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文档简介

1、转基因小鼠的鉴定、 剪鼠尾1. 剪鼠尾的时间 当新生的小鼠年龄达到两到三周(耳朵已经长开)时剪鼠 尾较好,此时鼠尾剪起来比较容易且小鼠的生命力比较强。2. 分辨小鼠的年龄a当小鼠整个身体较红且腹部无奶时,此小鼠当天出生或前一晚出生; b当小鼠腹部有奶(腹部有一小团白色物质),此小鼠出生23 天; c当小鼠背部长出皮毛时,此小鼠出生 34天;d当小鼠毛长全,但眼未开时,此小鼠出生 10天左右;e当小鼠眼刚开,耳未开时,此小鼠出生 12天左右;f当小鼠耳刚开时,此小鼠出生14天左右。3. 剪鼠尾后对小鼠的标记 :打耳孔法二、从鼠尾中提取DNA采用鼠尾基因组DNA提取试剂盒(康为世纪:CW2094)

2、提取DNA,操作如 下:1. 剪取小鼠长度为的尾巴,放入灭菌后的离心管中,加入180卩L Buffer GTT震荡混匀。2. 加入20卩L proteinase ,涡旋震荡,彻底混匀。3. 置于56C水浴,直到组织溶液完全清澈,一般需消化6-8h,赋予过程中涡旋 震荡,使样品均匀分离。1) 如果赋予和涡旋震荡后仍然有胶状物质,必要时过夜消化再加入20 d protei nase K消化,不会影响后续操作。2)如需去除RNA,可在上述步骤完成后,加入 4浓度为100mg/d的 RNase A溶液,震荡混匀,室温放置 5-10min。4.14000rpm离心1min,以消除未消化的类似于鼠毛等组织

3、,将上清转移到一个新的灭过菌的离心管中。5. 加入200 ilBuffer GL ,涡旋震荡,充分混匀,加入 200 d无水乙醇,涡旋振荡,充分混匀,短暂离心,使管壁上的溶液收集到管底。1)加入 Buffer GL 和无水乙醇后要立即涡旋震荡混匀。2)如果多个样品一起操作, Buffer GL 和无水乙醇可以等比例混匀后一起 加入样品。3)加入 Buffer GL 和无水乙醇后可能会产生白色沉淀, 不会影响后续操作。6. 将步骤 5 中所得到的溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱中, 若以此不能 加完溶液,可分多次转入。lOOOOrpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将 吸附柱重新放回收集管中

4、。7. 向吸附柱中加入500 pl Buffer GW1 (使用前检查是否已加无水乙醇),10000 rpm离心1mi n,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。8. 向吸附柱中加入 500 pl Buffer GW2 (使用前检查是否已加无水乙醇),10000 rpm离心1mi n,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。如需 进一步提高 DNA 纯度,可重复步骤 8。9.12000rpm离心2min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱置于室温数分钟,以 彻底晾干。注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续 的酶促反应(酶切,PCR等)。10.将吸附柱置于一个

5、新的灭过菌的离心管中,向吸附柱的中间部位悬空加入50-200 p Buffer GE 或灭菌水,室温放置 2-5min,10000rpm 离心 1min,收 集DNA溶液,-20 C保存DNA。1) 如果下游实验对PH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱,洗脱液的PH 值对洗脱效率有很大影响,若用水作洗脱液应保证其 PH 值在直接, PH 值 低于时洗脱效率不高。2)离心前室温孵育 5min 可增加产量。3)用另外的50-200 p L Buffer GE或灭菌水再次洗脱可以增加产量。4)如果需要提高 DNA 的终浓度,可以将步骤 10所得的 DNA 洗脱液重新 加至吸附膜上,重复步骤10;若洗

6、脱体积小于200pL,可以增加DNA的 终浓度,但可能会减少总产量。三、PCRPCR程序设定:1=94.0Tfor 5:002=94.0Tfor 1:003=59.0Tfor 0:504=72.0Tfor 1:005=Goto 22times6=94Tfor0:507=58Tfor 0:508= 72T for 1:009= Goto 62times10=94.0Tfor 0:5011=56.0Tfor 0:5012=72.0Tfor 1:0013= GotolO 32times14= 72OC for 10:0015= 4.0C for 5:0016= END 目前实验室的双转基因小鼠 AD

7、 体系采用:PCR反应的体系(12 pl): APPPrimer APP-1pPrimer APP-2plddH2O2plmix( CW0682)6plDNA1 plPCR反应的体系(12 p): PS1Primer PS1-1plPrimer PS1-2pl内参 -11 pl内参-21plmix( CW0682) 6plDNA1 pl先在的EP管中加入总的体系再平均分装入各个 PCR管中(一般多加两小管 的量),将移液器调到总量的1/3到1/2体积在EP管中缓慢抽吸若干次(尽量避 免产生气泡)以便Taq酶混合均匀,最后再在各 PCR管中依次加入DNA样品。引物处理方法: 引物在安基生物有限公司合成后, EP 管上会有标记,一般为 x nmol,使用前先用12000rpm离心1min,加入10x pddH2O,涡旋振动混匀, 微型离心机离心,即可得到100 的母液,取10 p的母液,用ddH2O稀释10 倍,即加入90 p,混匀后即可得到10側 的引物工作液。四、 电泳1配胶:鉴定用的胶板有大、 中、小3种,分别用的梳子为 50、25、11齿。 分别用的*TBE的量为90ml、45ml、25ml。用的琼脂糖凝胶。2. 点样:12 p的DNA,Marker加5P。点样时注意逐个点样,不要点错, 最好把

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