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文档简介

细菌总DNA(total DNA, genomic DNA)提取和凝胶电泳检测总DNA(total DNA, genomic DNA)凝胶电泳1.学习细菌总DNA提取的原理和方法2. 学习琼脂糖凝胶电泳方法关键词:电泳凝胶细菌细菌总DNAtotalDNAgenomic提取凝胶电泳基本概念:总DNA(total DNA, genomic DNA)凝胶电泳实验目的1.学习细菌总DNA提取的原理和方法2. 学习琼脂糖凝胶电泳方法实验材料1.菌种自己分离纯化后的细菌菌株2.试剂TE、溶菌酶溶液(20mg/ml)、10% SDS、蛋白酶K(20mg/ml)、5mol/L NaCl酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)、乙醇3. 仪器高速台式离心机、紫外检测仪4. 其他材料:离心管、无菌吸头、移液器等实验步骤和过程(一)细菌总DNAD 提取革兰氏阳性菌DNA提取方法(提取基因组DNA)1. 3-6ml 细菌过夜培养液, 5000rpm离心10分钟, 弃上清2. 加0.5ml TE悬浮沉淀,并加75l 溶菌酶(20mg/ml)溶液,40C保温30分钟3. 加50l, 10% SDS, 5l 蛋白酶K (20mg/ml),混匀, 37保温30分钟4. 加0.75ml, 5mol/L NaCl, 混匀5. 用等体积酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)抽提, 5000rpm离心10分钟, 将上清液移至干净离心管6. 用等体积氯仿:异戊醇(24:1)抽提, 静置10分钟,5000转离心10分钟,转移上清到干净管中。7. 加2倍体积乙醇沉淀DNA, 颠倒混合, 室温下静止10分钟,离心沉淀DNA8. 70%乙醇漂洗DNA后, 吸干, 用30-50l TE溶解DNA, -20保存革兰氏阴性菌总DNA提取方法方法一:1. 将菌液悬于1.5ml溶菌酶溶液(0.15mol/l Nacl, 0.1mol/l Na2EDTA, 15mg/ml溶菌酶,pH=8).2. 37温浴2h,3. 加入1.5ml 10%SDS(0.1mol/l Nacl,0.5mol/l Tris,10%SDS,pH=8)反复颠倒混匀10min,10000r/min离心10min,取上清4. 用等体积苯酚:氯仿:异戊醇各抽提1次,水相中加入40l的3mol/l乙酸铵和3ml无水乙醇,-20沉淀DNA1h,12000r/min 离心10min5. 收集DNA沉淀,用100l TE溶解方法二:1. 加入DNA提取液100 mmol/l,(Tris100 mmol/lEDTA,100 mmol/lNacl,1%pvp , 2%SDS,pH=8)旋涡混匀2. 在摇床上250 r/min振荡2h,4沉淀DNA 1 h,13000 r/min离心10min收集DNA 沉淀3. 用100lTE溶解DNA方法三:1.加入DNA提取液(100 mmol/l,Tris100 mmol/lEDTA,100 mmol/l磷酸钠,1.5mol/l Nacl,1%CTAB,pH=8),20l蛋白酶K(20mg/ml)和500l溶菌酶(0.15mol/l Nacl,0.1mol/l Na2EDTA, 15mg/ml溶菌酶,pH=8),37温浴2h。2.加入1 ml 20%SDS,65水浴过夜3.加入1/3倍体积饱和Nacl,剧烈振荡,12000 r/min 离心10min4.取上清,用等体积苯酚:氯仿:异戊醇各抽提1次,水相中加入等体积TE,再加入0.6倍体积的异丙醇室温沉淀DNA 2h5.12000 r/min 离心10min收集DNA沉淀,用200lTE溶解细菌DNA提取如果是革兰氏阴性菌可采用以下方法(热烈解法):(1)细菌过夜振荡培养,(2)离心取菌体,(3)500L灭菌双蒸水洗一次,(4)离心取菌体,(5)用适量灭菌水(视菌体浓度,通常70200L)重悬,(6)100水浴10min,置于冰上5min,(7)1300rpm离心510min,(8)取上清,即为总DNA,4或-20保存。下面方法适用于革兰氏阳性和阴性菌(1)菌体培养,获得足够的菌体,(2)菌体收集,(3)辅助裂解:如果是G+菌,应先加溶菌酶100g/mL 50L。37处理1h。(4)裂解:向每管加入200L裂解缓冲液缓冲液含(终浓度)40mmoL/L Tris-HCl,pH8.0 20mmol/L乙酸钠,1mmol/L EDTA,1SDS,用吸管头迅速强烈抽吸以悬浮和裂解细菌细胞;(5)接着向每管加入66L 5mol/L NaCl,充分混匀后,12 000r/min离心10min,除去蛋白质复合物及细胞壁等残渣;将上清转移到新离心管中,加入等体积的用Tris饱和的苯酚,充分混匀后,12 000r/min离心3min,进一步沉淀蛋白质;(7)取离心后的水层,加等体积的氯仿,充分混匀后,12 000r/min离心3min,去除苯酚。小心取出上清用预冷两倍体积的无水乙醇沉淀,15 000r/min 高速离心15min,离心弃上清液。(9)用400L 70的乙醇洗涤两次。(10)(真空)干燥后,用50LTE或超纯水溶解DNA,-20冰箱放置备用。还有方法适用于革兰氏阳性和阴性菌(饱和酚法)(1)收集细菌培养物,加入565L的TE缓冲液,轻轻吹打使重悬,(2)加30L的10% SDS和20mg/ml的蛋白酶K,混匀,37孵育3h以上或过夜,(3)将溶液冷却至室温,加入等体积的(600L)饱和酚,缓慢来回颠倒离心管10min,以小心混合,13000min离心5min以上,(4)取上清至另一管中,再加入等体积的氯仿:异戊醇(24:1),离心,(5)取上清至另一管,加入1/10体积的pH5.0 3M的NaAC和2倍体积的无水乙醇,混匀,-2015min以上,再离心12000rpm 15min,(6)纯点用75%乙醇洗一次,去上清,干燥,(7)加入50L的pH8.0的TE缓冲液,-20保存。细菌总DNA的提取和鉴定点击次数:130 发表于:2008-07-08 17:32转载请注明来自*来源:互联网【目的和要求】1.学会CTAB法提取细菌总DNA。2.掌握DNA的琼脂糖凝胶电泳法。【实验原理】DNA在生物体内是与蛋白质形成复合物的形式存在的,因此提取出脱氧核糖核蛋白复合物后,必须将其中蛋白质去除。CTAB(溴代十六烷基三甲胺)是一种去污剂,它能与核酸形成复合物,在高盐溶液中可溶并且稳定存在,若降低盐浓度,CTAB与核酸的复合物会沉淀出来,而大部分蛋白和多糖仍溶于溶液中。DNA的电泳原理与蛋白质的电泳原理基本相同。DNA分子在高于其等电点的pH溶液中带负电荷,在电场中向正极移动。由于DNA分子或DNA片断的分子量差别,电泳后呈现迁移位置的差异。【实验试剂和器材】(一)试剂:菌株(E.coli );蛋白酶K(20mg/ml);琼脂糖;标准DNA水解液1.10%SDS2酚/氯仿/异戊醇(1/1/1)3.异丙醇;70%乙醇4LB培养基:蛋白胨10g,酵母粉5g,NaCl 10g加蒸馏水至1升,然后灭菌备用。5TE缓冲液:10mM Tris HCl,0.1mM EDTA (pH8.0)。6 CTAB/NaCl溶液(5% w/v):5g CTAB 溶于100ml 0.5M NaCl溶液中,需要加热到65使之溶解,然后室温保存。7TAE缓冲液(50)(pH8.0):每升溶液中含有242g Tris,57.1ml 冰乙酸,100ml 0.5mol/L EDTA。电泳时稀释成1 浓度使用。8溴酚兰-甘油指示剂:先配制0.1%溴酚兰水溶液,然后取1份0.1%溴酚兰溶液与等体积的甘油混合即成90.5g/ml 溴乙啶染液:称取5mg溴乙啶,用重蒸水溶解定容到10ml,取1ml此溶液用1xTAE缓冲液稀释到1升,最终浓度为0.5g/ml。(二)器材:锥形瓶(250ml),1.5ml 离心管,水浴锅,离心机,电泳槽,电泳仪,摇床,移液枪,洁净工作台,电磁炉,紫外成像仪【实验方法】(一)细菌总DNA的提取1.将菌株接种于液体LB培养基,37震荡培养过夜。2.取1.5ml培养物12000rpm离心2min。3.沉淀物加入567l的TE缓冲液,反复吹打使之重新悬浮,加入30l 10%SDS和15l的蛋白酶K,混匀,于37温育1h.4.加入100l 5mol/L NaCl,充分混匀,再加入80l CTAB/NaCl溶液,混匀后再65温育10min。5.加入等体积的酚/氯仿/异戊醇混匀,离心4-5min,将上清转入一只新管中,加入0.6-0.8倍体积的异丙醇,轻轻混合直到DNA沉淀下来,沉淀可稍加离心。6.沉淀用1ml的70%乙醇洗涤后,离心弃乙醇,在洁净工作台中稍加干燥,重溶于20l TE缓冲液(含RNaseA-25ng/ml)中,准备电泳检测。(二)琼脂糖凝胶电泳1.制胶:称取琼脂糖粉末,置于三角瓶中,加入TAE缓冲液配成0.8%的浓度,加热使琼脂糖全部融化于缓冲液中,待溶液温度降至65时,立即倒入制胶槽中,插入样品梳。在室温放置0.5-1h,待凝胶全部凝结后,轻轻拔出样品梳。然后在电泳槽中加入电泳缓冲液直到没过凝胶为止。2.加样:取0.5-1g 左右的样品,体积为10-20l,加入1/4体积的溴酚兰-甘油指示剂,混匀后小心地加到样品槽中。同时另取一个已知分子量的标准DNA水解液,在同一凝胶板上进行电泳。3.电泳:维持恒压100V,电泳0.5-1h,直到溴酚兰指示剂移动到凝胶底部,停止电泳。4.染色:将凝胶取出后浸入0.5mg/ml 溴乙啶溶液中,染色0.5-1h。染液可反复多次使用。5.观察:将凝胶板置于254nm波长紫外灯下进行观察。DNA存在的位置呈现橙黄色荧光。【注意事项】1.溴乙啶有毒,配制和使用溶液时要戴手套,勿将溶液滴洒在台面或地面上。溴乙啶溶液于室温保存在棕色瓶中。2.倒凝胶板时不要太厚,否则影响电泳效果。谢谢各位战友了!您好,请问灭菌水的是什么啊?去离子水或者蒸馏水121度灭菌 细菌DNA提取方案细菌DNA提取方案:革兰氏阴性菌,如E.coli,一般有三种可以选择的方法。 一、水煮模板法主要用于PCR反应1、接种单菌落于LB或脑心平板,连续画线,37摄氏度培养1824小时。2、刮取12接种环菌苔加入150微升三蒸水中,混匀,100摄氏度煮沸10分钟。3、12000转/分钟 离心10分钟,取上清,20摄氏度保存备用。操作最简便,对试剂条件要求低。缺点是纯度不够高,可能会含有RNA、蛋白等杂质。但是作为一般检测目的的PCR反应模板已经足够了。有人称扩增4kb以下片段都可用此种方法制取模版,编者用此类模板PCR可以扩增到3500bp的片段。编者建议:此法得到的模版保存时间短,强烈建议每月重新制作一次。二、CTAB/NaCl 法1、接种一单菌落于5mlLB中,30培养过夜,2、取1ml种子培养液接入100ml2%LB中,37、220r/min培养16小时;3、5000r/min离心10分钟,弃去上清。4、加入10mlTE离心洗涤后,用10mlTE溶解菌体,混匀,-20保存备用。5、取3.5ml菌悬液,加入184l10%SDS,混匀,加入37l10mg/ml蛋白酶K,混匀,37温育1小时6、加入740l5mol/LNaCl,再加入512lCTAB/NaCl,混匀,65温育10分钟。7、加入等体积的氯仿/异戊醇,混匀,10000r/min离心5分钟,保留上清。8、上清中加入等体积的酚氯仿异戊醇(25241),混匀,10000r/min离心5分钟,保留上清。9、加入0.6倍的异丙醇,混匀,10000r/min离心5分钟,收集DNA沉淀,用70%乙醇离心洗涤DNA沉淀。10、用1mlTE溶解DNA,加入终浓度为20g/mlRNaseA,4保存。CTAB/NaCl法提取的DNA纯度较高,蛋白杂质较少,保存时间长,编者更喜欢把终浓度为20g/ml RnaseA加在第5步温育的时候,这样最后没有RnaseA污染。每一步操作细致一些,得到的DNA可用于Southern blot。编者建议:长时间保存DNA可放于-20,但要尽量减少反复冻融,否则影响DNA质量。三、盐析法1、1.5ml对数期菌液2、12000rpm 30 s3、200ul裂解液(同CTAB/NaCl法),37c,1hr4、66ul 5M NaCL,混匀充分,12000rpm 10min5、上清用粗枪头取至新管6、等体积酚充分混匀,12000rpm 3min,反复抽提至无蛋白层7、取水层,等体积氯仿混匀,12000rpm 3min8、上清至新管,2倍体积预冷无水乙醇9、-20C,20min,14000rpm, 15min10、400ul 70%冷

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