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1、DOC格式论文,方便您的复制修改删减昆明种小鼠胚胎干细胞的培养及鉴定(作者:单位:邮编:)【摘要】目的 从昆明种小鼠的早期胚胎中获取并培养胚胎 干细胞。方法 收集小鼠3.5 d的囊胚培养,用小鼠胚胎成纤维细胞 作为饲养层,形成的ES细胞样集落,72 h后分离隆起生长的内细胞 团并继续培养,观察集落的生长状态,并通过碱性磷酸酶染色进行鉴 定。结果ES细胞有其典型的形态学特征:集落呈鸟巢状,边缘清楚, 表面平滑,结构致密,隆起生长,细胞之间界限不清楚;单个细胞体 积小、核大;对ES细胞碱性磷酸酶进行检测,在 AKP底物作用下, 未分化的ES细胞显微镜下为棕褐色,分化的不着色。结论昆明种小鼠囊胚在小

2、鼠胚胎饲养层细胞上可以发育为胚胎干细胞。【关键词】小鼠胚胎干细胞ES细胞系Abstract : Objective To isolate and culture embryonic stem (ES) cells from Kunming species mouse. Methods The blastocysts of 3.5 d from Kunming species mouse were collected, cultured on the fibroblast cell feeder layers for 72 h. The cells from inner cell mass(IC

3、M) were isolated and subsequently cultured invitro.Then the stem cells were identifiedby AKP staininResults The ES cells had its typical morphological characteristics such as n est-likecoloni es,round orelliptic,with clear edge and smooth surface, strong refraction, significant swelling growth,compa

4、ctness of cell aggregation, and obscure disti ncti on betwee n two edges of n eighbour cells within a colony, relatively bigger nucleus compared with little cytoplasm. After the AKP staining, all of the ES cells showed strong AKP activity, and on the contrary,the embryonicfibroblast cells had no exp

5、ression of AKPshowing. Conclusions The embry onic stem cells can be isolated and cultured from Kunming species mouse.Key words : Kunming species mouse ; embryonic stem cells胚胎干细胞(Embryonic Stem Cell , ES)是一种多能的未分化细胞, 是从早期胚胎的内细胞团(inner cell mass, ICM)中分离出的多能干 细胞。由于它可以参与胚胎发育,将所携带的基因导入受体,生成嵌 合体,因此ES细胞已

6、成为制作转基因动物的主要途径之一。也可以 利用ES细胞模拟早期胚胎细胞的发育过程,分析参与早期发育中细 胞分化与决定的因素,研究基因的调控,建立疾病的动物模型,利用 ES细胞还可以为临床提供器官移植、修复器官或组织的原材料1,2。最近,基因打靶及基因捕获又成为应用胚胎干细胞进行研究的热点3。小鼠的ES细胞分离培养最早是在1981年由英国Eva ns和Kaufman4完成的,以后又有陆续建立了数百个小鼠ES细胞系:5-7 。但这些小鼠细胞系多来源于129, C57BL/6J等品系,而国内 应用最广泛的昆明种小鼠 ES的建系率很低。本实验尝试建立昆明种 ES细胞系,为进一步的研究工作提供条件。1材

7、料和方法1.1动物来源来自辽宁医学院实验动物中心,昆明种小鼠,68周龄,体重2535 g。1.2试剂丝裂霉素 C (Mitomycin C,Sigma, M-4287),MEM培养基(GIBCO 公司),胎牛血清(GIBCO公司),白血病抑制因子(LIF,CHEMICON 公司),孕马血清绒毛膜促性腺激素(PMSG杭州动物药品厂),人绒 毛膜促性腺激素(HCG杭州动物药品厂),碱性磷酸酶(AKP南京 建成生物制品研究所)1.3细胞培养1.3.1饲养层细胞的制备 无菌条件下取孕1316 d的小鼠胚胎, 去头,去尾,去胸腹腔脏器及四肢,用眼科剪剪成乳糜状,胰酶消化, 机械吹打后种植于25 mL玻璃

8、培养瓶中,加入含10%、牛血清(杭州 四季青公司)、2X 10-4 mol/L 谷氨酰胺、10卩g/mLLIF、50 U/mL 青霉素的MEM培养基(Gibco公司)。于37 C,5%CO培养箱中培养 24 h,更换培养基后培养7296 h至细胞融合,常规传代。将融合 的鼠胚成纤维细胞加入含20卩g/mL丝裂霉素-C的上述培养基中培 养23 h后,常规胰酶消化,单细胞悬液按密度 1X 106/mL种植于6孔板中,细胞贴壁伸展后(约3 h),饲养层细胞制备完毕。高巍,等:昆明种小鼠胚胎干细胞的培养及鉴定辽宁医学院学报2008年2月,29(1)132 囊胚的获得 用PMS(和hCG促进雌鼠超排 卵

9、,48 h后雌雄合笼,阴栓检出日记为受孕0.5 d。孕3.5 d时无菌取出小鼠子宫,用含冲胚液(MEM 20%FBS的注射器冲洗宫腔, 在解剖显微镜下收集囊胚移入已制备好的饲养层中。133 囊胚的培养 囊胚于饲养层细胞上进行培养,4872 h后透 明带自行脱落。将裸胚置于饲养层细胞上培养,使用ES细胞培养液。1.3.4 ICM的分离72 h后去滋养层较彻底的裸胚已有ICM孵出并长 大,35 d后ICM已长大2.5倍。在解剖显微镜下,用自制的口吸 管连接140卩m的玻璃微针小心挑起ICM,使之与饲养层以及滋养层 细胞分离,并吸至消化液小滴内(0.25%胰蛋白酶0.04%EDTA混合 消化液),使

10、ICM在消化液小滴内作用12 min,并用内径为70卩m 的玻璃微针轻轻吹吸ICM,使之分散成若干个由细胞组成的小团块, 这时可继续将ICM消化成单细胞,再分别移入新的饲养层细胞上继续 培养。1.3.5 碱性磷酸酶(Alkaline phosphatase ,AKP)染色鉴定小鼠胚 胎干细胞。2 结果2.1小鼠胚胎成纤维细胞饲养层由受孕1316 d的昆明种小鼠分离、接种的鼠胚成纤维细胞 (MEFMouseembrionic fibribric),开始为长梭型,长满培养皿底部时为卵石平铺状,具有典型的 MEF细胞形态。第35代MEF细胞性状最 为稳定,生长活力最佳,最适于处理为饲养层细胞。经处理

11、的MEFF细胞,在显微镜下观察,可发现其突起变短,细胞内出现均匀一致的黑 色点状物,不再分裂增殖。2.2 ES细胞的分离培养共收集57枚昆明种小鼠胚胎,其中囊胚39枚,桑椹胚18枚,其中 共有31枚(54.6%)的ICM增殖到能够离散的程度(图1)。ICM离散后 有4例出现了 ES细胞样集落(12.9%),其余逐渐凋亡萎缩(图2)。 将囊胚直接置于饲养层上培养,囊胚孵出透明带的时间约为4872h。2.3 ES的生长状态ES细胞有其典型的形态学特征:集落呈鸟巢状,将周围的MEFFt开生长,边缘清楚,表面平滑,结构致密,隆起生长,细胞之间界限不 清楚;单个细胞体积小、核大(图 3、图4)。2.4

12、AKP组织化学染色未分化的ES细胞集落内存在高浓度的 AKP AKP染色可见ES细胞的 核相对较大,胞浆染色成环状(图 5);而分化后的ES细胞着色变浅 甚至不着色(图6)。3讨论ES细胞极易受外界因素的影响,对生长条件要求非常苛刻。常规ES 细胞培养液中含有高糖 MEM胎牛血清(ES cell Qualified )、L-谷 氨酰胺、2-巯基乙醇和非必需氨基酸等,为了防止ES细胞发生分化,还要在培养液中加入白血病抑制因子 (leukemia inhibitory factor , LIF),同时要有饲养层。胎牛血清的质量及浓度也是影响ES细胞生长状况的重要因素,为此本实验采用GIBCO公司生

13、产 ES cellQualified的胎牛血清,所加浓度为15%分离培养ES细胞,最重要的前提条件是要最大限度地抑制细胞的分化。本实验采用小鼠胚胎成纤维细胞作饲养层并在培养液中添加LIF。一般认为饲养层细胞产生LIF,主要有分泌型和胞外基质相联的固定形式,可与ES细胞表面的LIF受体相结合,从而发挥抑制 ES细胞分化的作用。在本实验 中共用饲养层和LIF,其目的是为了能更好地防止 ES细胞的分化。 我们还发现传5代以内的鼠胚成纤维细胞具有同样让囊胚贴壁和ES集落生长的能力,在这样的实验条件下也能分离培养昆明小鼠的ES细胞。分离的ES细胞集落具有典型的ES细胞形态、AKP反应强阳性。 ES细胞的

14、培养是一项难度较大的工作,且现有的ES细胞系大多为国外品系小鼠所建立。昆明种小鼠是我国应用最多的实验小鼠,建立 昆明小鼠的ES细胞系有利于其转基因动物的获得,能够为我国的科 研工作更好地服务。本实验对昆明小鼠的ES细胞建系工作做了初步探索,为ES细胞多种属广泛建系的研究打下一定的基础。1 Martin GR. Isolation【参考文献】of a pluripotentcell line fromearly mouse embryosculturedin medium conditionedbyteratocarc inoma stem cellsJ . Proc Natl Acad Sci

15、 USA1981 , 78 (12) :7 634 - 7 638.2 Hooper M , Hardy K , Handyside A , et al. HPRT -deticie nt(Lesch - Nyha n) mouse embryos derived from germli necolo2nizationby cultured cells J . Nature , 1987 ,326 :2923.3 Eve ns MJ , Kaufman MH. Establishme nt in culture ofpluipot -entialcellsfrom mouseembryos J . Nature , 1981 ,292 :154.4 Eva ns MJ , Kaufa mn MH.Establishme nt in cultyre ofpluipotential cells from mouse embryos J .Nature , 1981,5 Eistetter292:154-156.HR. Pluripote ntembry onal stem cell linescan be establishedfrom disaggregated mouse morulaeJ Develop Grouth Differ,1989 , 31(3) :275.6

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