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文档简介

2T/CVMAXXXXX—XXXX猫麻醉操作规程本文件规定了宠物诊疗机构进行猫麻醉的要求和操作步骤。本文件适用于执业兽医为猫实施麻醉操作。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。T/CVMA70-2021犬猫外周静脉留置针放置技术规程3术语和定义下列术语和定义适用于本文件。3.1麻醉anaesthesia麻醉是指用药物或其他方法使患宠整体或局部暂时失去感觉,以达到无痛的目的进行手术治疗。4门诊流程4.1术前准备4.1.1病史调查:现病史、既往病史,尤其是心脏相关的病史。4.1.2禁食禁水:禁食4h-6h,不禁水。详情请见附录A《禁食禁水时间》。4.2评估与体况纠正4.2.1术前评估4.2.1.1体格检查Score,BCS)、脱水程度等。4.2.1.2实验室检查peptide,FBNP等各级体况对应的检查项目及时效见附录B《体况分级表及麻醉前必检项目时限表》。4.2.1.3影像学检查3T/CVMAXXXXX—XXXX预麻醉老年动物,需拍摄胸部X线片,评估心肺功能(必要时超声检其他检查)。4.2.1.4其它检查建议为所有动物测量术前血压;必要时(听诊心律不齐、怀疑特殊疾病时)可考虑心电图等检查。4.2.2体况纠正根据体况结合实际情况进行纠正:4.2.2.1纠正低血容量;4.2.2.2纠正低血糖;4.2.2.3纠正高血钾;4.2.2.4纠正严重酸中毒;4.2.2.5纠正脱水;4.2.2.6尽可能纠正离子紊乱和酸碱失衡;4.2.2.7尽可能纠正低血压和心律失常。4.3麻醉风险与并发症告知告知麻醉风险、并发症和动物回家护理注意事项等,并签署《麻醉知情同意书》及其他协议。4.4开具手术处方4.5宠主缴费与拿药5麻醉前准备5.1静脉通路打开5.1.1留置针放置:不同体重对应不同型号留置针,应按照T/CVMA70-2021选择留置针。5.1.2选择等渗晶体液,优选乳酸林格液,尽量不从大瓶里抽出;5.1.3生理性手术:液体速度:5ml/(kg·h)-10ml/(kg·h);猫:3ml/(kg·h)注意区分输液泵设置:ml/h或滴/min);5.1.4其他手术类型视具体情况而定。5.2评估与体况纠正在门诊医生处置的基础上,麻醉人员进一步评估体况,并视情况纠正。5.3麻醉前准备项目5.3.1药品5.3.1.1预防性抗生素、镇痛剂5.3.1.2麻醉前用药根据体况选择合理的镇静剂。可考虑使用剂量如下:——右美托咪定:2μg/kg-5μg/kg,iv、im、sq(静脉给药后2min-3min后起效,肌内给药15min-20min起效;注意静脉给药剂量不超过10μg/kg);——舒泰:0.5mg/kg-2mg/kg,im、iv(怀疑有肥厚型心肌病时谨慎使用舒泰);4T/CVMAXXXXX—XXXX——其他视情况而定。5.3.1.3诱导麻醉剂:根据情况准备丙泊酚(如5mg/kg),具体使用量与麻醉前用药和动物体况相关。待镇静剂起效后再开始诱导。5.3.1.4维持麻醉剂:异氟烷。5.3.1.5急救药必备急救药:阿托品(低剂量0.02mg/kg、高剂量0.04mg/kg),肾上腺素(低剂量0.01mg/kg、高剂量0.1mg/kg);其他急救药可参见附录C《心肺复苏(CPR)急救药物及剂量》。具体用药请严格按照药品说明书以及实际情况而定。5.3.1.6根据动物情况准备升压剂。5.3.1.7疼痛管理:可见附录D《镇痛药物使用指南》。5.3.1.8其他药品准备:视手术需要准备。5.3.2设备、器械、耗材5.3.2.1设备——麻醉机/呼吸麻醉机:检查氧气、碱石灰、吸入麻醉剂、气囊、回路、安全阀、废气吸收罐、麻醉机气密性,调整安全阀位置使回路为循环半紧闭式回路。——监护仪:打开监护仪预热,连接呼末二氧化碳(ETCO2)探头,呼末二氧化碳使用方法可见操作手册。——血压计:探头、耦合剂、合适大小袖带、胶带。——其他:输液泵、注射泵、恒温毯等。5.3.2.2器械(手术人员准备)——常规手术器械包:组织钳1把、尖头剪1把、钝头剪1把、创巾钳4把、弯止血钳2把、直止血钳1把、整形镊1把、刀柄1个、持针钳1把;——其他手术相关器械视情况准备。5.3.2.3耗材准备3个型号气管插管、喉镜、保定绳(可使用剪下来的输液管,不可用纱布条)、纱布块、利多卡因凝胶或喷剂、空注射器、一次性手术服、灭菌手套、毛毯、尿垫、消毒剂(常规外科为2%-4%葡萄糖氯己定、黏膜等为0.05%洗必泰和碘伏)、刷洗纱布、灭菌创巾、刀片和可吸收线等。5.3.3其他5.3.3.1麻醉记录表;5.3.3.2麻醉前确认单;5.3.3.3检查各类协议是否齐全;5.3.3.4手术人员准备、动物准备等。6吸入麻醉流程6.1诱导麻醉6.1.1再次确认手术类型;6.1.2预吸氧,确定动物体况符合麻醉要求;5T/CVMAXXXXX—XXXX6.1.3确定静脉通路正常,静脉或肌肉注射镇静剂,静脉给予预防性抗生素;6.1.4视情况缓慢推注诱导麻醉药至效;6.1.5插入气管插管,尖端至胸腔入口处;颈外气管触诊确定插入位置正确;6.1.6连接麻醉机/呼吸麻醉机氧气(先开氧流量计,再连接回路与气管插管氧流量计可开到3L/min,固定气管插管;6.1.7充盈气管插管套囊,验证回路密闭(避免过度充盈注意要开放安全阀。视情况打开异氟烷,具体浓度根据动物情况酌定;6.1.8连接监护设备,确定动物生命体征。在监护仪示数稳定准确前,助手听诊、触诊脉搏确定动物生命体征良好;6.1.9打开输液泵、注射泵及恒温毯等。6.2术部准备6.2.1根据手术类型保定动物,术部区域大面积剃毛,吸尘器吸净残毛;6.2.2术部刷洗消毒。6.3人员准备6.3.1戴口罩和手术帽;6.3.2洗刷手;6.3.3穿手术衣、戴手套。6.4术中6.4.1工作流程6.4.1.1打开手术包,摆放器械和纱布块,准备缝线;6.4.1.2铺盖创巾,创巾钳固定,夹持前告知麻醉师;6.4.1.3术部准备完毕,切开前与麻醉师确认;6.4.1.4手术过程注意无菌,包括辅助人员和学习人员。6.4.2维持麻醉手术期间视手术情况调整氧流量、异氟烷浓度(0%-3%)等,其他详见附录E、F,手术期间视手术情况调整氧流量、异氟烷浓度(0%-3%)等。6.4.3麻醉监护,并填写《麻醉记录表》。7术后流程7.1苏醒监护7.1.1手术结束,异氟烷归零,停止吸入麻醉药,取出食道内监护设备(如,食道体温计、食道听诊器等);6T/CVMAXXXXX—XXXX7.1.2提高氧流量至3L/min,纯氧吸入3min-5min;恢复眼睑反射后,关闭氧流量计,断开回路;7.1.3视情况排空气管插管套囊,解开固定气管插管的保定绳;7.1.4动物开始恢复眼睑反射且上下颌张力增强时,立即撤去血氧探头,猫恢复眼睑反射即可拔管,避免延迟拔管,因猫喉头很敏感,延迟拔管可能造成喉痉挛;7.1.5根据需要决定是否关闭静脉通路;7.1.6持续监测动物至体征平稳,将动物送出手术室;7.1.7填写《麻醉记录表》相关部分。7.2术后医嘱7.2.1注意苏醒期看护,保持头颈自然伸展和呼吸通畅;7.2.2评价动物的疼痛水平,制定合理的术后疼痛管理方案;7.2.3术后禁食禁水6h。视手术类型具体决定;7.2.4术后佩戴脖圈,保护创口,防舔舐等创口自损行为;7.2.5术后4天-5天检查创口,10天-12天拆线;7.2.6监测手术相关并发症;7.2.7随诊(若发现异常需要及时就诊)。7.3手术室整理7.3.1利器归盒,刷洗手术器械,视情况器械灭菌;7.3.2清洁手术台面、手术室地面,医疗垃圾处理;7.3.3整理麻醉机和药品。7.4病历归档7.4.1如实记录手术过程;7.4.2检查和补充《麻醉记录表》,术者签字确认。1T/CVMAXXXXX—XXXX资料性《禁食禁水时间》.动物状态禁水_hr禁食_hr饲喂肉质流食治疗和药物其他0*监测血长期止吐药#、抗酸药、促动力药胰岛素健康√√√或√不超过hr√术前术前术中术后√安排当日首个手术糖尿病√√术前2hr-4hr术前术中术后√术前2hr-4hr安排当日首个手术有反流史或反流风险√√考虑在诱导前4hr-6hr进食正常量的10%-25%√√紧急ASAP√麻醉前稳定体况*0hr=允许自由饮水&口服药物可与少量(1匙-2匙)湿粮或将药片用糊状食物包裏一起服用#止吐药可通过减少麻醉药物引起的呕吐,增加动物舒适度,是麻醉方案的有效补充2T/CVMAXXXXX—XXXX3T/CVMAXXXXX—XXXX资料性《体况分级表及麻醉前必检项目时限表》术前评估的方法包括病史调查、体格检查和实验室检查。其目的是(1)确定动物的健康状态,降低麻醉和手术并发症与死亡率2)有目的地进行麻醉与手术操作3)为患病动物的医疗保健提供实验室检查的基础。实验室检查作为一种客观的检查方法,对动物健康状况的准确评估具有重要意义。体况分级表手术麻醉前必须检查的项目体况分级定义举例麻醉时间短于1h麻醉时间长于1h或动物年龄大于5岁I健康动物未见异常:子宫卵巢切除术、立耳、断尾、去势和常规洁牙。CBC、术前生化Ⅱ患轻度全身性疾病的动物皮肤肿瘤、无并发症的疝、无并发症的隐睾、局部感染。CBC、术前生化Ⅲ患严重全身性疾病的动物恐惧、脱水、贫血、恶病质、中低度低血容量。CBC、全项生化CBC、全项生化、血气IV患严重全身性疾病,且时刻有生命危险的动物尿毒症、毒血症、严重脱水、低血容量、心脏失代偿、消瘦或高烧。CBC、全项生化、血气CBC、全项生化、血气V无论是否手术都可能在24h内死亡的动物严重休克及脱水、恶性肿瘤或感染末期、严重创伤。CBC、全项生化、血气CBC、全项生化、血气备注:推荐尿检和凝血监测;Ⅲ~V级体况及听诊异常时,查ECG、胸片和血压,必要时超声心动图检查Na+、K+、Cl-、TP化验时效1)手术病例必须有适当时效的化验结果2)Ⅲ~V级病例的生化时效为48h(超过48h但在1周内的,另做术前生化;超过1周的,再做全项生化);I~Ⅱ级的生化时效为2周;(3)CBC、血气、尿检和凝血的时效为24h4)创伤性手术如外伤、车祸、高处跌落等,若非绝对必要,建议至少留院观察24h再进行麻醉与手术。1T/CVMAXXXXX—XXXX资料性《心肺复苏(CPR)急救药物及剂量》体重(kg)2.5520253035404550状态药物剂量mlmlmlmlmlmlmlmlmlmlml心搏停止肾上腺素低剂量(1:1000;1mg/mL)每隔一个基础生命支持周期×30.01mg/kg0.030.050.10.150.20.250.30.350.40.450.5肾上腺素高剂量(1:1000;1mg/ml)长时间CPR情况下使用0.1mg/kg0.250.52.02.53.03.54.04.55.0血管加压素(20U/ml)0.8U/kg0.10.20.40.60.82.0抗心律失常阿托品(0.5mg/ml)0.04mg/kg0.20.40.82.02.42.83.23.64.0胺碘酮(50mg/ml)5mg/kg0.250.52.02.53.03.54.04.55.0利多卡因(20mg/ml)2mg/kg0.250.52.02.53.03.54.04.55.0拮抗剂纳洛酮(0.4mg/ml)0.04mg/kg0.250.52.02.53.03.54.04.55.0氟马西尼(0.1mg/ml)0.01mg/kg0.250.52.02.53.03.54.04.55.0阿替美唑(5mg/ml)100μg/kg0.060.10.20.30.40.50.60.70.80.9体外除颤(J)-单相波4-6J/kg204060200体内除颤(J)-单相波2358202020251T/CVMAXXXXX—XXXX资料性《镇痛药物使用指南》药品名使用剂量适应症慎用病患及禁忌证布托啡诺Butorphanol1、单次给药:0.2mg/kg-0.4mg/kg,iv,im,持效1小时-4小时。2、CRI输注:负荷剂量0.1mg/kg-0.4mg/kg,CRI速度0.1-0.4mg/(kg·h)。溶液配制方法:20ml生理盐水加入4mg布托啡诺,可配制0.2mg/kg布托啡诺溶液。适用于轻中度镇痛尿闭,胰腺炎,腹膜炎等都可以考虑。不建议用于严重的心动过缓。利多卡因Lidocanine1、猫仅用于抗心律失常,负荷剂量0.25mg/kg-0.5mg/kg(缓慢推注3分钟-5分钟10μg/(kg·min)-20μg/(kg·min)输注,注意监测动物反应。适用于轻中度镇痛(猫慎用)1、猫对利多卡因敏感,容易中毒,谨慎使用利多卡因给猫CRI镇痛,使用时注意实时监护。2、可能会引起高铁血红蛋白血症。3、3°AVB、病窦综合征、心脏逸搏动物慎用或禁用。4、严重肝功能不全。右美托咪定DexmedetomidineCRI输注镇痛:负荷剂量0.5μg/kg-2μg/kg,若术前镇静剂包含右美托咪定,则不需要在CRI前重复负荷溶液配制方法:在50ml生理盐水中加入50μg右美托咪定,配制为1μg/ml的右美托咪定溶液。1、术中:0.5ml/(kg·h)-2.5ml/(kg·h),即0.5μg/(kg·h)-2.5适用于中重度镇痛1、骨科手术(骨折、关节手术等)。2、中重度侵袭性的软组织手术(大范围肿物切除等)。1、严重肝、肾功能不全。2、严重心血管系统疾病动物。3、呕吐禁忌疾病。4、不推荐与抗胆碱能药物联用。5、老年动物谨慎使用。1黏膜颜色淡粉色呼吸(次/min)血压(mmHg)收缩压:80-160舒张压:45-55E.2麻醉深度判断E.3氧流量正常维持在15-40mL/kgmin)(最低0.4L/min;如果为非复吸式回路则为1L/min-3L/min)。手术过程中维持正常呼末二氧化碳(ETCO2)波形,正常ETCO2值为35mmHg-45mmHg。E.4.2波形2相异常2高碳酸血症3相平台期不规则心源性震荡g3相转换为0相异常ETCO₂指数型下降E.5.1ETCO2指数型下降(严重!)E.5.1.4ETCO2突然下降(一口气)——评估回路是否断开连接。E.5.2通气过度:ETCO2<351T/CVMAXXXXX—XXXX资料性《围手术期麻醉常见并发症》F.1低血氧维持足够的呼吸功能是麻醉的首要要求。组织氧合不足可能导致重要器官(尤其是大脑和心肌)功能急性损伤,甚至会导致死亡。持续的中度低氧血症可能产生一定程度的器官功能障碍,导致麻醉后苏醒不良。麻醉期间呼吸功能不足会造成术后意识恢复延迟,麻醉后心、肾或肝功能不全,因此需要密切监测。F.1.1测量工具脉搏血氧仪。F.1.2定义脉搏血氧仪是一种监测脉搏率和动脉血中携氧血红蛋白百分比的无创监护设备。F.1.3功能指标脉搏血氧监护仪有助于评估肺输送氧的能力,可间接评价灌注组织的氧分压(PO2)。正常动脉PO2在80~110mmHg之间。根据氧血红蛋白解离曲线证明,SpO2和PO2不是1:1的关系。当SpO2低于95%时,血液中的氧分压(PO2)会急剧下降。当SpO2为90%时,机体存在中度至重度低氧血症;SpO2≥95%则在普遍接受的正常PO2范围内(虽然是正常范围下限)。麻醉状态动物的SpO2应维持在95%以上。呼吸室内空气时,血液中正常氧饱和度应>98%。麻醉状态下吸入100%O2的动物血氧饱和度应维持在或接近99%~100%。根据氧血红蛋白解离曲线,脉搏血氧仪适用于监测低氧血症(PO2使用时,脉搏血氧监护仪探头应放置在少毛或无毛的无色素区域,如舌头、嘴唇、耳朵、脚趾、外阴和包皮等。F.1.4假象缘由所有的监测设备都有可能存在误差,脉搏血氧仪的误差来源于三个方面:F.1.4.1动物因素,包括色素沉着、毛发干扰、位置干燥、呼吸急促、颤抖、灌注不良、碳氧血红蛋白升高、高铁血红蛋白升高、黄疸等;F.1.4.2设备因素,探头故障、污物干扰、线路损坏、探头放置错误等;F.1.4.3环境因素,外部光源的干扰等。F.1.5处理方案低血氧的原因有吸入氧分数低、通气不足、扩散障碍、右向左分流、V/Q不匹配,需分析并解决根本因素。人工评估最主要依赖负责监护工作的麻醉师。应强调人在监护工作中的重要性,而不仅仅是依赖于监护设备提供的参数。以下参数应持续监护并记录在医疗记录中:黏膜颜色(MMC)、毛细血管再充盈时间(CRT)、心率、呼吸频率、温度、胸部听诊、脉搏质量、疼痛、麻醉深度。当监护参数出2现异常的时候(<95%),排除由于上述原因导致的假象指标异常;排除后,将吸入性麻醉气体浓度减少25%,并将氧气增加至2L/min,视呼吸状态辅助人工正压通气。检查气管插管(ET)是否正确放置,排查支气管插管、食管插管、插管内阻塞(黏液、血凝块、异物)等可能原因。若无法实现气管插管,循环检查脉搏BPECG评估纠正CO、贫血考虑PEEP,防止肺不张机器动物?机器?温原因氧源呼吸回路呼吸暂停F.2.1.2震荡式血压测量(示波法)近端充气的袖带逐渐释放压力后,血流重建时(脉搏音恢复)的压力即为收缩压。震荡式血压测量和多普勒血压测量都要选择好袖带型号,通常袖带宽度为被测部位周长的30%-40%,且固定袖带时松紧度F.2.1.4血压正常范围3T/CVMAXXXXX—XXXXF.2.2定义急性高血压:SBP>180mmHg,MBP>140mmHg;持续慢性高血压:SBP>160mmHg。当血压过高或高血压持续时间过长未得到纠正时,会造成靶器官的损伤。表F.1不同SBP值情况下靶器官损伤程度SBP(mmHg)靶器官损伤风险没有或很小低风险中等程度高风险F.2.3假象缘由F.2.3.1肢体运动F.2.3.2袖带尺寸过小F.2.3.3测量部位低于心脏F.2.4涉及来源及相关指标F.2.4.1术前应激、兴奋——儿茶酚胺释放增加。F.2.4.2疼痛——儿茶酚胺释放增加,外周血管收缩,相关表现包括心率加快、呼吸加快、呼吸变浅、肌张力增加、反射恢复(眼睑反射、眼位改变)。F.2.4.3低氧血症——交感神经系统兴奋,心动过速、外周血管收缩。F.2.4.4高碳酸血症——交感神经系统兴奋,心动过速、外周血管收缩。F.2.4.5麻醉用药——α2受体激动剂,收缩外周血管,通常为一过性。F.2.4.6肾病——RAAS激活,结合相关病史、麻醉前血压。F.2.4.7甲亢——心率加快、心输出增加,结合相关病史、麻醉前血压。F.2.4.8肾上腺机能亢进——糖皮质激素增加,钠水潴留,结合相关病史、麻醉前血压。F.2.4.9嗜铬细胞瘤——儿茶酚胺异常分泌,结合相关病史、麻醉前血压。F.2.5处理方案F.2.5.1术前F.2.5.1.1评估麻醉前血压——结合病史,进行相关检查,鉴别相关疾病及应激象,必要时纠正体况后择期手术;F.2.5.1.2评估高血压造成的靶器官损伤;F.2.5.1.3麻醉前使用一段时间降压药(如ACEi、氨氯地平)调整血压,术前一天停用,并密切监测术中血压。4T/CVMAXXXXX-XXXXF.2.5.1.4术中F.2.5.1.5是否假象?——识别设备、袖带等原因;F.2.5.1.6是否出现低氧血症、高碳酸血症?——低血氧及通气不足相关处理;F.2.5.1.7麻醉深度是否过浅?——增加麻醉药物剂量(增加挥发罐浓度、TIVA输液速度);F.2.5.1.8是否疼痛感增加?追加镇痛(多模式镇痛,如CRI、局部麻醉);F.2.5.1.9若无疼痛或麻醉过浅时,不建议对持续性高血压继续处置(监测为主)。评估疼痛评分,适当镇痛(多模式镇痛,如CRI、局部麻醉)。SBP<90mmHg或MBP<60mmHg,当MBP在60-160mmHg时,组织毛细血管床的F.3.2.1肢体运动F.3.2.3袖带漏气心率X=5F.3.3.4麻醉药致心律失常——心动过缓F.3.4.2是否出现心律失常?——抗心律失常(利多卡因、阿托品)。F.3.4.5强心——增加心输出量(中低剂量多巴胺6T/CVMAXXXXX—XXXX表F.2不同药物配置方法多巴胺(10mg/ml)配制·1mLDA+100mLNS=100μg/mL·1~3滴/kg/min=3-9mL/(kg·h)=5-15μg/(kg·min)多巴酚丁胺(10mg/mL)配制·2mLDobut+250mLNS=80μg/mL·0.5-3.75滴/kg/min=1.5-11.25mL/(kg·h)=2去甲肾上腺素(2mg/mL)配制·1mLNE+100mL5%GS=20μg/mL·0.15-6mL/(kg·h)=0.05-2μg/(kg·min)肾上腺素(1mg/mL)配制·1mLEP+100mLNS=10μg/mL·0.03-6mL/(kg·h)=0.005-1μg/(kg·min)·5mLEP+50mLNS=100μg/mLF.4心脏节律异常F.4.1测量工具及原理F.4.1.1听诊心音是由心动周期中血液流动及相邻组织振动所形成。猫正常心音有S1(由收缩期开始时房室瓣及相关结构闭合引起)和S2(由射血后主动脉瓣和肺动脉瓣闭合引起)组成。心动过速时S1的强度较强。F.4.1.2心电图通过图形反映心肌去极化与复极化;反映心率、节律、心内传导情况。正常心脏节律由窦房结产生,并沿特殊的传导通路激活心房和心室。F.4.1.3血氧脉搏血氧仪可以通过容积记录法来测量外周脉搏,通过脉搏得出心脏节律。F.4.1.4脉搏通过示波法或多普勒血压计,或直接动脉压,均可测得脉率。在心脉一致时,脉率=心率。F.4.2心率参考范围及定义表F.3猫心率参考表正常心率(bpm)心动过缓(bpm)心动过速(bpm)猫幼猫200-300>300成猫>240F.4.3心电图相关指标与节律不齐的处理7犬心率巨型犬巨型犬巨型犬降低<R波振幅的0.251心室纤颤室性心动过速室性早搏心房纤颤心房扑动室上性心动过速室上性早搏窦性心动过速心房静止病窦综合征Ⅲ心室纤颤室性心动过速室性早搏心房纤颤心房扑动室上性心动过速室上性早搏窦性心动过速心房静止病窦综合征Ⅲ级房室传导阻滞Ⅱ级房室传导阻滞窦性心动过缓/阻滞窦性节律窦性节律不齐心律失常是心脏的电生理调节和机械功能发生紊乱,并可迅速导致危及生命的心输出量和灌注减少。心律失常的识别和治疗是动物麻醉前、麻醉期间以及恢复期心率正常心率正常室上性心律失常2bpm小bpmbpm小bpmbpm否是是否是否是否3PR间期延长是滞否过缓缓定工阶PR间期延长至1建议监测核心温度:核心区较外周区温度更高,严格受体温调节中枢调控(浮动范围通常<0.5℃),操作方便,但受外周影响较多,可能和核心体温存在差异。术中可持续监测或每5min监测一次体温。无意识状态下的低体温可分为轻度(36.6℃-37.7℃)、中度(35.5℃-36.6℃)、严重(33.3℃-35.5℃)以及危及生命(<33.3℃)。如果对体温不做干预,麻醉状态下动物体温的下降呈下图动态变化,在没有保温的条件下,97%的猫麻醉时会出现低体温。低体温会降低吸入麻醉剂的最低有效肺泡浓度(MAC)并增加药物在组400%,与心脏病发病率有一定相关性。2T/CVMAXXXXX—XXXXF.5.5.1被动保温主要依靠动物内在产生热量的能力,而通过使用毛毯或隔热材料覆盖(泡泡纸、铝箔等)减少传导和对流方式导致的热量损失,注意保持体表干燥(水会导热)。该方式具有良好的保温效果。F.5.5.2主动加热主要对动物提供热量减少机体与环境之间的温差实现保温。包括:循环温水毯、恒温加热气毯、红外线加热装置、电热毯、暖水袋等。其中循环温水毯、恒温加热气毯是有效的升温方式,但电热毯、暖水袋这类固定在一处的加热方式出现热灼伤的风险极高,不推荐使用。此外,温热液体(等渗液)冲洗腹腔也是很有效的升温方式,但凝血功能和离子紊乱时慎用!膀胱和直肠冲洗效果甚微。F.5.5.3代谢加热技术改变机体代谢水平以增加产热,如静脉注射氨基酸刺激胰岛素释放,导致骨骼肌中蛋白质合成,加速热量产生。这类技术可能是未来治疗低体温的发展方向。F.5.5.4除了以上设备支持,我们还能做的保温/升温操作在良好无菌的前提下,减少剃毛面积;可能的情况下使用加热至体温的液体备皮;不要使用酒精大面积消毒;减少不必要的麻醉、手术时间;术中减少体腔在环境中的暴露;手术室环境温度维持20-23.8℃;麻醉前对动物预保温。F.5.5.5其他循环回路、F型回路的使用可通过碱石灰在吸收二氧化碳及水分后会释放热量、同轴管作用加热循环气体;动物在严重低体温时35℃)会失去颤栗升温机制,可通过静脉给予右美托咪定(0.5μg/kgIV)或低剂量哌替啶(0.5mg/kg-1.0mg/kgIV)降低颤栗阈值,人为恢复该机制等。F.5.5.6理想的升温速度:0.1℃/h-0.5℃/h。F.6体温-高体温F.6.1原因在麻醉状态下,相比于低体温,动物很少出现高体温现象。体温过高可能与以下因素有关:动物的解剖结构或品种差异,如长毛动物、肥胖动物吸入的新鲜气体过少,外部热量供应过多,药物反应,高代谢疾病状态如发热、恶性高热、败血症、甲状腺功能亢进、嗜铬细胞瘤。所有麻醉动物都应进行仔细的体温监测,当动物出现喘或呼吸急促时通常被认为是麻醉过浅,请先核实体温,确认不是体温过高导致。所有阿片类药物都会导致猫出现体温升高,而猫在麻醉状态下,体温升高的程度和阿片类药物的类型相关,如完全μ受体激动剂(如二氢吗啡酮)更容易导致猫高体温。原因可能是体温调定点被改变,通常高热持续时间短暂,在3-4h内恢复正常(取决于所使用阿片类药物的代谢时间)。在这种情况下,使用NSAIDs并不能降低体温,但可使用拮抗剂(纳洛酮)逆转阿片类药物的作用,但要注意提供其他镇痛方法。F.6.2危害F.6.2.1轻微的高热(<40℃)不需要对症治疗。F.6.2.2当体温>42℃时,会发生细胞损伤,此时氧气的输送和代谢与耗氧量不同步。3T/CVMAXXXXX—XXXXF.6.2.3严重高体温:会导致多种器官功能障碍和衰竭:肾、肝、胃肠衰竭、心肌和骨骼肌、脑水肿、弥散性血管内凝血、低氧血症、代谢性酸中毒和高钾血症。F.6.2.4恶性高热:恶性高热是一种快速、持续的体温升高,与细胞内紊乱的钙循环代谢产生热量有关;可能发生肌肉强直(取决于细胞内钙的浓度)。F.6.3处理F.6.3.1移除外部热源、监测动物是否出现脱水或其他并发症。F.6.3.2吸入麻醉剂诱导恶性高热,应移除连接麻醉气体的管路,并经由其他管路来供氧以减少原本回路中可能残存的麻醉气体继续刺激动物。F.6.3.3可以静脉注射丹曲林(7mg/kg-10mg/kg)来降低动物的体温抵消恶性高热。F.6.3.4降温方式:改用冷电解质溶液行静脉输液;放置冷包于体表上;使用面罩提供100%的氧气来促进体内散热;酒精浴或将毛发喷湿再用电风扇加速降温;不可将动物过度降温,降温至40℃时,停止降温措施。注意输注和灌洗的液体不要过冷,室温适宜。F.6.3.5高体温时,除了降温外,更需要仔细监测有无其他并发症出现,保持动物镇静(视情况使用布托菲诺和乙酰丙嗪),持续吸氧。F.7通气不足与通气过量F.7.1测量工具F.7.1.1二氧化碳监测仪测量动物呼出气体中的二氧化碳(ETCO2)含量,并用波形来体现呼出气体的时刻变化。呼气中的二氧化碳值比动脉二氧化碳值低2mmHg-5mmHg。可大概估计通气程度。优点:操作方便、容易上手、可实时监测。主流型:在气管插管末端直接测量刚呼出的气体CO2浓度。优点:相比于旁流更精确及时。旁流型:从呼吸回路中抽取定量的气体传至监护仪的传感器中测量。优点:设备及耗材便宜,且易于延长,使用场景广。F.7.1.2动脉血气分析可直接测量PaCO2。优点:能真实反映体内CO2水平。非麻醉健康动物的正常值约31mmHg-37mmHg。麻醉状态下动物的正常值通常会高于非麻醉健康动物的正常值。约35mmHg-45mmHg。F.7.2测量值异常的生理原因F.7.2.1高(通气不足)F.7.2.1.1气道阻塞:气管塌陷、哮喘、喉麻痹、异物。F.7.2.1.2肺脏和小气道疾病:肺栓塞、肺水肿、肺炎、急性呼吸窘迫、慢性阻塞性肺疾病、肺纤维化。慢性阻塞性肺部疾病、急性呼吸窘迫综合征等情况下,动物肺泡死腔增大,其中的气体会稀释呼出的CO2浓度,导致ETCO2和PaCO2差异增大,差约5mmHg-10mmHg。F.7.2.1.3限制性肺外疾病:膈疝、气胸、胸腔积液、肿瘤。4T/CVMAXXXXX—XXXXF.7.2.1.4中枢神经系统抑制:麻醉药物诱导所致、神经系统功能异常。F.7.2.1.5医源性过热和恶性高热。F.7.2.1.6过度肥胖、胸外外力干扰(敷料包扎、手术操作压迫、体位)。F.7.2.1.7发热、颤栗(CO2生成增加)。F.7.2.1.8心动过速、可能引起脑血管扩张颅内压升高、当PaCO2>70mmHg时,会导致中枢神经抑制和昏迷。F.7.2.2低(通气过度)F.7.2.2.1过度通气:动物呼吸过快过深会导致气体交换过度,PaCO2测量值降低,但有肺功能障碍的动物PaCO2反而会因为喘进一步降低气体交换的能力从而导致PaCO2升高。F.7.2.2.2心输出减少:红细胞携带的CO2无法回到肺部进行气体交换。F.7.2.2.3极端低体温。F.7.2.3干扰因素F.7.2.3.1如果二氧化碳监测仪的采样频率超过患病动物的呼气频率,动物的吸入气体混入采样气体中,测得的数值会低于实际值(常见于猫)。F.7.2.3.2CO2吸收罐未更换、吸收能力降低、单向阀因呼气中的水汽导致粘连失效、机械死腔过大、导致呼吸回路内CO2变多及检测值升高。ETCO2波形的波形基线高于0,即FiCO2>0。F.7.2.3.3过度机械通气或辅助通气导致ETCO2值小于实际值。F.7.2.3.4

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