(抗生素:培养基)1:1000的比例向培养基中加入Kan+抗生 素,摇匀后再加入(每100ml培养基)1ml单克隆溶液,摇匀。摇床上放置2.5h,37C,180rpm。以48pl IPTG/100ml培养基的比例加

4、入IPTG诱导,移去牛皮 纸,恒温摇床上摇6h,3OC,180rpm。冰上放置一晚(抑制细胞生长 速率,有利于蛋白质充分折叠)15-11-6 离心收集细菌:将培养液倒入50ml离心管中,8000rpm,离心5min, 弃上清。沉淀加水冲洗混匀,再离心,弃上清。加 PBS 冲洗混匀, 离心,弃上清。加PBS混匀,将溶液移入PU管中,-20C保存。 15-11-7破碎、离心细胞4ml细胞液用超声破碎34次(探头不能碰到管底和管壁,且 离管底1cm左右,47ml),至溶液透明。将溶液分装到15ml离心管中,(10000rpm,4C,1015min) 离心 23 次至没有白色沉淀。蛋白质纯化脱盐离心后得到的上清液用针筒抽取过膜,先后用镍柱纯化、脱盐 柱脱盐(柱子不能干,不能有气泡)。两者也可同时进行镍柱:水洗Bind

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