SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳染色方法的改进毕业论文

1、编号： 2011 届本科毕业论文（设计） sds-聚丙烯酰胺凝胶电泳染色方 法的改进 学 院 生 命 科 学 学 院 专 业 生 物 科 学 学 号 200740810235 姓名 指导教师 职称 副教授 完成日期 2011 年 5 月 诚 信 承 诺 我谨在此承诺：本人所写的毕业论文sds-聚丙烯酰胺凝胶电泳 染色方法的改进均系本人独立完成，没有抄袭行为，凡涉及其他 作者的观点和材料，均作了注释，若有不实，后果由本人承担。 承诺人（签名）： 年 月 日 目录目录 摘摘 要要.1 1 关键词关键词.1 1 a abstract.1 1 keywordskeywords.1 1 引言引言.1 1

2、 1.1. 材料与方法材料与方法.2 2 1.11.1 实验材料实验材料.2 2 1.1.11.1.1 试剂试剂.2 2 1.1.21.1.2 主要仪器、设备主要仪器、设备.2 2 1.21.2 实验方法实验方法.2 2 1.2.11.2.1 溶液的配制溶液的配制.2 2 1.2.21.2.2 制胶制胶.3 3 1.2.31.2.3 电泳电泳.4 4 1.2.41.2.4 染色染色.5 5 1.2.4.11.2.4.1 传统考马斯亮蓝染色法传统考马斯亮蓝染色法.5 5 1.2.4.21.2.4.2 水浴加热法水浴加热法.5 5 1.2.4.31.2.4.3 微波炉加热法微波炉加热法.5 5 1

3、.2.51.2.5 染色结果观察染色结果观察.6 6 2.2. 结果与分析结果与分析.6 6 2.12.1 染色效果与操作的染色效果与操作的简便性简便性.6 6 2.22.2 不同染色方法凝胶成像结果不同染色方法凝胶成像结果.7 7 2.32.3 染色时间染色时间.7 7 3 3结论与讨论结论与讨论.8 8 参考文献参考文献.8 8 致致 谢谢.1010 sds-sds-聚丙烯酰胺凝胶电泳染色方法的改进聚丙烯酰胺凝胶电泳染色方法的改进 摘摘 要要：针对传统的sds- page染色法耗时长，脱色所用甲醇有毒，乙醇会同时把考马斯亮蓝颜色脱去， 使蛋白质条带不清晰等问题，对常染法进行了改进。本文用水

4、浴或微波加热处理，同时改变染色液和脱色 液成分，用乙醇、蒸馏水代替甲醇，大大缩短了染脱时间，经过比较，认为改进后的水浴法所耗时间大大 缩短，染色效果也较好。 关键词关键词：sds- page；考马斯亮蓝；水浴法；染色；脱色 a modified method for sds-page staining abstract: for the traditional sds-page time-consuming staining, coomassie brilliant blue color can be taken off by the ethanol used for bleaching, m

5、ethanol is toxic,the protein bands is not clear, and other issues,an improved method for the common dyeing is coming.by using a water bath or microwave heat treatment, at the same time changing the composition of dyeing and bleaching liquid,ethanol,distilled water instead of methanol,reducing the ti

6、me of dyeing off greatly.by comparision,that the bathing method improved reduces the time significantly, dyeing better. keywords：sds- page；coomassie brilliant blue；water bathing ；staining； decolorization 引言 继人类基因组计划之后，蛋白质组学已经成为21世纪生命科学研究的热点， 对蛋白质高分辨率的分离和准确鉴定变得至关重要。目前分离蛋白质的主要方 法之一就是采用十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电

7、泳法（sds- polyacrylamide gel electrophoresis, sds- page），它的支持介质是三维网状的聚丙烯酰胺凝胶。 在催化剂的作用下，单体丙烯酰胺（acrylamide，acr）与n，n-甲叉双丙烯酰 胺（n,n-methylene bisacrylsmide，交联剂 ，bis）发生聚合反应，生成凝胶介 质。由于不同蛋白质分子大小和所带电荷的不同，从而对蛋白质进行分离，而 分离后的电泳凝胶检测的染色方法也有多种，其中考马斯亮蓝染色法由于具有 很强的特异性、较少的干扰因素、操作简便等优点，而成为蛋白质电泳检测和 定量分析的一种常用方法。常用的考马斯亮蓝有g-2

8、50，r350，和r-250三种， 在游离状态下，考马斯亮蓝g-250为红色，其最大吸收值为488 nm；而它与蛋白 质结合后颜色由红色变为青色，在595 nm 波长下二者的结合物光吸收最大，光 吸收值和蛋白质的含量成正比关系，所以可用于蛋白质的定量测定1。考马斯 亮蓝g-250是快染，能与蛋白质迅速进行结合反应，约2 min 即可达到平衡；它 们的结合物在室温下1 h 内保持稳定。一般情况下传统考马斯亮蓝染色法染脱 时间较长，约 6 24 h2 ，同时在多次漂洗、换液的过程中，凝胶表面容易被 污染3，而且凝胶中的sds会干扰考马斯亮蓝和蛋白质的结合，使染色效果受 到影响。同时常染所用的甲醇易

9、挥发，在人体代谢作用下会转化为甲酸，进而 在人眼睛部位积累，对视神经细胞进行破坏，危害操作者健康4。 本文采用考马斯亮蓝g-250进行染色，通过水浴和微波热处理法，对传统的 考马斯亮蓝染色法进行改进，以期达到大大缩短凝胶染色、脱色时间，从而使 操作更简便，所用试剂更少，成本更低，更有利于操作者的健康的目的。 1. 材料与方法 1.11.1 实验材料 1.1.11.1.1 试剂 浓硫酸，甘油，巯基乙醇，n,n,n,n四甲基乙二胺（temed） ，浓缩胶缓 冲液（1 m的tris-hcl ph 6.8） ，无水乙醇，冰乙酸，双蒸水，牛血清白蛋白 （68 kb） ，考马斯亮蓝g-250，丙烯酰胺，n

10、,n-甲叉双丙烯酰胺，溴酚蓝，十二 烷基磺酸钠(sds)，甘氨酸，tris碱，过硫酸胺。 1.1.21.1.2 主要仪器、设备 直流稳压电源，水平脱色摇床（太仓科技器材厂） ，移液枪，垂直电泳槽， 凝胶成像分析仪（金西盟北京仪器有限公司） ，ph计，量筒，烧杯，容量瓶， 电子天平（奥豪斯仪器上海公司） ，低温冰箱(合肥美菱有限公司)，双蒸水蒸馏 器，灌胶支架，电磁炉（九阳股份有限公司） ，水浴锅，微波炉等。 1.21.2 实验方法 1.2.11.2.1 溶液的配制5 1.2.1.11.2.1.1 30 %的丙烯酰胺 用电子天平分别称取丙烯酰胺29.2 g，n,n亚甲基双丙烯酰胺0.8 g，用

11、60l热的双蒸水溶解，过滤，定容到100 l。 （由于未聚合的丙烯酰胺和甲 叉双丙烯酰胺具有神经毒性，操作均须戴口罩手套，并在通风处进行，保存于 棕色瓶中，4 存放。 ） 1.2.1.21.2.1.2 10%十二烷基硫酸钠（sds） 用电子天平称取10 gsds粉末，于90 ml双蒸水中加热至68 溶解，定容 至100 ml，室温保存。 1.2.1.31.2.1.3 10 %过硫酸胺（ap） 称取0.5 g过硫酸铵于5 ml双蒸水中溶解，4保存（需新鲜配制） 。 1.2.1.41.2.1.4 分离胶缓冲液（1.5 m的tris-hcl ph 8.8） 用电子天平称取18.16 gtris粉末，

12、于80 ml双蒸水中溶解，ph计测量并用浓 盐酸调节ph至8.8，后定容至100 ml，4 保存。 1.2.1.51.2.1.5 tris-甘氨酸5 x电泳缓冲液 分别用电子天平称取6.0 gtris粉末和28.8 g甘氨酸，用900 ml双蒸水溶解， 再加入1 gsds，用容量瓶定容至1000 ml。 1.2.1.61.2.1.6 5 x上样缓冲液 分别量取0.6 ml 1m tris-hcl ph6.8缓冲液，5 ml 50%的甘油，2 ml 10 % 的sds，0.5 ml巯基乙醇，1 ml 1 %溴酚蓝，0.9 ml双蒸水，混合，4保存待 用。 1.2.1.71.2.1.7 蛋白质原液

13、的配制 称取0.1 g的牛血清白蛋白，于100 ml双蒸水中溶解，即为1000 g/ml的蛋 白质原液。 1.2.21.2.2 制胶6 1.2.2.11.2.2.1 确定所要配制分离胶的浓度和体积。 表 1 sds-page 凝胶的有效分离范围 丙烯酰胺浓 度（%）1512.5107.55.0 蛋白质线性 分离范围（ kda） 15-43515-60 18-75 30-120 60-212 由于实验所用标准蛋白的分子量为68 kb，并结合其他文献综合考虑应选择 浓度为10 %的分离胶。先用洗涤剂分别把玻璃板，样品梳，space洗净，双蒸水 冲洗几次，吹风机吹干。 把space安装到制胶架上，按

14、要求用制胶模安装并固 定好玻璃板(两边均匀用力)，插入梳子后，在距齿底约1 cm的地方用记号笔做 个标记，去除加样梳，以有利于目测分离胶灌制的大致位置。 1.2.2.21.2.2.2 配制8 ml 10 %的分离胶。 表2 分离胶的配制比 temed为加速剂应最后加入，烧杯中迅速混合均匀后，向玻璃板间一次性 缓缓灌制分离胶到标记处，并立即沿玻璃壁来回移动注入一层双蒸水，水封， 以排空气7。约20 min后在分离胶和水层间出现一清晰界面，即表明胶已聚合5。 1.2.2.31.2.2.3 待分离胶聚合完全后，倒去上层双蒸水，并用滤纸吸干。再配制3.0 ml 6%的浓缩胶。 表3 浓缩胶的配制比 双

15、蒸水1 mtris-hcl ph 6.8 缓冲 液 30 % acr-bis 10 % sds 10 % ap 10 % temed 2.0 ml400 l600 l36 l24 l4 l 加入ap和temed后，迅速混合，将浓缩胶灌制到分离胶上，接近矮板顶 端，立即平行插入样品梳，避免气泡，放置30 min-1 h，待胶充分聚合并老化。 1.2.31.2.3 电泳 1.2.3.11.2.3.1 装好模板（矮板于内侧），把胶条去掉并装入电泳槽中，拔出加样梳， 用电泳缓冲液冲洗加样孔。将tris-甘氨酸电泳缓冲液用双蒸水稀释5倍，加到电 泳槽中，胶膜内侧液面不可超过高板，但要没过矮板。 1.2.

16、3.21.2.3.2 加样 （1）分别取不同浓度梯度 （0.001，0.002，0.004，0.006，0.008，0.01，0.02，0.03，0.04，0.05 g/l） 的蛋白质样品原液20 l与5 l 5 x样品缓冲液于离心管中混合，标记，用电磁 炉沸水浴加热处理5-10 min，用移液枪进行点样，每个点样孔的上样量为5 l。 （2）取相同浓度蛋白质样品原液20 l与5 l5x样品缓冲液于离心管中混合， 加热处理5-10 min，进行点样，每个点样孔的上样量为5 l。 双蒸水1 mtris-hcl ph 8.8 缓冲 液 30 % acr-bis 10 % sds 10 % ap 10

17、 % temed 3.0 ml2.1 ml2.8 ml80 l56 l6 l 1.2.3.31.2.3.3 电泳 连接直流稳压电源，打开电源开关，设定浓缩胶电压为75 v，时 间50 min，待溴酚蓝进入分离胶后电压改为150 v，时间1 h。 1.2.3.41.2.3.4 电泳结束后，关闭电源，取出凝胶模，用铲子小心撬开玻璃板一侧，凝 胶便贴在其中一块板上，去除浓缩胶，并切去分离胶一角做标记，取下分离胶 于容器中，以待染色。 1.2.41.2.4 染色 1.2.4.11.2.4.1 传统考马斯亮蓝染色法1 （1）固定 将电泳后的凝胶浸泡于200 ml固定液（40 %甲醇，10 %乙酸，用双蒸

18、水定 容）中，于脱色摇床上轻微震荡30 min，以充分固定。 （2）放大 将固定后的凝胶浸泡在200 ml 10%的乙酸溶液中，摇床上震荡20 min。 （3）染色 把凝胶浸泡在考马斯亮蓝g-250染液（0.1 g考马斯亮蓝g-250溶解于200 ml 固定液中）中摇床上染色2 h。 （4）脱色 弃去染液（可收集回收利用） ，取出胶并在双蒸水中漂洗数次，室温下用 200 ml脱色液(10 %甲醇，10 %乙酸，双蒸水定容)，于脱色摇床上震荡脱色3-4 h，其间换液2-3次，直至背景清晰。 1.2.4.21.2.4.2 水浴加热法 （1）电泳后先把胶置于200 ml双蒸水中，煮沸，于脱色摇床上摇

19、几分钟冷却。 （2）弃去水立即把凝胶放入热染液中（含染料、乙醇、乙酸） ，脱色摇床上进 行染色20 min。 （3）弃去染液后，把胶于沸水浴中脱色两次，再用200 ml脱色液（10 %乙酸 溶液）常温脱色10 min，效果更好（染色脱色过程中可在容器上加一层薄膜， 以免试剂挥发太快，影响染色效果） 。 1.2.4.31.2.4.3 微波炉加热法 （1）不经固定液固定，电泳后直接把胶浸于200 ml双蒸水中，用微波炉强火 加热3 min，稍微冷却后再重复一次。 （2）把胶没于20 0 ml染液中，不含甲醇和冰醋酸，只加考马斯亮蓝和双蒸水， 微波炉中加热3 min，加快染色。 （3）先用双蒸水把多

20、余的染液洗去，再把凝胶置于200 ml双蒸水中，微波炉 加热3 min，冷却后即完成脱色，暂时保存于纯水中。 1.2.51.2.5 染色结果观察 把不同染色方法的凝胶转移至凝胶成像分析仪中，打开电源开关，选择白光， 底座换为白板，调节光线和焦距，直至能清楚看到蛋白质条带，拍照并保存记 录。 2. 结果与分析 2.12.1 染色效果与操作的简便性 图1 三种染色方法的结果 注：蛋白质上样量均为5 g/ 孔;a. 传统考马斯亮蓝染色; b. 水浴常染结合法; c. 微波炉加热法 由图可知，水浴热染法较传统染色法条带更为清晰，微波炉加热法背景色太 重，不容易彻底脱去，不易观察，且容易损坏胶片。另外，

21、传统染色法脱色所 使用的乙醇有可能会同时把考马斯亮蓝的颜色脱掉，从而使蛋白质条带不清楚， 而水浴和微波法只使用冰乙酸脱色，操作更简便，更安全。 2.22.2 不同染色方法凝胶成像结果 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 图2 3种染色方法的灵敏度检测 注：1-10号蛋白质上样量依次为：0.05，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5，1.0，1.5，2.0，2.5 g/ 孔;a. 传统考马斯亮蓝染色; b. 水浴常染结合法; c. 微波炉加热法 定量牛血清白蛋白加热变性后电泳，分别用三种不同的染色方法：传统考 马斯亮蓝染色、水浴常染结合法、微波炉加热法对三块平行的凝胶进行染色， 比较三者

22、的灵敏度。由图中可知，三种方法的灵敏度差异不大，其中水浴法蛋 白质测定的灵敏度都为0.1 g / 孔。 2.32.3 染色时间 表4 不同染色方法所用时间比较 时间 （min） 方法 固定和放大染色脱色总时间 传统染色法 水浴加热法 微波热染法 50 5 9 120 20 3 至少180 15 3 350 40 15 由表可知，传统考马斯亮蓝染色法所耗时间长达6 h，甚至需要进行过夜脱 色；而水浴和微波加热法大大缩短了染脱时间，水浴法总消耗时间40 min，其5 min沸水浴脱色效果和传统染色的过夜脱色相当；微波加热法更短达15 min，所 用试剂也较少，可循环使用。 3结论与讨论 高温有利于

23、促进分子的自由扩散运动，加速试剂向凝胶中扩散和渗透。同 时由于sds 对热不稳定，在80 以下才相对稳定8，通过水浴或微波热处理， 使sds-page凝胶的温度达到100 ，从而分解了sds ，解除了sds 对考马斯 亮蓝染色的扼制，使考马斯亮蓝染色得以顺利进行9；加热使蛋白质被快速固 定，大大节省了固定和染色时间，降低了凝胶被污染的机会；同时由于不使用 甲醇，降低了成本，也有利于操作者的身体健康。水浴考马斯亮蓝染色法检测 的蛋白质灵敏度为0.1 g / 孔。水浴法中固定和染色的时间可由传统考马斯亮蓝 染色法的3 h缩短为25 min，微波加热法则在10 min左右，但微波炉加热法凝胶 背景色

24、较深，且容易损坏胶片，不容易把握，适用于蛋白质的快速分离。所以， 总体上水浴法操作更简便快捷，效果更好，可用于蛋白质的测定。 参考文献 1. bradfordmm. a rap id and sensitive method for the quantitation of microgram quantifies of protein utilizing the principle of proteindye binding. anal biochem, 1976, 7: 2482254. 2. chen c q, belanger r r, benhamou n, et al. defenc

25、e enzymes induced in cucumber roots by treatment with plant growth-promoting rhizobacteria and pythium aphanidermatumj. physiol mol plant pathol, 2000, 56: 13-23. 3. 崔艳丽，王生余， 张真. 微波技术在尿蛋白谱检测中的应用j. 现代检验医学杂志， 2002,17:35-36. 4. 谢克昌. 甲醇及其衍生物m . 北京:化学工业出版社, 2002-06. 5. 汪家政，范明. 蛋白质技术手册m . 北京:科学出版社. 2000. 6. 李林，张悦红. 生物化学与分子生物学实验教程. 北京:化学工业出版社,2007. 7. merril c r. gel staining techniquesj . methods enzymol