临床检验标本采集.ppt

2019/9/18,临床检验标本采集,2019/9/18,临床生物检验流程示意,临床标本,留取,环节一,运送,实验室,环节二,分析前,分析中,标本合格？,环节三,接种,培养,检测,门诊病房诊所,不合格,合格,环节四,环节五,分析后,报告,环节六,SOP,QC,IQ,培养基、冰箱 温箱、气体,直接检测,仪器设备、试剂,EQA标本,标本合格 判定,SOP,对每个环节进行控制，构成质量保证体系,+,2019/9/18,经过规范培训的采集者 + 全程执行规范的标本采集操作程序 = 提供生物典型样品,2019/9/18,常见标本类型,血液：静脉血、动脉血、混合静脉血、毛细血 管血 体液：尿液、粪便、浆膜腔积液、脑脊液、胃 液等 微生物：血培养、痰培养、尿培养、鼻咽拭子、穿刺液、分泌物、导管等 组织物,2019/9/18,血液标本采集,静脉血、动脉血、混合静脉血、毛细血管血,2019/9/18,静脉血标本采集,临床实验室以静脉血为标本的检验项目比例占全部项目的90% 任一环节的疏漏将发生不可估计的错误（错误鉴别标本、溶血、抗凝剂比例不当、血肿形成、血液浓缩或稀释）,2019/9/18,静脉采血用物,2019/9/18,2019/9/18,2019/9/18,采血部位选择,肘正中静脉-首选 头静脉-可选 手背静脉-可选 一般不选-贵要静脉 （易损伤动脉及神经） 动脉穿刺替代 静脉穿刺,2019/9/18,被忽略的细节,长时间扎紧止血带以充盈血管 止血带使用2min 束臂时间过长可至局部血液浓缩或激活凝血系统 使用血压计压力套，压力=40mmHg 穿刺成功后立即释放对静脉的压力，2-5秒后再留取标本。 使血液循环，消除止血带对局部血液质量的影响,临床检验标本采集手册,2019/9/18,被忽略的细节,采血过程中采血管底部应低于采血针前端 采集足量标本并立即使血液与试剂充分混合 避免剧烈摇晃 任何制剂的消毒液都需自然晾干方可穿刺 基于生物安全因素，不建议使用注射器采血,临床检验标本采集手册,2019/9/18,真空采血管注血顺序,1 血培养瓶：厌氧菌培养瓶、需氧菌培养瓶 2 凝血项目采集管（蓝） 3 无添加物管/含促凝剂管/分离胶试管（红、黄） 4 肝素管（绿） 5 EDTA抗凝管（紫） 6 糖酵解抑制剂管（灰） 蓝 红 黄 绿 紫 灰,2019/9/18,凝血试验注意事项,采血量与抗凝剂比例将影响血浆Ca2+浓度 蝶翼型采血针避免空气对采血量的影响 如允许范围内血量不足需正确及时释放负压、避免CO2散失,2019/9/18,自动、静脉置管采集血标本,却保密封，避免空气混入导致溶血、凝血、血量不足 考虑肝素化和样本稀释 管道需用5ml盐水冲洗，并弃去6倍无效腔体积的血,临床检验标本采集手册,2019/9/18,动脉血采集,评估病人呼吸和代谢状况的首选标本 全身各部位成分基本一致、恒定 动、静脉血区别： O2、CO2、PH、乳酸、CL-、葡萄糖等,2019/9/18,物品准备,2019/9/18,病人准备,进食 体温 呼吸模式 吸氧浓度 如果氧浓度发生改变，至少等待2030min后方可采血,2019/9/18,穿刺部位的选择,良好的侧支循环*：改良ALLEN试验/B超 浅表易触及的动脉 动脉周围组织 桡动脉* 足背动脉 肱动脉 股动脉,2019/9/18,动脉采血危险因素,血管迷走神经反射 动脉痉挛 血肿 血栓形成或栓塞,2019/9/18,毛细血管血采集,局部温热（42。35min）处理可增加7倍动脉血液流量。 避免过度挤压至组织液渗出,2019/9/18,体液标本采集,尿液、粪便、浆膜腔积液、脑脊液、胃液等,2019/9/18,尿标本采集,晨尿：标本较浓缩，有形成分完整 尿常规、尿沉渣、hCG等 随机尿 晨尿在膀胱停留时间长，偏酸，不利于检出酸性环境易变的物质（葡萄糖、盐酸） 建议采集第二次晨尿代替首次晨尿,临床检验标本采集手册,2019/9/18,尿标本采集,24h尿：尿肌酐、尿蛋白定量、尿电解质等 送检量50ml，充分混匀，标记总尿量 尿沉渣分析或结核杆菌检查可留取尿沉淀部分 12/3h尿：细胞、管型等有形成分计数、细胞排泄率 防腐剂：甲醛、甲苯、浓盐酸、麝香草酚,临床检验标本采集手册,2019/9/18,粪便标本采集,异常粪便：取黏液、脓、血等病变部位 无异常粪便：取表面、深处多部位取样,2019/9/18,浆膜腔积液,胸、腹膜腔、心包积液：无菌技术穿刺取样 第一管：病理、微生物学检查 第二管：肝素抗凝作化学、细胞学检查 第三管：干燥试管作一般性状、凝固性检查,2019/9/18,其他体液,脑脊液 胃液 引流液,2019/9/18,微生物学标本采集,血培养、痰培养、尿培养、鼻咽拭子、穿刺液、分泌物、导管,2019/9/18,血培养标本采集,采血时机 最好在抗菌治疗前 ,以正在发冷发热时或 发冷发热前半小时为宜。 采血部位 应从身体不同部位采血（双侧双瓶），以排除皮肤菌丛污染的可能；要避免从动静脉导管内及肝素帽穿刺取血；用来培养的血应该是静脉血,2019/9/18,血培养标本采集,方法 1消毒皮肤：面积、时间 培养瓶去帽75%酒精消毒 2双针采血系统穿刺采血 3先注厌氧瓶再注需氧瓶 标本量 成人抽取810ml 婴幼儿或儿童抽取14ml,2019/9/18,中心静脉导管血标本采集,1消毒 2弃去前段0.51.0ml液体 3留取0.51.0ml血液（注入儿童血培养瓶） 4肝素水封管,2019/9/18,标本送检,采集的标本需立即送检， 若不能立即送检，应置于35温箱或室温，绝不可放置冰箱,2019/9/18,痰培养标本采集,下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学诊断起着重要作用 ,但目前亦存在着严重的问题 标本的质量问题 ,因此 ,往往造成作出的病原学诊断和实际引起感染的病原菌脱节 ,以致造成抗菌药物的应用不合理甚至耐药菌的出现或流行,2019/9/18,痰培养标本采集,自然咳痰：无菌生理盐水反复漱口，必要时行雾化吸入，咳气管深处痰液（非口水），晨痰检出率高 吸痰器留痰：吸痰管外径1/2人工气道内经 支气管肺泡灌洗（PBAL）：厌氧菌 经纤维支气管镜防污染双套管毛刷（PS） 经胸壁穿刺肺吸引（LA） 环甲膜穿刺经气管吸引（TTA）,2019/9/18,尿培养标本采集,中段尿：ICU患者如何实施 留置尿管：夹闭尿管30min，消毒采样口，无菌注射器自采样口抽取510ml标本置无菌试管送检 膀胱穿刺 不可打开导尿管和引流管连接处收集标本 培养用的尿液标本也不能从引流袋中留取 尿培养标本禁止加入防腐剂,2019/9/18,伤口分泌物采集,开放性脓肿和脓性分泌物： 生理盐水冲洗创面 注射器抽取/拭子擦取脓液、分泌物 封闭性脓肿 大