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米糠多糖的提取研究及米糠中水溶性维生素的测定 (江南大学化学与材料工程学院,江苏无锡214122)摘要:微波浸提法研究了米糠多糖的提取,HPLC法同时测定了米糠中4种水溶性维生素。料液比为1:8在50微波火力条件下浸提30min,三氯乙酸去蛋白,两步去淀粉,30醇沉,米糠多糖得率达1.41%。以体积比为88:12的0.1磷酸水溶液-甲醇为流动相,以0.6 mL/min流速等度洗脱,在266nm波长下检测。各组分在8min能基线分离。米糠中VB1、VB6、烟酸和烟酰胺的含量分别为7.710-6 g/g、1.310-6g/g、14.910-6 g/g、16.210-6 g/g。关键词:米糠;多糖;微波浸提;水溶性维生素;高效液相色谱Study on Microwave Assistant Extraction of Rice Bran Polysaccharides and Determination of Water-Soluble Vitamins in Rice BranAbstract: Microwave assistant extraction has been applied for polysaccharides in rice bran samples. The best technology were that the material-water ratio was 1:8, the time of microwave assistant extraction was 30 min under 50% firepower. It was proved that -amylase could wipe off amylum effectively by two steps, and trichloroacetic acid method was the best way to wipe off albuminoid. And the ethanol concentration was 30%, the extraction rate of the water-soluble polysaccharides of rice bran was 1.41%.High performance liquid chromatography (HPLC) has been applied for the simultaneous determination of four kinds of water-soluble vitamins including vitamin B1, vitamin B6, nicotinic acid, and nicotinamide in rice bran. The separation was performed on a Hypersil C18 column (250 cm4.6mm i.d., 5.0 m) with a mobile phase of 0.1% H3PO4- methanol (88:12, V/V) at flow rate of 0.6 mL /min, and detection wavelength was 266 nm. Baseline separation of four vitamins can be achieved within 8 minutes.The content of 7.710-6 g/g、1.310-6g/g、14.910-6 g/g、16.210-6 g/g for vitamin B1, nicotinic acid ,vitamin B6 and nicotinamide.Key words: rice bran; polysaccharides; microwave assistant extraction; water-soluble vitamins; high performance liquid chromatography米糠是一类具有广泛开发潜力的高附加值资源,含有稻米的64营养物质及90人体所需要的各种营养元素1,包括维生素、米糠多糖、氨基酸、脂肪酸、矿物质,还有二十八碳烷醇、神经酰胺等生理功能卓越的活性物质2。米糠多糖(Rice Brain polysaccharide,RBP)存在于稻谷的颖果皮层里,主要是指分子量不等的一类非淀粉多糖。采用不同的提取工艺会得到不同的米糠多糖组分。米糠多糖具有广泛的生理活性,在抗肿瘤,增强免疫力,降血糖,降脂方面有显著效果;水溶性维生素是一类重要的营养成分,在各种保健品3,功能型饮料中得到应用。烟酸和烟酰胺能够促进头皮血液循环,防止脱发;VB6具有美发功效;VB1具有滋养与深层清洁的作用,因此化妆品中也常添加微量的维生素4。因此,本实验对这两种活性成分进行了研究。多糖提取的方法有微波浸提法,热水蒸煮法,超声波提取法等。实验中考察了米糠多糖的提取方法及去除杂质方法。选取较优的微波提取法,并对其提取工艺参数进行了进一步优化。测定维生素的方法有紫外分光光度法5、荧光法6和高效液相色谱法(HPLC)7。但HPLC技术用于米糠中水溶性维生素的测定还未见报道。实验采用HPLC建立了米糠中的水溶性维生素的测定方法,对样品前处理方法进行了研究,对测定体系各影响因素进行了优化。方法简便快速,准确可靠,对复杂体系中水溶性维生素的测定具有重要的参考价值。一 米糠多糖的提取研究1. 米糠多糖的提取1.1 实验材料米糠:无锡秦良商贸有限公司耐高温-淀粉酶:无锡酶制剂厂,20000IU/g试剂:无水乙醇、石油醚、三氯乙酸、盐酸均为分析纯,购自国药集团化学试剂有限公司。1.2仪器722型可见光分光光度计;LD4-2A型台式离心机;Panasonic微波炉;真空冷冻干燥机。1.3实验方法1.3.1 米糠样品的前处理将米糠用石油醚按1:3比例脱脂1小时,重复3次,自然干燥。1.3.2 用改进的硫酸-苯酚法测米糠多糖含量1.3.2.1 显色剂的制备将50 mL浓硫酸缓缓加入10 mL水中,冷却至室温,加入0.6 g苯酚晶体搅拌使其溶解配成显色液。1.3.2.2 硫酸-苯酚法测米糠多糖含量取1.00 mL稀释一定倍数的糖液于试管中加入5.00 mL显色液振荡混匀;取1.00 mL蒸馏水于试管中加入5.00 mL显色液振荡混匀,得到参比溶液。将标准溶液和参比溶液置于沸水浴中保温3035 min,取出后放在冷水浴中冷却至室温,于490 nm波长处测定其吸光值。传统的硫酸-苯酚测糖法的操作过程是:取1.00 mL样品加1.00 mL水,加1.00 mL 6 %苯酚摇匀后再加入5 mL浓硫酸,振荡显色,静置30 min后,于490 nm处检测其吸光度。加入硫酸时系统显色温度相差较大,而造成相应的偶然偏差。而改进后的方法,由于先把水和硫酸混合,对浓硫酸起到了稀释作用,用冰水冷却最后加入苯酚晶体,配成显色液。通过沸水浴加热来使其显色,保证了反应系统温度一致,很好地解决了检测重现性与准确度的问题。1.3.3去除杂质方法的比较在多糖提取的过程中,蛋白与淀粉的去除会影响到多糖的纯度与得率。因此本实验采用50%微波火力浸提30min,重复两次提取。考察了Sevage法与三氯乙酸法去蛋白法;同时也考察了淀粉一步消化法与两步消化法。正交实验见表1。实验结果见图 1。Sevage法三氯乙酸法一步消化法两步消化法30%醇沉 由此可以看出:淀粉一步消化所得多糖略高于两步消化所得,可能是由于在较短的时间内淀粉未去尽,而淀粉本身就是一种多糖物质,为了得到较纯的米糠多糖,实验优先考虑采用两步消化法;在去蛋白的方法中,比较、得知,采用Sevage法与三氯乙酸法所得米糠多糖含量差别不大,考虑到Sevage法毒性较大,耗时较长,实验优先考虑三氯乙酸法。图 1 正交实验结果1.3.4 米糠多糖提取方法选择1.3.4.1 微波浸提法脱脂米糠与pH=5的盐酸水溶液以料液比为1:10混合置于50微波火力下浸提30min,冷却,离心得上层液,重复提取两次,合并上层液。在上层液中加入0.5的耐高温-淀粉酶于70oC的水浴锅中保温消化2小时后,再加入0.25的0.5的耐高温-淀粉酶,在相同的条件下保温消化15小时,离心得上清液。用30的三氯乙酸调节上述得到的上清液的pH4.5(即米糠蛋白等电点,pI),置于4oC冰箱中静置过夜,使得米糠蛋白得以充分沉淀。离心得上清液。在上述得到的上清液中,加入无水乙醇,使其含量为30(V/V),置于4oC冰箱中静置过夜,离心,得到米糠粗多糖RBPa溶液。用722型分光光度计测其吸光值,计算米糠多糖含量。1.3.4.2热水蒸煮浸提法脱脂米糠与pH=5的盐酸水溶液以料液比为1:10混合置于110oC水浴锅中,使其保持沸腾状态2小时,期间不断搅拌,定时补入损失的水分,冷却,离心得上层液,重复提取两次,合并上层液。下续步骤同1.3.4.1。1.3.4.3 超声波浸提法 脱脂米糠与pH=5的盐酸水溶液以料液比为1:10混合,在80oC条件下超声提取30min,冷却,离心得上层液,重复提取两次,合并上层液。下续步骤同1.3.4.1。1.3.5比较结果 上述方法均是参考了有关文献报道,采用的提取率相对较高的实验条件。通过722型分光光计对两种糖含量的测定,见图2。可见,微波法不仅在提取时间而且在糖的浸出率方面更具有优势。因此实验采用微波浸提法,并对提取时间,提取火力进行了研究。 图 2 3种提取方法所得米糠多糖含量1.3.5 微波浸提工艺1.3.5.1 微波提取 脱脂米糠与pH=5的盐酸水溶液以料液比为1:8混合,分别在50微波火力条件下浸提30min(),50min();100微波火力条件下浸提30min()、50min()。冷却,离心。各重复两次提取,合并上层液。1.3.5.2 两步消化法去除淀粉 在上层液中加入0.5的耐高温-淀粉酶于70oC的水浴锅中保温消化2小时后,再加入0.25的0.5的耐高温-淀粉酶,在相同的条件下保温消化15小时,离心得上清液。1.3.5.3 三氯乙酸去除蛋白质 用30的三氯乙酸调节上述得到的上清液的pH值4.5(即米糠蛋白等电点,pI),置于4oC冰箱中静置过夜,使得米糠蛋白得以充分沉淀。离心得上清液。1.3.5.4乙醇沉淀米糠多糖在上述得到的上清液中,加入无水乙醇,使其含量为30(V/V),置于4oC冰箱中静置过夜,离心,得到米糠粗多糖RBPa。1.3.5.5 不同提取条件下米糠多糖含量比较 图 3 微波提取4种条件所得米糠多糖含量 由图 3得知,微波提取条件,可见微波火力增大会对多糖造成一定的破坏;提取时间过长也存在同样的情况。当微波辐射时间一定时,微波火力越高,物系吸收微波能越多,物系温度升的越快,固液传质速度亦越快;且温度越高,对物料细胞破坏作用越大,有利于物料有效成分浸出。但当微波火力增加到一定程度时,微波有可能促使米糠多糖分解,反而使米糠多糖提取率下降。1.3.5.6 真空冷冻干燥将微波方法所得的米糠多糖RBPa透析48小时后,冷冻干燥得到RBPa的固体粉末。2讨论因此,脱脂米糠与pH=5的盐酸水溶液以料液比为1:8混合,三氯乙酸法去除蛋白,两步法去除淀粉,在50微波火力条件下浸提30min()为最佳米糠多糖提取方法。米糠得率为1.41。RBPa为淡黄色絮状固体,无味。苯酚硫酸试剂反应均呈棕红色,与碘反应不显蓝色;易溶于水,不溶于乙醇、乙醚和丙酮,无甜味,无挥发性,水溶液为浅黄色。二、高效液相色谱法测定米糠中的水溶性维生素1 实验部分1.1 仪器、试剂与样品仪器: Waters505高效液相色谱仪(包括2487紫外检测器), Empower色谱工作站。色谱柱:Hypersil C18(250 cm4.6mm i.d., 5.0m)。超声波振荡器(BRANSON SB 3200T,上海);固相萃取柱(固相PT-系列,河北省津杨滤材厂)等。试剂: VB6(纯度 99)、烟酰胺(纯度 99)、烟酸(纯度99.5)、VB1(纯度98)。均购自国药集团化学试剂有限公司(上海);甲醇为色谱纯,水为超纯水,其他试剂为分析纯。米糠样品来源于无锡秦良商贸有限公司。1.2 色谱条件色谱柱:Hypersil C18 柱(250 cm4.6mm i.d., 5.0m), 流动相:A: 0.1 %磷酸水溶液, B:甲醇,以体积比 A:B=88:12等度洗脱;流速为0.6 mL/min。检测波长:266nm;进样量 20 L。1.3试液的制备1.3.1标准溶液的制备精确称取约0.05g的四种维生素标准品,用0.01mol/L盐酸溶解并稀释到50 mL,摇匀,分别得到1.3610-3 g/mL,1.1810-3 g/mL,1.0410-3g/mL和1.00 10-3.g/mL的 VB1,VB6,烟酸和烟酰胺的标准储备液,于4冰箱中保存。储备液用流动相稀释得所需浓度的标准溶液。1.3.2 米糠供试品溶液的制备取10.00g米糠于100mL锥形瓶中,加入20mL混合溶剂(体积比为80:20的甲醇0.01mol/L盐酸溶液)超声提取30min,过滤,滤渣用相同的条件重复提取两次,合并提取液。用旋转蒸发仪蒸发浓缩,浓缩液用无水乙醚萃取两次脱脂,水相经0.45m滤膜过滤,再过固相萃取柱,定容至10mL容量瓶中,即得米糠供试品溶液。2结果与讨论在上述色谱条件下,四种维生素在8min内达到基线分离,得到4种维生素的标样图,见图1t/min图1 水溶性维生素混合标准溶液色谱图 峰标:1.VB1; 2.烟酰胺;3.烟酸;4.VB62.3方法学评价2.3.1 重现性试验取4种维生素的标准储备液等体积混和,然后稀释16倍,在上述优化实验条件下连续5次进样,测得其峰面积及保留时间的相对标准偏差(RSD)均小于2,结果表明其重现性较好。如表1所示表1 重现性试验组分RSD(%) (n=5)保留时间峰面积VB10.040.70烟酸0.050.50VB60.122.0烟酰胺0.040.792.3.2标准曲线及检出限配置了一系列不同浓度的 VB1、VB6、烟酸和烟酰胺的混合标准溶液,在优化的实验条件下,进行了测定,得出各组分的线性回归方程、线性范围,并以3倍信噪比得到检测限,结果如表2所示。结果显示线性范围宽,检测限低。表2 回归方程及检测限组分线性范围/(g/mL)回归方程R2 检测限/ (g/mL)VB18.510-78.510-5Y=5.84107X+28.420.99994.310-7烟酸9.310-76.510-5Y=4.91107X+7.070.99993.210-7VB61.010-67.410-5Y=1.45107X+65.270.99993.410-7烟酰胺6.010-76.210-5Y=6.06107X5.910.99993.010-72.4 样品的测定及回收率实验按1.3.2和1.

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