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文档简介

WESTERNBLOTTING过程图解,图中绿色的是夹玻璃片的架子,玻璃板对齐后放入架中,把两侧的夹子卡紧。要使短玻璃靠外,长玻璃靠内。,然后垂直卡在架子上准备灌胶。操作时要使两玻璃对齐,以免漏胶。图示两块玻璃板放在一个架子上。,配10分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌胶时,可用10ml枪吸取5ml胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。然后胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。(灌胶时开始可快一些,胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才不会有气泡。加水液封时要很慢,否则胶会被冲变型。),当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了。再等3min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。按前面方法配4的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。,均匀插入梳子,梳子已经插好。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。,浓缩胶干后,用手拿住梳子的两边均匀用力,拔起梳子,将玻璃板从夹子上取下,用水冲一下,将玻璃板放入电泳槽中。小玻璃板面向内,大玻璃板面向外,插入另一块玻璃板,也是小玻璃板面向内,大玻璃板面向外。若只跑一块胶,那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外,两块玻璃板都放好后夹紧(拇指按下夹子),放入电泳槽中,向内槽中加电泳缓冲液,如果不漏,在向外槽中加,如果漏,就要重新把玻板查好,使内外不交通。电泳液至少要漫过内侧的小玻璃板。,测完蛋白含量后,所有蛋白样品调至等浓度后上样。取出上样样品至0.5ml离心管中,加入5SDS上样缓冲液至终浓度为1。(上样总体积一般不超过15l,加样孔的最大限度可加20l样品。)上样前要将样品于沸水中煮5min使蛋白变性。加足够的电泳液后开始准备上样。用微量进样器贴壁吸取样品,将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。(加样太快可使样品冲出加样孔,若有气泡也可能使样品溢出。加入下一个样品时,进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤3次,以免交叉污染,电泳时间一般1-2h,电压为100V较好,也可用60V。电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳。,取出转移槽,2019/12/14,19,可编辑,取下玻璃板,两块玻璃板都已经取下,要先将玻璃板撬掉才可剥胶,撬的时候动作要轻,要在两个边上轻轻的反复撬。撬一会儿玻璃板便开始松动,直到撬去玻板。(撬时一定要小心,玻板很易裂。),将浓缩胶(浓缩胶影响操作)和分离胶上不用的部分切去,在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和浸过的膜,将夹子打开使白的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫,用玻棒来回擀几遍以擀走里面的气泡。,在垫子上垫三层滤纸(可三张纸先叠在一起在垫于垫子上),一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。依次加膜、加胶,再在膜上盖3张滤纸并除去气泡。,最后盖上另一个海绵垫,擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行,要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触,接触后会发生短路。转移液含甲醇,操作时要戴手套,实验室要开门以使空气流通。,合起夹子,将夹子放入转移槽中,要使夹的黑面对槽的黑面,夹的白面对槽的红面。,电转移时会产热,在槽的一边放一块冰来降温。,加上转移缓冲液,盖上盖子,放入乘有水的水槽中,水槽中加冰袋,电转移200mA2-3h后,打开盖子,取出夹子,打开夹子,取出膜,如果所用marker是预染marker,可见marker已经转移到膜上,如果不是预染marker,可以把膜转完后将膜用1丽春红染液染5min,于脱色摇床上摇,然后用水冲洗掉没染上的染液就可看到膜上的蛋白。将膜晾干备用。,将膜用TBS从下向上浸湿后,移至含有封闭液的平皿中,室温下脱色摇床上摇动封闭1h。,按所需稀释浓度滴加一抗(直接加在封闭液里)4过夜或373h。

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