细菌质量控制

临床细菌学质量控制曲月英,黑龙江省临床检验中心,细菌质控分为室内质控室间质评两部分,室内质量控制,临床细菌学室内质控工作是细菌检验工作中心。是随临床检测同步进行的一项常规工作；是临床检测工作的一项重要组成部分。它贯穿于实验室所有的工作环节和每一个检测项目。室内质量控制工作可使检测结果的重现性得到最大限度的保证，同时还可及时发现实验中存在的问题，如操作程序或手法、实际质量、环境温度等方面的问题。尽量减少并检测由这问题造成的结果偶然性偏差。 3,室内质量控制,由于室内质量控制是临床实验室天天都要进行的一项工作，所以持之以恒是非常重要的。除此之外，严格执行室内质量控制的标准操作程序亦非常重要。切忌将室内质量控制流于形式。 4,由于检验医学各专业所采用的方法学不尽相同，使得室内质质量控制的方法亦各具特点。临床细菌学与其他专业相比，室内质量控制工作特点显得较为突出，主要表现为繁锁、个别环节不易操作.主观解释也比较多，各步骤间是密切联系的。一旦某一环节出现差错，就会直接影响最终结果及临床治疗.所以必须做好此项工作. 5,室内质控包括以下几个方面：,（一）实验室前的质量控制 实验室前的质量控制是所有实验室内质量控制之根本，主要包括标本的采集、运送和采集的时间。由于临床对细菌检验知识或对细菌学不太了解。对标本的采集、采集时间、采集量及运送方式不得法，使细菌检验常常失败或发生错误。不论细菌室工作人员有多丰富的细菌诊断知识及经验、如何努力、设备如何完善， 如果标本采集、时间、方法、采集量及运送方法等任何一项有差错，也得不准确的结果。 6,所以需要临床细菌室制定标本采集指南。让临床知道和了解细菌标本采集的要求。其中包括各种标本采集时间、采集方法、采集量及运送方法。如尿和痰标本需要清晨采取；而血标本则需要根据不同目的或在发烧初期或发烧高峰期间采取；咽喉溃疡的涂片与培养时，须小心的从真正溃疡处采取标本，不要受到口腔分泌物的污染；皮肤或下表皮的扩散性感染，应采集病灶处的边缘，而非中央处的感染组织送检。 7,采集标本时应遵循无菌采样，避免污染，特别是对血液、脑脊液等无菌体液标本在采集时。要严格执行无菌操作，严禁污染。采集要“足量”不得过少，且有代表性，否则影响细菌检验.如采集脓标本，最好采集数毫升；血培养应采抗凝血5ml (成人)幼儿不得少于1-2 ml；用棉拭子采集标本时，必须多采取几根拭子.标本采集后要迅速送检避免保存过长时间.过长保存，会使杂菌生长起来，湮没致病菌的生长；也有可能使致病死亡。如尿液放置过长会长杂菌，痰和粪便放置过长，会使细菌死亡。不能立即送检的标本应作相应处理.所有病原学标本应在应用抗生素之前作培养. 8,（二）标本接种培养前的质量控制,标本接种前必须首先检查是否合格。外观检查：如痰标本的肉眼观察：观察颜色、粘度、有无血丝或脓。若标本为水状且很明显是唾液，则为不合格标本。镜检：如尿标本，用未离心的新鲜尿液在高倍镜检中，每视野白细胞大于或等于10个（ 10个HPF）即说所谓脓尿，为合格标本。 9,直接涂片检查,其目的是：及时发现标本中存在的微生物，选择适宜的培养基进行病原学的分离鉴定。如痰标本应作涂片检查，根据鳞状上皮细胞，柱状上皮细胞和白细胞的量判断标本采集是否合格。若鳞状上皮细胞数 25个/LHP时，表示标本受到口腔分泌液严重污染。如每低倍视野鳞状上皮细胞10个（25个（WBC25个/LHP ）为合格标本。 10,临床医生一般认为优势菌具有临床意义， 革兰染色的涂片中如何判定优势菌很重要，一般说，在油镜下，优势菌在10个视野内出现的频率至少要达到50%。不合格的标本应要求临床重新采集后送检。 11,(三)分离培养的质量控制,标本中病原菌的分离率受多种因素的影响，如标本采集因素、分离培养基的质量和是否及时接种。临床上苛养菌检出率很低，其中一个重要原因是国产培养基质量问题，在一个就是细菌室技术水平和人员素质问题。如果一个细菌室分离不出可养菌，就不可能反映出细菌分布的特点，也不能满足临床的需要。此外他又是衡量一个细菌室技术水平和人员素质的重要标志。临床细菌室应建立细菌标本随时接种制度，尤其是某些苛养菌的分离，否则将严重影响 分离率. 12,（四）培养基的质量控制,培养基的质量控制主要分为六个部分，包括原材料、分离培养基、选择性培养基、鉴定培养基、PH测试，无菌试验1、原材料 各种培养基的原材料进入实验室之日就应作记录，记录中应包括批号、日期、品名、厂家和开始使用的日期.每次使用也应记录配置量和操作者姓名. 13,分离培养基,对分离培养的培养基质量控制标准包括菌落形态、大小、溶血特性。用流感嗜血杆菌来测试巧克力琼脂的分离能力(1618小时生长)，用肺炎链球菌测试血琼脂的分离能力（中等菌落 -溶血）并根据不同培养目的配置选择性巧克力培养基。 14,选择性培养基,对选择性培养基要看被抑制菌和被选择菌生长的状态.用大肠杆菌、痢疾杆菌和金黄色葡萄球菌，来测试选择性培养基的选择性.如在中国兰培养基上，大肠杆菌（兰色菌落）和痢疾杆菌（无色菌落）可以生上，但金黄色葡萄球菌不应生长。在ss培养上痢疾杆菌生长（无色菌落），大肠杆菌少量生长（菌落粉红色，周围有沉淀），金黄色葡萄球菌不应生长. 15,鉴定培养基,主要是用以观察细菌是否具备某种生物化学反应能力。不管是自制或商品购入的鉴定培养基，都要进行质量检测。均应用相应阳性反应和阴性反应的菌株进行测试。符合标准方可使用。 pH测试，如果使用商品化脱水培养基，严格按照说明操作，一般不必再进行pH测试。如果使用基础物质进行培养基制备，在培养基冷却后须进行pH测试. 16,如果pH测得值与预期值.相差0.2单位，则需要酸碱调解.无菌试验 一般为随机抽样3-5%，在35条件下培养48小时.如果抽样中每个培养基上出现2个以上菌落，证明本批培养基已被污染.所有培养基都要进行外观检查（透明度、色泽）.性能检测.要求用已知特性稳定的质控菌株进行鉴定.用于质量控制的菌株应固定做妥善保存. 17,（五）常用仪器的质量控制,实验室仪器设备是我们从事临床标本检测的工具。因此，仪器设备的质量维护对保证检测质量至关重要。 18,表1临床细菌学实验常用仪器设备的质量维护,仪器名称 质量维护说明 全面技术检查显微镜 每次工作结束后，用镜头纸擦拭并清洁镜头 至少每年一次 妥善放置避免振动、潮湿及灰尘 至少每月检查一次聚光器 高压灭菌器 至少每月清洁一次内室 至少6个月一次 每次使用时应有专人负责 每次使用时均应动态记录温度及压力 每次使用时均应按疾病控制中心的要求进行鉴测恒温孵育箱 至少每月清洁一次内室 至少6个月一次 设定符合要求的温度控制范围，保证每日至少进行一次温度鉴测并记录 天平 保持天平及砝码的清洁、干燥 按照计量部门要求 妥善放置、避免振动及潮湿 该工作区内尽量避免空气流动 称量时使用称量纸，避免被称量物直接接触托盘冰箱 在距墙至少25cm处放置 至少每年一次 至少每两个月清理一次内室（包括除霜、除冰） 设定符合要求的温度控制范围，保证每日至少进行一次温度鉴测并记录水浴箱 至少每月清洁一次内室壁、更换一次水 至少6个月一次 如为连续工作状态，则每日至少检查一次水位 在使用前应先检查水位 在使用前及使用过程中，应对温度进行连续监测,除上表所列举的仪器外，二氧化碳培养箱:除观察温度外，还应该观察CO2浓度，每天做好记录。厌氧设备：厌氧箱、厌氧盒、厌氧袋 使用时要用指示剂（美兰）来监测环境厌氧状态，也可以用专性需氧菌作指示剂来监测环境。细菌鉴定系统、血液培养分析系统的质量维护对细菌学检查的质量保证也非常重要的。但由于各种品牌的仪器的检测原理、工作模式等不尽相同，所以不可一概而论。制造商们在出售仪器时会同时提供使用手册，其中对仪器的质量维护有详细的说明，使用者严格执行即可。 20,（六）细菌染色液的质量控制,染色是临床细菌学检查最常使用的方法，根据染色部位及染色目的不同可分为革兰染色、抗酸染色、鞭毛染色、异染颗粒染色和荚膜染色等。其中革兰染色和抗酸染色使用频率最高。现对这两种染色方法的室内质控加以说明。 21,革兰染色 1) 严格按照标本收集程序取样并涂片 2) 对涂片进行严格编号或标识 3) 在固定涂片时，避免玻片加热过度 4) 染液放置处避免高温、干燥及灰尘 5) 利用过滤的方法去除结晶紫的固体结晶 6) 如果卢戈氏碘染液退色，应立即更新 7）利用标准菌株（金黄色葡萄球菌 ATCC25923及大肠埃希菌ATCC25922） 或其他已知的革兰阳性菌及革兰阴性菌 至少每周进行一次质控验证 22,妻-尼染色 1) 严格按照标本收集程序取样并涂片 2) 对涂片进行严格编号或标识 3) 每次使用新玻片，不可重复使用 4) 在固定涂片时，避免玻片加热过度 5) 利用过滤的方法去除石炭酸复红染 液中的沉淀 6) 利用已知的抗酸杆菌（AFB）阳性涂 片每周或在更新石炭酸复红染液时至少 进行一次质量验证 7) 阳性涂片应置于专门器具专门地点保存 以备复验 8) 阴性涂片至少保存两周以备复验 染色液配置后应标明名称、日期、配制者 23,七 细菌鉴定或鉴别常用试验的质量控制,细菌鉴定或鉴别主要依据细菌的形态特点、染色特点、培养特征、生化反应及血清学特征等。细菌这些生物表型特征或按固定组合的方式被用于细菌鉴定，或以灵活组合的方式用于细菌鉴定、鉴别及补充试验。无论怎样，这些生物表型检测的准确与否直接影响到细菌鉴定的准确性。下面列举一些常用且较为关键的试验. 24,表常用细菌鉴定或鉴别试验的质量控制,试验名称 质控周期 阳性质控 阴性质控 质控菌 结果 质控菌 结果 触酶试验 每次使用时 金葡菌 有气泡产生 化脓性链球菌 无变化 凝固酶试验 每次使用时 金葡菌 与人、兔或猪血 表皮葡萄球菌 无凝固现象 浆产生凝固现象 氧化酶试验 每次使用时 铜绿 产生兰紫色 大肠埃希菌 无颜色改变 杆菌肽敏感性试验 每周 化脓链 纸片周围出现抑 无乳链球菌 纸片周围细 菌圈 菌均一生长 CAMP试验 与被测试菌同步进行 无乳链球菌 质控菌生长条 化脓性链球菌 无溶血程度 带在靠近金葡菌 加重区出现 菌区内出现溶血 加强 胆汁溶菌试验 每批号（有效期内） 肺炎链球菌 菌落溶解 缓症链球菌 无菌落溶解现象 胆汁七叶苷试验 每批号（有效期内） 粪肠球菌 使琼脂斜面变黑 牛链球菌 琼脂斜面无黑色 出现 马尿酸盐试验 每批号（有效期内） 无乳链球菌 出现深紫色 粪肠球菌 无颜色改变 吲哚试验 每批号（有效期内） 大肠埃希菌 产生红色 阴沟肠杆菌 无颜色改变 25,抗血清的质量控：,用于诊断的各种抗血清进入实验室应记录收到日期，外观检查。注意观察血清的透明度、色泽等是否合乎标准，如有混浊和絮状物沉淀表明已被污染为不合格，同时要注意效价、有效期、使前用已知标准菌株做阳性和阴性试验，过期不能使用。4-8冰箱中保存。 26,质量控制方法：纸片扩散法药物敏感试验的质量控制方法：,目的： 质控工作的目的是： 监测药敏试验步骤的精密度和准确度监测试验所用试剂的质量监测进行试验和判读结果的工作人员的操作 为达到这些目的，最好选用遗传性能稳定和 在被控的特定方法中有用的参考菌株，但也 可以加用其他菌株. 27,质控菌株：,为控制纸片试验的精密度和准确度， 应从可靠来源获取一些质控菌株（质控菌株一般在国家卫生部临检 中心或省临检中心都可购买到） 28,表3 纸片扩散法药敏试验的质量控制条件及质控菌株,质控菌株 试验条件大肠埃希菌ATCC25922 培养基：Mueller-Hinton琼脂大肠埃希菌ATCC35218 接种液：生长法或直接菌落悬液(用于-内酰胺类药/-内酰胺酶抑制剂) 孵育： 35：空气1618h铜绿假单胞菌ATCC27853 同上金黄色葡萄球菌25923 培养基：Mueller-Hinton琼脂 接种液：生长法或直接菌落悬液 孵育： 35：空气1618h 如测试苯唑西林、甲氧西林和奈 夫西林时，孵育时间需24 h粪肠球菌ATCC29212 培养基：Mueller-Hinton琼脂 接种液：生长法或直接菌落悬液 孵育： 35：空气1618h 如测试万古霉素、需要24 h流感嗜血杆菌ATCC49247 培养基：嗜血杆菌试验用培养基（HTM） 接种液：直接菌落悬液法 孵育： 35：5%CO2：16-18 h淋病奈瑟菌ATCC49226 培养基：GC琼脂+1%特定的生长补充品。纸片扩散法不需要使 用无半胱氨酸的生长补充品 接种液：直接菌落悬液法 孵育： 35：5%CO2：20-24 h肺炎链球菌ATCC49619 培养基：Mueller-Hinton琼脂+5%羊血 接种液：直接菌落悬液法 孵育： 35：5%CO2：20-24 h 29,监控M-H琼脂中药物抑制剂的水平是 否低的可以接受（含量是否符合要求） 用粪肠球菌ATCC29212或粪肠球菌 ATCC33186（抑菌圈20mmM-H琼脂为 合格）粪肠球菌ATCC29212也可用于高 含量氨基糖苷类纸片的质控。 一般的实验室，最少应保存三种质控 菌 ATCC225922 ATCC225923 ATCC27853 30,质控菌株的测试与保存：,质控菌株的测试：质控菌株的测试应按照标准纸片扩散试验步骤进行，并且使用与临床分离株相同的抗微生物药。 质控菌株保存：日常所用的质控菌应贮存在胰大豆琼脂（非苛养菌） 或营养丰富的巧克力琼脂斜面（苛养菌），4-8 冰箱保存。 长期贮存，可用5%小牛血清肉汤，10%胰大豆肉汤，10%-15%甘油，脱纤维羊血或脱脂牛奶，于-20甚至更低温度保存。 31,日常所用的质控培养物应于4-8贮存。每周 进行移种。 日常所用的质控培养物每月都要用冷冻的或 冻干来更换。 在测试前应将菌株在琼脂平板上进行移种以 获得单个菌落 按推荐的接种物制备方法，将菌株进行培养 或制成悬液以进行试验。 只要平均抑菌圈直径没有发生由于方法错误， 造成的有意义的改变，质控培养物就可以一 直用于监测试验的精密度和准确度 32,如果某意外结果提示该菌株的内在敏感性发生改变，就应换用此质控株的新培养物。（如果平均抑菌圈直径有明显改变，表示质控菌株被污染或敏感性发生改变，此时，就应换用此质控株的新培养物） 33,药敏试验质控标准（琼脂扩散法）,药敏纸片： 药敏纸片的直径为6.00-6.25mm，吸水性能要很好（每片的吸水量约20）。边缘光滑，无毛刺。 药名代号和药量标记要清楚。纸片的含药量必须与NCCLs规定的含药量一致， 药物纸片用前必须作质量评定。用以下两个指标判定纸片的质量 34,含药纸片的均匀度： 含药纸片的均匀度（片间差）测定方法：用质控菌株按常规方法接种菌株后，同一平板贴6张相同的纸片，35OC培养一定时间后，测量抑菌圈直径，6个抑菌圈直径相差一般不超过3mm为合格，如果相差太大，说明纸片含量不均。 35,含药准确性： 含药准确性：判定纸片的实际含药量与标量是否一致，计算上述六个抑菌圈直径的平均值与质控标准比较，判断纸片含药量的准确性，平均值高或低于质控标准表明准确性差。 36,药敏纸片的保存：,一般长期保存在-20以下的低温冰箱中。日常工作用，临时保存在2-8 的冰箱中，但其存放时间不能超过一周。使用前要室温平衡，用完立即放回冰箱中，不能放实验室过夜。实验室过夜的纸片，若想再次使用必须做质控，合格才可继续使用。某些不稳定的药物，（如亚胺培南、头孢克洛、克拉维酸复合药物）应冷冻保存直至用的当天取出，以尽量保持其稳定性。-内酰胺类药物纸片应密封包装并冷冻，少量正用的纸片可冷藏至一周。 37,用纸片分配器时，应上紧盖子并配备足量干燥剂。分配器在打开前应预先平衡至室温。当指示剂变色时，应更换干燥剂以防止过于潮湿。装有纸片的分配器在不用时应冷藏。只能使用尚未过期的纸片，过期纸片均应弃去，决不能使用。 38,制备接种物时的浊度标准：,1.为使药敏试验的接种浊度标准化，应使用 一个等同于0.5号麦氏标准管的BaSO4浊度 标准管（此管可以买，也可以自制但一定 要准确）.2. 在使用前，应将浊度标准管置于旋转混匀器 上剧烈振动，目测其外观浊度应均匀一致。 若有大颗粒出现，此标准管应更换。3.每个月都应更换BaSO4浊度标准管，或者对其 浓度进行核实（BaSO4浊度标准管稳定性差）。 39,接种物的制备:,有两方法：1.生长法 2.直接菌落悬液法 接种物的要求：接种菌液要求纯培养物，使用的单个菌落都应选自原始的琼脂平板。 接种菌液浓度要求与0.5号BaSO4麦氏浊 度标准管相同（接种菌液浓度对药敏试 验至关重要，在配置时浓度一定要准确， 避免过浓或稀） 40,试验平板的接种：,1.接种物悬液的浊度调整后，最好在15分钟内接种，用无菌棉拭子蘸取调好的菌液，在液面上方管壁处旋转并用力挤压几次，以从中挤出过多的菌液。 2.用棉拭子在无菌的稍干燥的M-H琼脂表面划线接种，重复操作两次，每次将平板转动约60度。最后沿平板周边绕两圈，保证涂布均匀。 3.在贴纸片之前，可以将培养皿盖半开3-5分钟， 但不超过15分钟以使表面过多的水分被吸收。 41,注意：不同菌种不可在同一平板上做混合细菌药敏试验。避免用临床标本直接作药敏试验，除非临床上急需且革兰氏染色见到单一菌种，但随后必须按标准方法重作第二次。禁止用未稀释的过夜肉汤培养或其他非标准接种物进行平扳划线。 42,贴纸片要求：,1.将纸片贴到接种好菌的琼脂平板表面。每个纸片都应下压一下，以保证与琼脂表面完全接触。不管纸片是单个贴还是用分配器加，都应均匀分布，每张纸片中心间距不少24mm。纸片中心点离平皿内壁不少于15mm。青霉素和头孢菌素纸片离平皿内壁10mm以上，两纸片中心相距至少30mm。一般情况下，150mm平板所贴纸片不应超过12个，100mm的不应超过5个。一旦纸片接触了琼脂表面，就不应再挪动位置，因为有些药物几乎立即扩散，而应该在需要的地方贴新的纸片。 43,2.贴完纸片后，应在15分钟内，将平板反转过来，置于35温箱中孵育。除嗜血杆菌、淋病奈瑟菌和链球菌以外，平板不应放在CO2含量高的空气中孵育，因为其抑菌圈解释标准是根据普通空气中的孵育结果研究出的，CO2可使培养基PH变酸，还会显著改变某些药物的抑菌圈大小。 44,判读平板和解释结果：,1.孵育16-18小时后，检查每一块平板，如果平板划线满意，接种物准确无误，菌落应相互融合生长。如果出现明显的单个菌落，是因为接种量太少(或菌液太淡) ，必须重复试验，测量的应该是完全抑制区域的直径（肉眼判读），包括纸片直径。 45,2.抑菌圈的测量可以用游标卡尺，尺子或特制的模板，测量到最接近的整数毫米数。如果是加血的琼脂培养基（如对链球菌），则应在透射光照射下，打开培养皿盖，从上表面测量抑菌圈。如果被测菌是葡萄菌或肠球菌，则应孵育24小时，再在透射光下分别观察笨唑西林或万古霉素的透明抑菌圈内有无耐苯唑西林或耐万古霉素菌落的微弱生长。抑菌圈内的任何可见的生长，都表示苯唑西林或万古霉素耐药。 46,3.抑菌圈边缘应是肉眼观察无明显生长区域。如果在抑菌圈的边缘有微弱的小菌落生长，而且只有用放大镜才能看到，这些菌落就应该忽略。如果在透明的抑菌圈内有任何的单个菌落，都应该进行二次培养，重新鉴定重新试验，变形杆菌属的菌株可能会在某些抗微生物药的抑菌圈内蔓延生长。对于变形杆菌属，在本该十分明显的抑菌圈内薄纱样蔓延生长，也应该忽略。对于甲氧苄啶和磺胺，培养基内的药物拮抗剂可能使细菌能微弱的生长，因此应忽略微弱的生长（生长的菌膜20%或更少），并且应测量更为明显的边缘来决定抑菌圈的直径。用加血培养基测试链球菌时应该测量生长受抑制的区域，而不是溶血受抑制的区域。 47,M-H琼脂培养基质控标准：,在众多现用的培养基中，MH琼脂最适于常规药敏试验，对于非苛养菌的常规药敏试验是最好的。原因如下：它的药敏试验的批间重复性好。它含有的磺胺、甲氧苄啶和四环素的抑制物很少它可使绝大多数非苛养病原菌获得满意生长.用它进行的药敏试验已积累了大量的数据和经验（尽管MH琼脂培养基用于药敏试验通常是可靠的，但偶然也有产品的批间差，所以对每批培养基用之前都要进行质量检测） 48,M-H琼脂的制备：,M-H琼脂应使用商用脱水培养基基础并按照制造厂家的说明制备。高压灭菌后立即水浴冷却至45-50oC将新制备并冷却的培养基倒入培养皿中，厚度应均匀一致，约4mm。直径150mm的培养皿应倒入60-70ml，而100直径的可倒 25-30ml，直径90mm培养皿可到入25 ml。 49,培养基应冷却至室温，若当天不使用，应保存于冰箱中（2-8 oC）。培养基应于制备后七天内使用完，但若采取了充分的防范措施，减缓了琼脂干燥，如使用了槊料包装（水分不蒸发的可适当延长）但在用之前用规定的质控菌株进行试验，结果仍然正确，则可延长使用期。每批平板都应抽样，在30-35 oC孵育24小时或更长时间以检查其无菌性。 50,PH测定：,在制配培养基时应检查每批MH琼脂的PH值，其确切方法因不同实验室的设备不同而异。胶化后，琼脂培养基在室温下PH值应为7.27.4。如PH值过低，某些药物会失去效力（如氨基糖苷类与大环内酯类）。而另一些药物活性可能增强（如青霉素类）。如PH值过高，上述情况则相反（在配制培养基时要注意高压灭菌后的PH值改变 51,检测PH值可用以下几种方法：,用足量琼脂浸没PH电极端进行测量。 在烧杯或杯子中，取少量琼脂固化 与PH电极端周围进行测量。 使用一个准确定标的表面电极测量。 52,培养基中的拮抗物质的影响(胸腺嘧啶核苷或胸腺嘧啶),含过量胸腺嘧啶核苷和胸腺嘧啶的培养基可能逆转磺胺类和甲氧苄啶的抑菌效应,使得抑菌圈变小变模糊,甚至消失,从而导致假耐药报告。因此应使用胸腺嘧啶核苷含量尽可能低的M-H琼脂。为评价一批新的M-H琼脂,可用甲氧苄啶/SMZ纸片,对粪肠球菌ATCC29212或ATCC33186进行试验,质量好的培养基上可出现一个边缘清楚的抑菌圈,直径为20mm或更大。质量差的培养基上可能没有抑菌圈,可能在抑菌圈内有菌生长,也可能抑菌圈直径小于20mm。 53,二价阳离子含量变化的影响:,二价阳离子,主要是指镁和钙的含量变化,可影响氨基糖苷类和四环素对铜绿假单胞菌的实验结果.含量过高,抑菌圈会变小,含量过低,抑 菌圈会大的不可接受。锌离子会影响细菌对碳头孢烯的敏感性。 54,室内控制步骤:,按NCCLS颁布的每年修改内的“抗微生物药物 敏感试验的执行标准”进行操作。质控菌株应按标准方法与临床标本分离株同步进行药敏试验质控菌株在实行常规监控（每周一次）前连续监测30天 对每一个药物/细菌组合，每30个抑菌圈直径结果（即一个药物/细菌组合连续30天的抑菌圈直径结果）中，只允许最多3次超过质控允许范围，并且这3次失控不应该连续出现。 55,如果30次连续测定的结果完全符合上述标准，试验频率可以降低，每一质控菌株可以每周测一次，实行常规监控。 56,日常工作的质量控制 ：,日常工作中随同标本测定质控菌株的抑菌圈。每周做一次质控。质量监测的情况应完整的记录下来,以便进行分析。当更换药物或培养基时必须用相应质控菌株测试。使用每周质控测试系统时，如果出现一个抑菌圈直径超过允许的质控范围时，需要采取纠正措施。如果结果失控是因为明显的错误,如使用了错误的纸片、错误的质控菌株、明显被污染的菌株和错误的孵育气体,应从重复此质控试验.如果无明显错误而出现的失控结果,则实验室应恢复每天质控,直至弄清错误的原因并提供解决的办法为 57,以下内容可用以证实问题已获解决：,1.用合适质控菌株连续测试五天：并且证实对每个药物/细菌组合，所有5个抑菌圈直径.（即每个组合连续五天的抑菌圈直径）都应在质允许范围内2.如果问题不能马上解决（即至少一个抑菌圈直径仍在质控允许范围外），就必须进行每日质控直至最终得到解决。恢复每周质控前，必须有记录证实又有连续30个实验日有满意结果。 58,失控原因及其纠正：,质量控制工作中,一旦有结果超出质控允许范围,说明可能某种条件发生改变,称为失控。遇到失控情况应该仔细分析质控结果,查找原因予以解决。 在临床工作中常规的失控现象及其原因有以下几种： 抑菌圈直径超过或低于规定的质控允许范围时， 考虑以下常见的错误来源：抄录质控数据时的书写错误 59,测量抑菌圈直径读出错误接种菌悬液太浓或太淡质控菌株有污染或有其他改变0.5号硫酸钡浊度标准管未摇匀或变质错误的孵育温度或气体试验用培养基的质量有差异（在某一新 批号使用前应进行检查）药物纸片在实验室取用或储存的过程中失效不了解新的药敏判定标准 60,氨基糖苷类抗生素抑菌圈减小（或增大），而四环素类抗菌素抑菌圈增（或减小）这是培养基得PH值不对.氨基糖苷类抗生素在碱性中活性强，酸性中活性弱.PH值对四环素的作用正好相反.出现此种情况必须纠正培养基的PH值.某一种药物的抑菌圈逐渐减小，其他药物均正常这是药敏纸片中抗生素失效的表现，最容易出现这种现象的药物是青霉素和头孢菌素类.此时必须更换新的纸片. 61,更换新培养基后质控结果改变 培养基决定质量控制结果的准确性，如果新换一批培养基，质控结果有很大改变，这是由培养基质量的批间差造成的，除PH可以调节外，其他成分不易纠正，只能从新更养基或从新标定质控标准. 一旦发现结果失控时，应先仔细检查平板，常能容易的解决一些错误问题.如果方法上没问题，可暂认为是统计上的变异，第二天重复试验的结果应符合要求.如仍失控必须继续查找原因.在问题未纠正之前须每天做质控，至少恢复5个连续试验日，直到问题解决。 62,临床细菌室应该建立室内质控的标准操作程序（SOP）文件以及保证该SOP文件得以严格执行：要有的放失地进行室内质控工作， 实验室应严格对室内质控结果进行记录，未了便于操作，最好设计出简便合理的记录表格。对于任何一项室内质控均给出明确的质控预期结果，以便判断室内质控结果是否合格。针对失控，需建立失控处理程序，失控处理最后应填写失控报告备案。 应认真学习好NCCLS颁布的有关纸片扩散法试验时应注意的问题，应严格按照NCCLS颁布的标准