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DNA体外重组与基因转移第1页/共66页基因工程的操作过程C转化子的筛选和鉴定(检)B重组DNA分子的转化和扩增(转、增)ADNA的体外重组(切、接)第2页/共66页基因工程的操作过程切接转增检第3页/共66页ADNA的体外重组(切与接)基因工程的操作过程同种内切酶生产的粘性末端的连接同尾酶生产的粘性末端的连接不同粘性末端的连接粘性末端的更换人工粘性末端的连接重组率第4页/共66页同种内切酶生产的粘性末端的连接5'

5'GAATTCCTTAAGGAATTCCTTAAGEcoRI5'GCTTAAAATTCG5'

5'

GCTTAA

5'5'

AATTCG5'

退火GCTTAAAATTCG5'

GCTTAA

5'

AATTCGGCTTAAAATTCG5'

GCTTAA

5'

AATTCGT4-DNAligaseGAATTCCTTAAG5'

5'GAATTCCTTAAGGAATTCCTTAAG5'

5'GAATTCCTTAAG第5页/共66页同尾酶生产的粘性末端的连接BamHI5'

5'GGATCCCCTAGGGGATCCCCTAGG5'GCCTAGGATCCG5'

5'

TACTAG

5'5'

GATCAT5'

退火GCCTAGGATCCG5'

TACTAG

5'

GATCATT4-DNAligaseTGATCCACTAGG5'

5'GGATCACCTAGT5'

TGATCAACTAGT5'

BclIGCCTAGGATCCG5'

TACTAG

5'

GATCATTGATCCACTAGG5'

5'GGATCACCTAGT第6页/共66页不同粘性末端的连接BamHI5'

5'GGATCCCCTAGGGGATCCCCTAGG5'GCCTAGGATCCG5'

5'

CTGCAG5'

GACGTC3'

T4-DNAligaseCGATCCGCTAGG5'

5'GGATCGCCTAGC5'

CTGCAGGACGTC5'

PstI3'

T4-DNApol切平5'

CG5'

GCKlenow补平5'GGATCCCTAGGATCC5'

CTAGGCGATCCGCTAGG5'

5'GGATCGCCTAGC第7页/共66页人工粘性末端的连接5‘突出末端5'GCCTAGGATCCG5'

5'

GCTTAA5'5'5'

AATTCGT4-DNAligase5'

5'Klenow补平Klenow补平5'GGATCCCTAGGATCC5'

CTAGG5'

GAATTCTTAA5'5'5'

AATTCTTAAGTdTTdTdGTPdCTPGAATTGGGGGGCTTAAAATTCGGGGGGTTAAGGGATCCCCCCCCCTAGGATCCCCCCCCCTAGGGAATTGGGGGGGATCCCTTAACCCCCCCTAGGGGATCCCCCCCAATTCCCTAGGGGGGGTTAAG5'

5'GAATTGGGGGGGATCCCTTAACCCCCCCTAGGGGATCCCCCCCAATTCCCTAGGGGGGGTTAAG退火BamHIBamHIEcoRIBamHI第8页/共66页人工粘性末端的连接3‘突出末端CTGCA3'

GG3'

ACGTC5'

GCATG3'C5'C3'GTACGT4-DNAligaseTdTTdTdCTPdGTPGCATGCCCCCC3'C退火PstIPstIC3'

CCCCCCGTACGCTGCAGGGGGG

3'

GG3'

GGGGGGACGTC5'

5'GCATGCCCCCC

GCGGGGGGACGTCCTGCAGGGGGGCGCCCCCCGTACG5'

5'GCATGCCCCCC

GCGGGGGGACGTCCTGCAGGGGGGCGCCCCCCGTACG5'

5'GCATGCCCCCCTGCAGCGTACGGGGGGACGTCCTGCAGGGGGGCATGCGACGTCCCCCCGTACG5'

5'GCATGCCCCCCTGCAGCGTACGGGGGGACGTCCTGCAGGGGGGCATGCGACGTCCCCCCGTACGKlenowPstISphI第9页/共66页人工粘性末端的连接平头末端C3'

GG5'

G3'C5'C3'GT4-DNAligaseTdTTdTdTTPdATPGTTTTTTTTTT3'C退火C3'

TTTTTTTTTTGCAAAAAAAAAA

3'

GG3'

AAAAAAAAAAC5'

5'GTTTTTTTTTTGCAAAAAAAAAACCAAAAAAAAAACGTTTTTTTTTTGS1C3'

5'

5'GTTTTTTTTTTGCAAAAAAAAAACCAAAAAAAAAACGTTTTTTTTTTG加热GTCATTTTTTTTTGAAAAAAAAACCAGTAAAAAAAAACTTTTTTTTTGTGACCAGT第10页/共66页粘性末端的更换BamHI5'

5'GGATCCCCTAGGT4-DNAligaseKlenow补平GATCC5'

G5'GCCTAG5'5'

5'GGATCCCTAG5'

GATCCCTAGG5'5'GGATCGGAATTCCGATCCCCTAGCCTTAAGGCTAGG5'

5'EcoRIGGAATTCCCCTTAAGGEcoRIlinker第11页/共66页重组率重组率的定义重组率=含有外源DNA的重组分子数/载体分子总数在常规实验条件下,重组率一般为25-75%重组率是衡量连接反应效率的重要指标,较高的重组率可以大大简化DNA重组的后续操作。第12页/共66页重组率提高重组率的方法提高外源DNA片段与载体的分子比:5:1-10:1载体DNA分子在连接前先除去磷酸基团:

5'

5'GAATTCCTTAAGGAATTCCTTAAGEcoRI5'GCTTAApAATTCG5'

p5'

GCTTAAOH

5'5'

AATTCG5'

HO退火5'

G-A-A-T-T-CC-T-T-A-AG5'GA-A-T-T-CC-T-T-A-A-GOHHOOHHO碱性磷酸单酯酶碱性磷酸单酯酶第13页/共66页重组率提高重组率的方法加装同聚尾末端:

CTGCA3'

GG3'

ACGTC5'

GCATG3'C5'C3'GTACGT4-DNAligaseTdTTdTdCTPdGTPGCATGCCCCCC3'C退火C3'

CCCCCCGTACGCTGCAGGGGGG

3'

GG3'

GGGGGGACGTC5'

5'GCATGCCCCCC

GCGGGGGGACGTCCTGCAGGGGGGCGCCCCCCGTACG5'

5'GCATGCCCCCCTGCAGCGTACGGGGGGACGTCCTGCAGGGGGGCATGCGACGTCCCCCCGTACGKlenow第14页/共66页B重组DNA分子的转化和扩增(转与增)基因工程的操作过程转化的原理与技术转化率转化细胞的扩增第15页/共66页转化的原理与技术Ca2+诱导的完整细菌细胞的转化Ca2+诱导的完整细胞的转化适用于革兰氏阴性细菌(如大肠杆菌等),1970年建立此技术,其原理是Ca2+与细菌外膜磷脂在低温下形成液晶结构,后者经热脉冲发生收缩作用,使细胞膜出现空隙,细菌细胞此时的状态叫做感受态

第16页/共66页转化的原理与技术Ca2+诱导的完整细菌细胞的转化大肠杆菌感受态细胞的制备:100ml菌体培养至OD600=0.5,离心收集菌体

用10ml冰冷的10mM

CaCl2溶液悬浮菌体,离心用1ml冰冷的75mM

CaCl2溶液悬浮菌体冰浴放置12-24小时,备用收集菌体第17页/共66页转化的原理与技术Ca2+诱导的完整细菌细胞的转化大肠杆菌感受态细胞的质粒转化:取100ml感受态细胞,加入相当于50ng载体的重组冰浴放置半小时在42℃保温2分钟(热脉冲)快速将转化细胞转移至冰浴中放置1-2分钟DNA连接液,混匀加入1ml新鲜培养基,于37℃培养1小时(扩增)涂在合适的固体培养基平板上进行筛选

第18页/共66页转化的原理与技术细菌原生质体的转化革兰氏阳性细菌(如枯草杆菌、链霉菌等)接纳外源DNA的主要屏障是细胞壁,因而这类细菌通常采用原生质体(细胞去壁后的形态)转化的方法转移质粒或重组DNA分子

酵母菌、霉菌、植物细胞也可用原生质体法进行转化

第19页/共66页转化的原理与技术细菌原生质体的转化不同细菌的原生质体制备方法不尽相同,以链霉菌为例:细菌需生长在高渗培养基中(如34%的蔗糖溶液,并加入甘氨酸以增加细菌细胞壁对溶菌酶的敏感性。在制备过程中,菌体应始终悬浮在10.3%的蔗糖等渗溶液中。与原生质体接触的所有器皿应保持无水无去污剂细菌原生质体的制备:第20页/共66页转化的原理与技术细菌原生质体的转化取0.2-1ml的原生质体悬浮液(108-109个原生质体),加入10-20mlDNA重组连接液,同时加入含有PEG1000和Ca2+的等渗溶液,混匀细菌原生质体的转化:细菌原生质体的再生:原生质体再生的主要目的是使细菌重新长出细胞壁。再生在特殊的固体培养基上进行,内含脯氨酸和微量元素

第21页/共66页转化的原理与技术l噬菌体DNA的转染感受态细胞的培养:

将大肠杆菌在含有麦芽糖(不含葡萄糖)和MgCl2的培养基中培养至OD600=0.5吸附:加入经体外包装好的重组噬菌体悬浮液,30℃保温10分钟转染裂解:加入20倍体积的新鲜培养基,30℃培养2小时,直至培养液中菌体裂解,培养液澄清度增加,然后涂板筛选第22页/共66页转化的原理与技术电穿孔转化将待转化的质粒或DNA重组连接液加在电穿孔转化仪的样品池中,两极施加高压电场。在强大电场的作用下,细菌细胞壁和细胞膜产生缝隙,质粒或DNA重组分子便可进入细胞内电穿孔转化法操作简单,而且几乎对所有含细胞壁结构的受体细胞均有效,但转化效率差别很大同样的原理,电穿孔法也可用于质粒消除实验第23页/共66页转化率转化率的定义转化率是衡量转化效率的重要指标,其定义为:每微克载体DNA在最佳转化条件下进入受体细胞的分子数。由于在一般的转化实验规模下,每个受体细胞最多只能接受一个载体分子,因此转化率的定义也可以表征为:每微克载体DNA转化后,受体细胞接纳DNA的个数,即克隆数(在筛选时,未接纳载体或重组子的受体细胞不长)第24页/共66页转化率转化率的定义例如,pUC18对大肠杆菌的转化率为108,即每微克pUC18中只有108个分子能进入受体细胞。一微克pUC18共有3.4X1011个分子(6.02X1017/2686X660),也就是说,每3400个pUC18分子才有一个分子进入受体细胞另一方面,在实际操作过程中,转化一微克pUC18共需2ml感受态细胞,大约含有2X1010个大肠杆菌细胞,也就是说,每200个细胞只有一个细胞能接纳pUC18DNA

第25页/共66页转化率转化率的用途利用转化率和重组率等参数可以帮助设计DNA重组实验规模例如,某一DNA重组实验的重组率为20%,转化率为107/mg载体,

经切接处理后的载体转化率比天然的载体低100倍,欲获得104个重组克隆,需投入多少载体DNA进行重组实验?若重组率为100%,则转化后产生104个重组克隆需要:

104/107

X10-2=0.1mg载体DNA

考虑到实验系统的重组率为20%,所以实际投入载体应为:

0.1/20%=0.5

mg载体DNA

载体投入量确定后,外源DNA的投入量即可按10∶1的要求算出(5mg),甚至还可以估算需要涂布多少块平板进行筛选第26页/共66页转化率转化率的影响因素载体及DNA重组分子方面:

载体本身的性质:不同的载体转化同一株受体细胞,其转化率不同载体的空间构象:质粒的超螺旋构象转化率最高,经酶切连接操作后的载体由于空间构象难以恢复,其转化率一般要比新制备的超螺旋质粒低两个数量级插入片段的大小:对质粒载体而言,插入片段越大,转化效率越低第27页/共66页转化率转化率的影响因素受体细胞方面:

受体细胞必须与载体相匹配,例如:pBR322转化大肠杆菌JM83株,转化率很低;但对大肠杆菌ED8767株的转化率则较高第28页/共66页转化率转化率的影响因素转化方法方面:

受体细胞的预处理:影响最大供受体的比例:Ca2+诱导转化0.1ml感受态细胞50ngDNA

转化方法:Ca2+诱导转化106-107/mgDNA

原生质体转化109

个原生质体 50ngDNA

原生质体转化105-106/mgDNA

l-DNA转染107-108/mgDNA

电穿孔转化106-109/mgDNA

第29页/共66页转化细胞的扩增扩增操作转化细胞的扩增操作是指转化完成之后细胞的短时间培养。在实验时,扩增操作往往与转化操作偶联在一起,如:

Ca2+诱导转化后的37℃培养一个小时原生质体转化后的再生过程

l噬菌体转染后的30℃培养等,均属扩增操作第30页/共66页转化细胞的扩增扩增操作的目的增殖转化细胞,使得有足够数量的转化细胞用于筛选程序扩增和表达载体分子上的标记基因,便于筛选表达外源基因,便于筛选和鉴定第31页/共66页C转化子的筛选和鉴定(检)基因工程的操作过程载体遗传标记检测克隆DNA序列检测外源基因产物检测第32页/共66页C转化子的筛选和鉴定(检)基因工程的操作过程由于重组率和转化率不可能达到理想极限,因此必须借助各种筛选和鉴定方法区分转化子与非转化子、重组子与非重组子、目的重组子与非目的重组子转化子重组子目的重组子第33页/共66页载体遗传标记检测抗药性筛选法ROPROISalIBamHITcrPvuIPstIPstIEcoRIClaIHindIIIHindIIBalIApr抗药性筛选法的基本原理:

pBR3224363bpori抗药性筛选法可区分转化子与非转化子、重组子与非重组子将外源DNA片段插在EcoRI位点:非重组子呈Apr、Tcr重组子呈Apr、Tcr将外源DNA片段插在BamHI位点:非重组子呈Apr、Tcr重组子呈Apr、Tcs第34页/共66页载体遗传标记检测抗药性筛选法抗药性筛选法的基本操作:

先将转化液涂布含有Ap的平板再将Ap平板上的转化子影印至含有Ap和Tc的平板上

在Ap平板上生长、但在Ap和Tc平板上不长的转化子即为

ApAp+Tc影印挑选重组子

第35页/共66页载体遗传标记检测营养缺陷型筛选法营养缺陷型筛选法的基本原理:

营养缺陷型筛选法可以区分转化子与非转化子,一般不能区分重组子与非重组子。其原理是:载体分子上携带某种营养组份的合成基因,而受体细胞本身不能合成这一营养组份,将转化细胞涂布在不含此营养组份的培养基上,长出的便是转化子

第36页/共66页载体遗传标记检测营养缺陷型筛选法常见的营养缺陷型筛选标记:

哺乳动物细胞中存在两条dTTP的合成途径:用于大肠杆菌的营养标记基因常选用色氨酸生物合成基因trp+用于高等哺乳动物细胞的营养标记基因常使用胸腺嘧啶核苷激酶基因tk,相应的受体细胞则选择tk-缺陷型dCDPdTDPdTTPTRdTMPdTDPdTTPAPTKAP氨基喋呤TK胸腺嘧啶核苷激酶第37页/共66页载体遗传标记检测显色筛选法显色筛选法的基本原理:

显色筛选法可以区分转化子与非转化子,也可区分重组子与非重组子。其原理是:载体分子上携带某种显色酶基因,其表达产物能使细胞产生颜色反应,从而易于辨认和挑选,如大肠杆菌质粒pUC18携带的lacZ’基因(蓝色反应)、链霉菌质粒pIJ702携带的melC基因(黑色反应)等第38页/共66页载体遗传标记检测显色筛选法显色筛选法的基本操作:

pUC18AprlacZ'oriAp+X-gal重组子(Apr+lacZ-)

将外源基因克隆在pUC18的lacZ’标记基因内部,使之灭活,此时重组子呈Apr、lacZ-,淡黄色菌落;而非重组子则呈Apr、lacZ+,蓝色菌落第39页/共66页克隆DNA序列检测限制性酶切图谱法所谓的限制性酶切图谱法就是对载体上插入的外源DNA片段进行酶切图谱分析,并以此与目的基因的已知图谱对比,因此利用这种方法不仅能区分重组子与非重组子,而且还能鉴定目的重组子。但这种方法在用于数千规模的转化子筛选时,工作量极大,实验成本也高。第40页/共66页克隆DNA序列检测限制性酶切图谱法全酶解图谱法:pUC182.7kbHindIIISphIPstISalIBamHISmaIKpnIEcoRIAprlacZ’oriBBEP4.0kb1.0kb0.8kb区分重组子与非重组子用BamHI酶切转化子质粒DNA电泳观察酶解产物片段重组子:2.7kb+4.0kb非重组子:2.7kb如果外源DNA片段也是2.7kb,最好选用单一切口的酶将质粒线型化,然后通过其长度来鉴定其是否为重组子第41页/共66页克隆DNA序列检测限制性酶切图谱法全酶解图谱法:pUC182.7kbHindIIISphIPstISalIBamHISmaIKpnIEcoRIAprlacZ’oriSSBP4.0kb1.0kb0.8kb区分重组子与非重组子如果外源DNA片段插在pUC18的SphI位点处,原则上也可用SphI酶解鉴定,但这样做很不经济,因为SphI非常昂贵(每100单位50美元)。用HindIII和EcoRI联合酶解同样可以达到目的,但这两种酶的价格只及SphI的1/50

第42页/共66页克隆DNA序列检测限制性酶切图谱法全酶解图谱法:pUC182.7kbHindIIISphIPstISalIBamHISmaIKpnIEcoRIAprlacZ’oriBBEP4.0kb1.0kb0.8kb区分目的重组子与非目的重组子用EcoRI酶切转化子质粒DNA目的重组子:3.0kb+3.7kb或者:1.0kb+5.7kb用PstI酶切转化子质粒DNA目的重组子:3.2kb+3.5kb或者:0.8kb+5.9kb第43页/共66页克隆DNA序列检测限制性酶切图谱法全酶解图谱法:pUC182.7kbHindIIISphIPstISalIBamHISmaIKpnIEcoRIAprlacZ’oriBBE4.0kb2.0kb2.0kb区分目的重组子与非目的重组子对图示的克隆片段,转化子质粒DNA用EcoRI酶切开后,只出现2.0kb和2.7kb两条带子,实际上2.0kb的条带中含有两种不同的分子2.7kb2.0kbE第44页/共66页克隆DNA序列检测限制性酶切图谱法部分酶解图谱法:2.2kbPstIEcoRIBamHIBBE4.4kb1.21.8kbEB0.60.8该重组质粒经酶解后,分别得到下列几组数据:BamHI全酶解:0.60.81.83.4

kbBamHI+EcoRI全酶解:0.60.81.81.22.2

kb其中,1.2kb片段的存在表明该片段位于一端BamHI部分酶解:1.42.64.0

kb其中,1.4kb的片段必为0.6kb和0.8kb两片段,表明两者是连在一起的;同理,2.6kb的片段必为0.8kb和1.8kb两片段,表明两者是连在一起的;最后,4.0kb的片段必为0.6kb和3.4kb两片段,表明两者是连在一起的第45页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法菌落或噬菌斑原位杂交法的工作原理是根据克隆的目的基因或DNA片段的同源序列设计并合成探针,以此搜寻筛选含有目的基因的目的重组子。其中,DNA同源序列之间的特异性互补杂交是该技术的基本理论依据第46页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法菌落原位杂交法的基本操作:影印用硝酸纤维素薄膜影印克隆平板

洗涤杂交感光用0.4N的NaOH溶液浸泡影印薄膜

用SSC溶液浸泡清洗影印薄膜

80℃烘干固定影印薄膜

薄膜置于含有探针的杂交溶液中保温用SSC-SDS液洗涤杂交薄膜

用X光胶片覆盖薄膜感光

第47页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法杂交探针的制备:用于菌落或噬菌斑原位杂交的探针必须满足下列条件:单链结构(双链DNA可用碱变性)

足够长度(至少12个碱基)内部不含互补区

探针的制备方法或来源包括:人工合成cDNA合成

同源序列mRNA

第48页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法杂交探针的标记:T4-PNP介导的末端标记5‘HO3‘HOOH3‘OH5‘T4-PNPMg2+

pppATP(g-32P-ATP)5‘p3‘HOOH3‘p5‘第49页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法杂交探针的标记:逆转录酶介导的反转录标记3’AAAAAAAAAAACCAGCTTCC···GAACTGATTTAGGCT5’mRNA反转录酶Mg2+dNTP+pppdATP(a-32P-dATP)5’TTTTTTTTTTT5’mRNA3’cDNA3’AAAAAAAAAAACCAGCTTCC···GAACTGATTTAGGCT5’TTTTTTTTTTTGGTCGAAGG···CTTGACTAAATCCGA第50页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法杂交探针的标记:DNA聚合酶介导的缺刻前移标记5‘…G-C-T-C-A-G-C-T-G-G-A-G-T…3’3‘…C-G-A-G-T-C-G-A-C-C-T-C-A…5‘Mg2+5‘dNTP5‘pppdA(a-32P-dATP)5‘…G-C-T-CA-G-C-T-G-G-A-G-T…3’3‘…C-G-A-G-T-C-G-A-C-C-T-C-A…5‘5‘…G-C-T-C-A-G-C-T-G-G-A-G-T…3’3‘…C-G-A-G-T-C-G-A-C-C-T-C-A…5‘DNaseIDNApolI第51页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法杂交探针的标记:ABC荧光标记GCTTGAGCAGTAACCTG荧光胺Biotin生物素Avidin生物素结合蛋白烷烃连接臂第52页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法杂交探针的标记:ABC显色酶标记GCTTGAGCAGTAACCTG显色酶Biotin生物素Avidin生物素结合蛋白烷烃连接臂生色底物颜色产物第53页/共66页克隆DNA序列检测菌落噬菌斑原位杂交法杂交探针的标记:地高辛系统标记dUTP-连接臂-甾醇半抗原digoxigeninDIG抗体-显色酶交联复合物第54页/共66页克隆DNA序列检测DNA序列分析法双脱氧末端终止测序法的基本原理:

DNA序列测定是精确鉴定目的基因的重要手段,目前国际上流行采用Sanger发明的双脱氧末端终止法测定DNA序列,其工作原理是在DNA聚合反应的进程中,通过位点特异性终止测定DNA序列其关键技术有:DNA链聚合反应时的定点随机中断(ddNTP)聚丙烯酰胺凝胶电泳的高分辨率(600bp/601bp)电脑自动检测、记录、编辑程序用于DNA测序的专一性试剂盒(Kit)第55页/共66页克隆DNA序列检测DNA序列分析法双脱氧末端终止测序法的基本操作:

A

C

G

T

ssDNA

ssDNA

ssDNA

ssDNA

Primer

Primer

Primer

Primer

KlenowKlenowKlenowKlenowdNTPsdNTPsdNTPsdNTPsddATPddCTPddGTPddTTPA

G

T

C

DNA聚合反应聚丙烯酰胺凝胶电泳第56页/共66页克隆DNA序列检测DNA序列分析法双脱氧末端终止测序法的基本反应:

KlenowOH3'5'PTdNTP+

ddATP

TTTTTOH3'5'PA

G

T

C

GGCATTGCGTTACTAGTCCAGTACA第57页/共66页

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