医院临床检验手册2016版(三)

目 录七、*医院临床检验标本采集转运的标准规程 .2八、*医院临床微生物标本正确采集规范 .7九、标本运输过程中破损、溢洒处理规范 .14十一、医学实验室检查值的医学决定水平简介 .172七、*医院临床检验标本采集转运的标准规程临床检验送检标本质量的高低，是否具有代表性直接关系到检验结果能否真实客观地反映患者当前的病情，即检验结果临床应用的可信度及有效性的问题，从质量管理诸多要素受检情况来看，检验方法的选择、仪器操作、试剂的使用等，检验人员可直接控制，故称之为完全自控要素，送检标本的质量是非检验人员所能控制的，因此，它称为非完全自控要素。它需要医师、 护士、患者和实验室的共同配合才能完成。它主要表现在分析前质量管理的三个方面即：患者准备、标本采集和标本转运。检验科为此特制定了*医院临床检验标本采集转运的标准规程，望各科室医师和护士配合此项工作，做到操作按标准，减少工作的失误，真正做到患者第一，病人至上的原则。现我院已使用 HIS、LIS 网络管理系统，所有标本均使用条码管理。一、血液标本的采集(一) 患者准备1、患者情绪：要求应在平静、休息状态下采集标本，特别是激素类标本。2、患者饮食：要求患者应空腹 8-12 小时内采集 标本(血液标本)。3、患者用药：原则上要求患者在用药前采集标本。4、向患者作好解释工作，减少患者的恐惧和紧张情绪，配合完成符合标准的样本采集。3(二) 标 本的采集1、采集时间的标准化：早晨空腹采血，即早晨 8-10 时。2、采集体位的标准化：以坐位为标准，特殊病人可例外( 采血体位可分为站姿、坐姿和卧姿三种) 。3、采集操作标准化：止血带使用时间应少于 1 分钟，也就是针穿刺进入血管后即刻放松止血带。4、防止标本溶血：标本溶血原因多为吸力过大、穿刺不顺造成血肿和抗凝剂比例不对等。5、根据检验项目， 选择相应的抗凝或不抗凝的采血管，防止错用采血管。6、输液时采血部位的选择：如果一侧手臂有静脉输液时，应到对侧手臂采血，避免血液被液体稀释或污染。若双侧手臂同时输液， 则应选择输液穿刺点的远心端取血，且避免采血部位距离输液处太近。(三) 标 本转 运静脉血采集后，应尽量减少运输和存放的时间，原则上尽快分离血清( 血浆)，尽早检验 。冬季露天转运要注意保温，防止标本被冻导致溶血。(四) 标 本的唯一性采用真空采血管应在标签上注明：送检科室、病人床号、病人姓名等内容，并使用条码管理标本。(五) 我院真空采血系统采集标本的具体要求。附表 14表 1、真空采血系统采集标本的具体要求项目 检验申请单 采血管 采 血 要 求 采血量 标本注明 抗凝剂 抽血时间 送检温度 采血管领取 采血程序生化 生化单(白色) 普通管(红帽) 空腹 5.0ml 科别床号姓名 无抗凝剂 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血肿瘤标志物 免疫单(红色) 空腹 5.0ml 科别床号姓名 无抗凝剂 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血激素类 免疫单(红色) 普通管（黄帽） 空腹 5.0ml 科别床号姓名 无抗凝剂 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血免疫 免疫单(红色) 空腹 3.0ml 科别床号姓名 无抗凝剂 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血血型 常规单(黄色) 普通管（白帽） 随机 1.8ml 科别床号姓名 无抗凝剂 随机 室温 设备科 无菌采血血常规 常规单(黄色) 随机 1.8ml 科别床号姓名 EDTAK 2 随机 室温 设备科 无菌采血伊红 C 计数 常规单(黄色) 随机 1.8ml 科别床号姓名 EDTAK 2 随机 室温 设备科 无菌采血网织红计数 常规单(黄色) 随机 1.8ml 科别床号姓名 EDTAK 2 随机 室温 设备科 无菌采血糖化血红蛋白 生化单（白色）常规管(紫帽)空腹 1.8ml 科别床号姓名 EDTAK 2 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血血凝四项 常规单(黄色) 血凝管（兰帽） 空腹 1.8ml 科别床号姓名 109mmol/L枸 橼 酸钠晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血常规管（紫帽） 空腹 1.8ml 科别床号姓名 EDTAK 2 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血血沉 常规单(黄色)血沉管（黑帽） 空腹 1.6ml 科别床号姓名 3.8%枸橼酸钠 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血CO 分析试验 常规单(黄色) 普通管 随机 1.0ml 科别床号姓名 无抗凝剂 床边即刻 室温 设备科 无菌采血成人血培养瓶 按医嘱 10.0ml 科别床号姓名 成人专用瓶 按医嘱 室温 检验科 无菌采血血培养 微生物单(兰色)儿童血培养瓶 按医嘱 1-5ml 科别床号姓名 儿童专用瓶 按医嘱 室温 检验科 无菌采血支原体、结合抗体、降钙素原、抗 ANA 谱等微生物单(兰色) 普通管(红帽) 空腹 1.8ml 科别床号姓名 无抗凝剂 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血血流变 、微量元素测定 生化单（白色） 抗凝管（绿帽） 空腹 5.0ml 科别床号姓名 无抗凝剂 晨 8-10 时 室温 设备科 无菌采血二、尿液标本的收集尿液标本的新鲜程度对尿液分析是头等重要的，收集尿液的容器要干净，使用一次性尿杯，可采用自然排尿或导尿，5尿量不得少于 10ml，尿液收集后要及 时送检。( ) 尿液的种类1、随机尿：留取任何时间的病人尿液，用于门诊随时检查。2、晨尿：留取病人上午 9-10 时第一次晨尿，此 标本最适合于可疑或已确认的肾疾患者尿常规检查。3、餐 后 尿 ：通 常 在 餐 后 2 小 时 收 集 尿 液 ，此 标 本 对 于 病 理 性 蛋 白 尿 、糖 尿 更 为 敏 感 ，午 餐 后 尿 对 尿 胆 原 检 查 特 别 有 益 。4、24 小时尿：第一天上午 10 时排空膀胱的尿液，再收集以后 24 小时内所有尿液标本。送检前混匀，取 10ml 送检。(二) 尿液容器的要求1、送检尿标本容器上应有标签，注明病人姓名、科别、床号和收集时间及检测项目，并贴上样本条码。2、容器只限一次性使用，应清洁，不含干 扰物质，若做细菌培养应取无菌尿，无菌管由检验科供给。3、容器应能密闭，容量不少于 20ml，开口直径不小于 4cm，底部 为平底。4、对儿科患者特别是新生儿，可用小型特殊的容器。(三) 收集尿量不得少于 10ml。(四) 标 本尽可能及 时送检，送检前要注意防止污染，闭盖转运。三、粪便标本的采集(一) 采集 粪 便标本的方法：因检查目的不同而有差别，一般常规检验应挑取约 5 克左右，放在 带小铲的粪便专用管内，6旋紧管盖，写明病人姓名、科别、床号、收集时间及检测项目等内容，并贴上样本条码。(二) 检查 痢疾阿米巴滋养体，应在排便后立即送检，冬季注意保温。四、体液和排泄物的标本收集(一) 脑脊液：由医 师采集标本，及 时送检，一般分常规管、生化管和网膜形成管，若遇高蛋白标本可用 100g/L 的EDTA-Na 抗凝或 3.8%的枸橼酸钠溶液抗凝。(二) 浆膜腔积液：由医师采集标本，及时送检，一般收集标本量为 100ml。同时注意防止凝固，抗凝剂为 100g/L 的EDTA-Na 或 3.8%的枸 橼酸钠抗凝。(三) 精液标本：用清洁干燥的样品杯收集，不宜贮存于避孕套内，及时送检。并写明病人姓名、科别、床号、收集时间及检测项目。(四) 前列腺液标本：由医师采集标本，将标本涂抹于清洁玻片上，立即送检。(五) 痰液 标 本：患者于清晨起床后刷牙、嗽口(先用 3%H2O2，再用清水嗽三遍)，用力咳出气管深处真正呼吸道分泌物，且勿混入唾液和鼻咽部分泌物。用于细胞学检查的痰，一般要求在上午 9-10 时留取及 时送检，因为清晨第一口痰，在呼吸道停留时间较长，细胞变性结构不清，不宜做细胞学检查，应尽量留取含血的病理性痰。查抗酸杆菌的痰宜用清晨第一口痰，量不可少于 5ml，幼儿痰液收集困 难时，可用消毒棉拭子刺激喉部引起咳嗽反射，用棉拭子取痰标本检查。(六) 阴道分泌物：标本采集由专科医师采集，及时送检。7五、临床细菌培养标本的采集（见*医院临床微生物标本正确采集规程）八、*医院临床微生物标本正确采集规范一、总则：正确的采集细菌培养标本是临床检验成功的标准。标本采集的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采集不符合要求，则细菌培养的结果毫无意义。若标本采集失当，造成污染，甚至使检验结果给临床以误导，延误 患者的正确治疗，造成严重后果。1、无菌操作采集标本应无外源性污染，特别是采集血液、脑脊液、穿刺液等无菌标本时，应严格无菌操作，避免杂菌污染。采集粪便、咽拭子等标本时虽无需要严格无菌操作，同时需要注意避免正常菌群污染。2、采集时间和部位在病程早期、急性期，应尽量在使用抗生素药物之前采集标本，同时注意选择合适的部位。3、盛放容器正常情况下，盛标本的容器必须是无菌的，特别是采集血液、脑脊液、穿刺液等无菌标本时一定要放置在无菌容器内。容器灭菌应采用干热、湿热和紫外线照射等物理灭菌法，不能用消毒剂及酸类处理。4、送检时间和方法8标本采集后要及时送检，如不能及时送检，可将标本放入运送培养基或保存液中保存运送，特殊病原菌要注意保温送检。5、安全防护送检过程中要注意安全。许多标本含大量病原菌，在采集、运送过程中必须注意安全，避免污染、传播或自身感染。二、血液细菌培养标本的采集临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。及时、准确地从患者血液中分离出病原菌，才能正确实施有效的抗菌治疗，从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。1、标本采集（1）、采血时机：一般原则在病人发热初期以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。在抗菌药物用之前。对已用药病情不允许停药的患者，也应在下次用药前采集。沙门氏菌感染根据病程和病情可在不同的时间采集标本，肠热症患者病程第 1-2 周内采集静脉血液，或在第 1-3 周内采集骨髓是最佳时间。肺炎链球菌的最佳 时间是在寒战、高热、或休克时，此时采集的样本阳性率较高。分枝杆菌感染初期，容易发生淋巴- 血液播散。把握早期采集血 样阳性率较高，当螺旋体感染时，应采集早期（1 周内）未用药物治疗前的血液。当回归热螺旋体感染时，螺旋体侵入人体后，约经 1 周潜伏期，可大量出现于血液内。病人在持续发热 1 周后可退热，血中螺旋体也可消失。间歇 1-2 周后，病人会再次发热，血中还可出现螺旋体。间歇性的采集血液样本可获得较高的阳性率。9（2）、采血次数及间隔：在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎，需要马上做抗生素治疗；急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者，在 24 小时内取血 3 次，每次间隔不少于 30 分钟。必要时再做血培养 2 次。对发热原因不明者 2次抽血间隔 60 分钟，必要时于 24-48 小时后再抽血 2 次。因为 1 次血培养不足以说明 问题，并会遗漏阳性结果。国外有人统计 1 次血培养可检出菌血症 80，2 次检出 96，3 次检出 99。国内统计 17 家医院 1 次血培养阳性率 10.8。18 家医院 2 次以上血培养阳性率 14.8。（3）、采血部位：一般在肘静脉，亚急性心内膜炎应从肘动脉或股动脉采血更好。多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌污染的可能。要避免从静脉插管内取血，因插管被污染，其培养结果不能反应真实情况，在不同部位取血两次，分离出同样菌种才是正确病原菌的有力的证据。（4）、采血量：成人菌血症或败血症的血液中含菌量较少，平均 1-3 毫升血液中仅有 1 个细菌。所以采血量一定要足够。成人一般为 10 毫升，骨髓采集量一般为 1-2 毫升。儿童和婴幼儿，分别采样 3-5 毫升和 1-2 毫升。有人引述多篇文章指出：对成人每增加 1 毫升血量平均能提高阳性率 3.2。（5）、无菌操作：无论采取何种方法，在血液培养的全过程，从皮肤消毒、标本采取、运送、分离移种等，皆应十分注意无菌操作。用头皮针为新生儿和婴幼儿取血时，应更换针头再将血注入培养瓶内。2、送检立即送检，某种原因不能立即送检时，应将标本放在室温中，切勿放入冰箱。因为某些苛养菌可在冰箱温度中死亡，10而使培养阳性率下降。三、呼吸道细菌标本的采集目前痰标本留取问题比较多， ，因为呼吸道系统为开放性器官，因为呼吸道有多种常居菌寄生。由于杂菌混入机会较多，痰中检 出的细菌不一定与疾病有关，有时还由于检查技术上的原因或病人已接受药物治疗，使有关的细菌受到抑制而查不出来。因此，应加 强临床医生与细菌学检验工作者之间的密切联系，这种联系对于疾病的诊治是十分必要的。1、标本采集（1）、咽拭子采集法：采集标本用的金属拭子或棉拭子，均应置于试管内，经高压灭菌后备用。采集标本前数小时，不可用消毒药物漱口或用药物涂抹病灶处。临采集标本时，嘱咐病人在留取标本之前，用清水反复漱口以减少正常菌群的污染。将拭子越过舌根到咽后壁或悬壅垂后侧，反复涂抹数次。采集标本后及时送检，以防干燥。检查白喉棒状杆菌时，令病人仰头