工业淀粉酶的纯化与分析试验报告

1、工业淀粉酶的纯化与分析1234实验目的掌握盐析法纯化分离蛋白质的工作原理和方法 掌握利用葡萄糖凝胶层析法进行蛋白质脱盐的技术 掌握测定淀粉酶活力的基本原理和方法 学习 Folin- 酚比色法测定蛋白质含量的原理和方法实验原理 工业淀粉酶含有大量杂质将其溶解浸提后离心， 利用高浓度的硫酸铵溶液将上清液的蛋 白质沉降下来，所得沉淀溶解后即为盐析液。利用葡糖糖凝胶 G-25 对大分子量蛋白质和小分子盐类的阻滞作用不同， 析使盐析液中的蛋白质和盐类分离。酶活力是以酶在最适条件下， 催化一定化学反应的初速度来表示的。 一定量的淀粉酶在 37摄氏度， PH=6.8 的条件下，每分钟水解淀粉酶生成 一个酶活

2、力单位，其中还原糖的量用 DNS法测定。蛋白质在 Folin- 酚试剂的作用下生成钨蓝和钼蓝，测定其在 ，从而求得样品中蛋白质的含量。1材料：2仪器：3器材：四五1.从而经凝胶层在本实验中， 是以1mg还原糖的量为500nm 波长下的吸光实验材料及仪器设备工业淀粉酶电子天平；离心机；UV9100型分光光度计恒温水域；沸水浴刻度试管： 25ml*21 ；移液管： 1ml*6、5ml*1 ；烧杯： 250ml*2、50ml*1; 研钵：一套；移液枪：一套；离心管： 100ml*1;1.5ml*4;7ml*1; 注射器： 1ml*1 ； 层析装置： 1 套；量筒： 100ml*1 ；洗耳球： 2 个

3、；胶头滴管： 2 个；移液管架； 玻璃棒实验试剂 BaCl 2 溶液（ 1%）考马斯亮蓝G-2501%NaCl溶液淀粉溶液（0.5%)磷酸缓冲液（ 0.2molr/L,pH 6.8）牛血清蛋白（BSA标准液（250ug/ml ）Folin-酚试剂甲Folin-NaOH 溶液2.5mol/L )酚试剂乙葡萄糖标准液（ 1mg/ml ）DNS试剂实验步骤浸提称取 0.317g 淀粉酶制剂， 经浸提离心后转移上清液 酶液”备用。记录剩余体积为 18.2ml 并转移到 50ml 烧杯里，置于冰浴中。1.2ml 于离心管中， 标记为 “粗2盐析4ml蒸馏水按70轴勺饱和浓度称取 6.976g(NH 4)

4、2SO固体，研细后，缓缓加入离心后的酶液中。 待(NH4)2SO固体溶解后，冰浴静置20min后离心，将离心后固体溶解于中，并分装于3支1.5ml离心管中，标记“盐析”备用。3.脱盐用注射器每管2ml。用洗脱液洗脱柱子，经检验没有残留的盐和蛋白质后，对蛋白质进行脱盐。注射0.5ml盐析液，上样完毕后，打开出水口，进行洗脱，并收集洗脱液， 分别用BaCl2和考马斯亮蓝G-250试剂检验试管中洗脱液的成分。把含有蛋白质的收 集液合并于离心管中，标记“脱盐”备用。4.酶活力测定粗酶液0.05ml加蒸馏水稀释至25ml，摇匀待用盐析液0.05ml加蒸馏水稀释至25ml，摇匀待用脱盐液0.2ml加蒸馏水

5、稀释至10ml，摇匀待用空白标准葡萄糖浓度梯度粗酶液盐析液脱盐液012345AAB0B1C0G葡糖糖液(ml)0.00.220.40.60.80.9淀粉酶液(ml)0.10.10.10.10.10.1H2O(ml)3.23.02.82.62.42.3pH6.8 缓冲液111111NaOH 溶 液(ml)111预热摇匀，37 C水浴，5min预热的淀粉酶各1ml迅速摇匀酶促反应37C 水浴，5mi nNaOH 溶 液(ml)111DNS试剂各2ml迅速摇匀显色反应沸水浴5min，冷却定容至25ml，摇匀比色以0号管为空白参比，测定入=540nm处的吸光度记录吸 光度0.0000.0250.098

6、0.1910.2760.280.1720.2950.1450.4930.2160.396还原糖(mg)0.0000.2000.4000.6000.8000.9000.50920.96330.74085.蛋白质含量测定粗酶液0.5ml加蒸馏水.稀释到10ml，摇匀;盐析液1.0ml加蒸馏水.稀释到10ml，摇匀;脱盐液直接取用;样品处理:取样2g豆芽研磨水；定容，摇匀浸提取14支试管按下表操作并记录实验数据。空白标准蛋白质浓度梯度样品1粗酶液盐析液脱盐液012345A1AB1B2CC2DD2BSA标准 液(ml)0.00.20.40.60.80.9样品待测液(ml)11111111蒸馏水(ml)

7、1.00.80.60.40.20.0Folin-酚试剂甲(ml)各5ml反应各管混匀，室温下放置10mi nFolin-酚试剂乙各 0.5ml记录吸光度(A 500)0.0000.0480.0960.1190.1570.2040.1250.1170.1790.1950.1940.2040.1660.157平均值(A 500)0.1210.1870.1990.162比色以0号管为空白参比，测定入=500nm处的吸光度及时混匀，室温下放置30min(ml)反应六、数据处理粗酶液浓度0.311000mg 15.5 mg/ ml20ml盐析液浓度15.5 mg/ ml 16ml4ml4ml62mg/

8、ml1各样液浓度 脱盐液浓度C0.6 mlB(2_212)m0.6 ml 62mg/ ml-(2 212)ml6.098 mg/ ml2各酶的活力计算 粗酶液: A=A-A0=0.337-0.177=0.160代入 y=0.5064x-0.0774 中得 m粗=0.469mg0.05 ml 15.5 mg/ ml粗酶液样品量25ml0.2 ml 6.210 3mg粗酶液淀粉酶活力0.469 mg5 min 6.210 3 mg15.129U / mg样品总活力=15.129U/mg X 310mg=4688.99U 盐析液 B=B-Bo=0.410-0.313=0.097代入 y=0.5064

9、x-0.0774 中得 m盐=0.344mg盐析液样品量0.05ml 62mg/ml 0.150.0186 mg25ml盐析液淀粉酶活力0.344 mg5 min 0.0186 mg3.699U / mg样品总活力=3.699U/mg X 310mg=1146.69U 脱盐液 C=G-C0=0.445-0.207=0.238代入 y=0.5064x-0.0774 中得 m脱=0.623mg0.2 ml 6.098 mg/ ml脱盐液样品量10ml0.15 ml 0.0183 mg脱盐液淀粉酶活力0.623 mg5 min 0.0183 mg6.809U / mg样品总活力=6.809U/mg

10、X 310mg=2110.79U3纯化回收率 盐析后回收率盐析液的酶活力粗酶液的活力100% 1146.69U4688.99U100%24.45%脱盐后回收率脱盐液的活力粗酶液的活力100% 2110.79U4688.99U100%45.02%4蛋白质的含量测定 样品样品1 的 A=0.121代入y = 0.0008X - 0.0011得 m 样=152.625ug=0.153mg即得1ml样品1液的蛋白质含量=0.153mg样品1的蛋白质总含量 0.153mg蛋白/ml样液X 100ml=15.3mg0.0153 g豆芽中蛋白质含量* 100%0.765% 粗酶液粗酶液的B =0.1871m

11、g粗酶液中蛋白质的含量 0.153mg代入 y = 0.0008X - 0.0011 得 m粗=235.125ug=0.235mgA0.5ml 1ml10ml0.153 mg 0.197 mgs白 / mg羊品 0.5ml空m/ml1ml10ml称样总蛋白的含量 =0.197mg蛋白/mg样品x 310mg=61.07mg 盐析液盐析液的C =0.199代入 y = 0.0008X - 0.0011 得 m盐=250.125ug=0.250mg1mg盐析液中蛋白质的含量 0.250 mg0.250 mg,c , 62mg/ml , 1.0ml1ml10mlB1.0ml 1ml10ml称样总蛋白

12、的含量 =0.0403mg蛋白/mg样品x 310mg=12.493mg0.0403 mg蛋白/mg样品脱盐液脱盐液的D=0.162代入 y = 0.0008X - 0.0011 得 m脱=203.875ug=0.204mg1mg脱盐液中的蛋白质的含量0.204C 1.oml0.204 mg6.098 mg/ ml 1.0 ml0.0335 mg蛋白/mg样品称样总蛋白的含量=0.0335mg 蛋白 /mg 样品 x 310mg=10.385mg5比活力计算粗酶液比活力盐析液比活力4688.99U61.07mg1146.69U12.493mg76.781U/mg91.787U/mg脱盐液比活力

13、2110-79U203.254U/mg10.385mg6纯化倍数盐析液纯化倍数脱盐液纯化倍数盐析液比活力91.787U / mg粗酶液比活力脱盐液比活力粗酶液比活力76.781 U / mg 1.195咤S2.64776.781 U / mg讨论1、蛋白质的测定方法考马斯亮蓝法：考马斯亮蓝法对玻璃吸附较大，每次用完比色皿都需要酒精清洗，而 且对于操作要求较高，每加一种试剂都要迅速摇匀，因为考马斯亮蓝试剂是用浓磷酸 和乙醇配置的，如不摇匀，会导致蛋白质变性。适用于测定可溶性蛋白。 紫外吸收法：此法简单易行，直接将蛋白质溶液置于280nm下进行吸收测定即可。要求使用石英比色皿，而且如用分光光度计测

14、定，待测样品必须很纯，否则有杂质的话 会造成影响。适用于可溶性蛋白。500nm双缩脲法：双缩脲试剂即为碱性铜离子溶液，可与蛋白质生成紫色络合物，在 波长处测其吸光度即可。但其灵敏度比较低，且只适用于可溶性蛋白质的测定。 凯氏定氮法：此法是将蛋白质当中的蛋白N全部转化为氨态 N,再将其蒸发出，用硼酸吸收后再用盐酸滴定。通过滴定所用掉的盐酸的量计算出N的含量，对照经验系数,即可大致得出蛋白质的含量。适用于全部蛋白质。 Folin-酚比色法：用于测定可溶性蛋白质，灵敏度高，测定范围为25-250ug，操作简便，是实验室最常用的方法之一。但要注意试剂甲中的0H含量不能过高，否则 Cu2+会沉淀。2、酶

15、活力也称为酶活性，用来衡量酶的多少，是指酶催化一定化学反应的能力。通常用最 适条件下酶所催化的某一化学反应的速率来衡量没活力的大小。酶催化的反应速率越大,酶的活力越高，反之，酶活力越低。酶活力表示方法:国际单位(IU):在25C，其他条件均为酶的最适条件下，每min转换1umol底物需酶量为一个活度单位,IU。(1)终点法：测定完成一个反应所需要的时间自定义单位(2)动力学法：测定酶催化反应的初速度3、比活力：国际酶学委员会规定酶的比活力为每毫克蛋白质所含有的酶活力单位数，以酶 的活力单位/mg蛋白质表示。酶的比活力用来衡量酶的纯度，对于同一种酶来说，比活 力越大，酶的纯度越高。比活力的大小可

16、以用来比较酶制剂中单位质量蛋白质的催化能 力，是表示酶的纯度高低的一个重要指标。4、纯化回收率：用来衡量酶的纯化的好与差，纯化回收率值越高，则纯化方法越好。纯化 回收率一定小于1，因为每纯化一步，都会有部分蛋白损失，回收率就下降点。纯化回收率第次总活 100%盐析后回收率不是很高，推测原因可能是部分酶在实验过程中损失或者部分酶失活。脱盐后的回收率按理说应小于盐析后的回收率，而实验测得相反，可能是盐析后的淀粉酶液中存在（NH）2SQ，对淀粉酶的活性起了抑制作用。5、纯化倍数：表示纯化效果，纯化倍数越高，纯化效果越好。纯化倍数第一次比活力 100%6、纯化回收率和纯化倍数是用来评价一个纯化方法好与差的指标。纯化回收率越高则纯化 过程中酶的损失越少，体现了纯化方法的效果；纯化倍数反映的则是酶纯化效果的好于 差，一般大于1,纯化后比活力提高越多，即纯化倍数越高，总活力损失越少，即回收 率越高，纯化效果越好。7、蛋白质的纯化方法等电点沉淀法不同蛋白质的等电点不同，可用等电点沉淀法使它们相互分离。盐析法不同蛋白质盐析所需要的盐饱和度不同，所以可通过调节盐浓度将目的蛋白沉淀析出。被盐析沉淀下来的蛋白质仍保持其天然性质，并能再度溶解而不变性。 有机溶剂沉淀法中性有机溶剂如乙醇、