植物细胞悬浮培养技术

1、 植物细胞植物细胞 悬浮培养悬浮培养技术技术 单细胞的分离单细胞的分离 q由完整的植物器官分离单细胞由完整的植物器官分离单细胞 q由培养组织（如愈伤组织）由培养组织（如愈伤组织） 中分离单细胞中分离单细胞 1 由完整的植物器官分离单细胞 机械法机械法 酶解法酶解法 叶片是分离单细胞的最好材料叶片是分离单细胞的最好材料 1.1 1.1 机械法机械法 方法方法A：用刀片刮叶片：用刀片刮叶片 (花生成熟叶片花生成熟叶片) 具体方法具体方法: : 撕去表皮撕去表皮 露出叶肉细胞露出叶肉细胞 用解剖刀刮下细胞用解剖刀刮下细胞 方法方法B：叶片研碎、离心：叶片研碎、离心 轻轻研磨轻轻研磨 加研磨介质加研磨

2、介质 过滤、离心过滤、离心 研磨介质：研磨介质：40ml40ml 20umol Sucrose 20umol Sucrose 10umol MgCl 10umol MgCl2 2 20umol trisHCL 20umol trisHCL (三羟甲基氨基甲烷三羟甲基氨基甲烷 ) PH 7.8 PH 7.8 注意注意：只有薄壁组织排列松散，细胞间结触只有薄壁组织排列松散，细胞间结触 点很少时用机械法分离叶肉细胞才能取得成点很少时用机械法分离叶肉细胞才能取得成 功。功。 注意注意：大麦、小麦和玉米很难通：大麦、小麦和玉米很难通 过酶解法使细胞分离。过酶解法使细胞分离。 （叶肉细胞伸长，并在许多地方

3、叶肉细胞伸长，并在许多地方 收缩，细胞间形成一种互锁结构收缩，细胞间形成一种互锁结构） 事例 分离篱天剑叶肉细胞的机械方法 叶片消毒 匀浆 过滤 离心 植板 75酒精， 7次氯酸钠 10ml培养基 1.5克1cm2叶片 低速，去碎屑， 游离细胞沉降 1.2 1.2 酶解法酶解法 TakebeTakebe等（等（19681968）最早报道：用果胶酶处）最早报道：用果胶酶处 理可以分离大量的叶肉细胞理可以分离大量的叶肉细胞 加果胶酶加果胶酶 过滤过滤 、离心、离心 1.3 1.3 机械法和酶解法比较机械法和酶解法比较 机械法机械法 酶解酶解 法法 细胞不受到酶的伤害；细胞不受到酶的伤害； 不用质壁

4、分离；不用质壁分离； 细胞产量低；细胞产量低； 细胞易破。细胞易破。 细胞受到酶的伤害；细胞受到酶的伤害； 要质壁分离；要质壁分离； 细胞产量高；细胞产量高； 细胞不易破。细胞不易破。 2 2 由培养组织（愈伤组织）分离单细胞由培养组织（愈伤组织）分离单细胞 材料：胡萝卜肉质根材料：胡萝卜肉质根 步骤：步骤： 1 诱导产生愈伤组织 2 愈伤组织反复继代，使组织 不断增殖，提高愈伤组织的松 散性； 摇床用于振荡 继代悬浮 3 Subculture 将愈伤组织在液体培养 基中培养，建立悬浮培养物 优点：细胞团成小 细胞团或单细胞； 在培养基中均匀分 布；有空气交流。 植物细胞悬浮培养 技术 （Su

5、spension culture） 特点：特点： 细胞可以不断增殖，形成高密度的细胞群体，适 于大规模培养； 能够提供大量较为均匀的细胞，为研究细胞的生 长、分化创造方法和条件。 必须指出：悬浮培养中既有单细胞，也有小细胞团。 概念：是指一种在受到不断摇动的液体培养 基里，培养单细胞及小细胞团的组织培养系 统。 1、起始悬浮液的制备 愈伤组织液体培养基 摇床振荡 悬浮培养 质地疏松，细胞分散程度大； 质地紧密，细胞分散程度小，不适于悬浮培养 转速30150rpm 防细胞破裂 2、悬浮培养的基本形式、悬浮培养的基本形式 分批培养 连续培养 2.1 分批培养（Batch culture） 2.1.

6、1 含义：将细胞分散在一定容积 的培养基中进行培养。 在培养过程中除了气体和挥发性代 谢产物可以同外界空气交换外，一切都 是密闭的。 它是进行细胞生长和细胞分裂的生 理生化研究常用的培养方法。 2.1.2 2.1.2 特点特点 培养基体积固定 当培养基中的营养物质耗尽时， 细胞的分裂和生长也停止 必须适当搅拌 2.1.3 继代的方法和最佳时期 继代方法：用注射器或移液管吸取一定 量的含单细胞和小细胞团的悬浮培养物， 并移到含有新鲜培养基的培养瓶里，继 续进行培养。 注意：要适当稀释 继代 最佳继代时期： 选择指数生长期和直线生长期。 2.1.4 细胞生长曲线 在整个培养过程中，细胞数目不断发

7、生变化，呈现出明显的由慢到快，再 到慢，最后增长停止的细胞周期。 细胞的生长呈S形曲线 滞后期 (lag phase) 指数生长期 (exponential phase) 直线生长期 (linear phase) 减慢期 (progressive deceleration phase) 静止期 (stationary phase) 培养时间培养时间 培养细胞数目培养细胞数目 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 滞后期 (lag phase) 细胞很少分裂，其时间长短取决于在继代时原种 培养细胞所处的生长期和转入细胞数量的多少 培养时间培养时间 培养细胞数目培养细胞数目 1 2 3 4 5

8、1 指数生长期 (exponential phase) 细胞分裂活跃，细胞数目迅速增加 培养时间培养时间 培养细胞数目培养细胞数目 1 2 3 4 5 2 直线生长期 (linear phase) 细胞生长和发育最快的时期 培养时间培养时间 培养细胞数目培养细胞数目 1 2 3 4 5 3 减慢期 (progressive deceleration phase) 由于培养基中某些营养物质已经耗尽，或 是由于有毒代谢产物的积累，细胞的增长逐 渐减慢 培养时间培养时间 培养细胞数目培养细胞数目 1 2 3 4 5 4 生长几乎处于停止状态，细胞数目增加 极少，甚至开始死亡。 静止期 (statio

9、nary phase) 培养时间培养时间 培养细胞数目培养细胞数目 1 2 3 4 5 5 小结： （1）滞后期的长短主要取决于在继代时原种培养细 胞所处的生长期和转入细胞数量的多少。 （2）加入条件培养基可以缩短滞后期。 条件培养基：曾培养过一段时间组织或细胞的培养基。 （3）缩短两次继代时间间隔，则可使悬浮培养的细 胞一直保持指数生长期。 （4）如果使处在静止期的细胞悬浮液保持时间太长， 则会引起细胞的大量死亡和解体。 操作注意事项： 对悬浮培养细胞继代时，进液口的孔径 要小，只能通过单细胞或小细胞团（24细 胞），使用吸管或注射器。 继代前，培养容器静置短时间，大细胞 团沉降，再吸上层悬

10、浮液。依此，多次，可 建立良好的细胞悬浮培养物。 2.2 连续培养（Continuous culture） 加入培养基 排出培养基及其培养物 分：开放式连续培养 封闭式连续培养 开放式和封闭式区别 封闭式中：排出液中的细胞用机械方法收集 后，又放入原培养基，所以其培养细胞数目不 断增加； 开放式中：在注入新鲜培养基的同时，培养 细胞随同培养液一起流出 。 连续培养意义： 植物细胞代谢调节的研究 某种生长限制因子对细胞生长的影响 次生物质的大量生产 紫杉醇是获得美国FDA(1992)认证的优良抗 肿瘤药物。红豆杉树皮中紫杉醇的含量为万分 之二，其在国际市场上售价为20万美元/kg 由悬浮细胞再生

11、植株的途径 由悬浮细胞直接形成体细胞胚 先将悬浮细胞在半固体培养基上诱导形 成愈伤组织，然后再由愈伤组织分化植 株 3 细胞悬浮培养的培养基 3.1 悬浮培养对培养基的要求 能用来建立生长快、易散碎的愈伤组 织的培养基，一般也适用于建立该物种 的悬浮培养。 在活跃生长的悬浮培养物中，无机 磷酸盐的消耗很快，不久成为限制因子。 Noguchi等(1977)证明，把烟草悬浮培养 物保存在一种含有标准的MS无机盐培养 基中，培养开始3d之内无机磷酸盐的浓 度就几乎下降为零，即使把培养基中磷 酸盐的浓度提高到原来的水平的3倍，5d 之内也会被细胞全部用完。 高等植物的悬浮培养，B5和ER培养基。 3.

12、2 条件培养基 把在液体培养基里 培养46周的高浓度 细胞滤掉，而用他的培养基制成悬滴或 薄层来培养单细胞或低密度细胞群体。 3.3 培养基的振荡 防治细胞缺氧死亡 防治大的细胞团的形成 3.4 悬浮培养细胞的同步化 同步培养： 指在培养中大多数细胞都能同时通过 细胞周期的各个阶段。 应用：为了便于研究细胞分裂和细胞 代谢 3.4.1 物理方法 A 按细胞团的大小 通过对细胞物理特性（细胞或小细胞 团的大小）的控制，以实现高度的同步 化 B 低温休克法 通过对生长环境条件（光照、温度 等）的控制，以实现 高度的同步化 3.4.2 化学方法 A 饥饿法 先对细胞断绝一种细胞分裂所必须的 营养物质

13、成分或激素，使细胞停滞在G1 或G2期，经过一段时间的饥饿后，当重 新在培养基中加入这种限制因子时，静 止细胞就会同步进入分裂。 细胞周期（cell cycle)是指细胞从第一次分裂 结束产生新细胞到第二次分裂结束所经历的全过 程，分为间期与分裂期两个阶段。 间期又分为三期、即DNA合成前期（G1期）、 DNA合成期（S期）与DNA合成后期（G2期）。 细胞分裂期：前期，中期，后期，末期 3.4.2 化学方法 B 抑制法 使用DNA合成抑制剂，如5-氨基尿嘧 啶、羟基尿和胸腺嘧啶脱氧核苷 当细胞受到化学药物抑制时，细胞周 期只能进行到G1，细胞滞留在G1期S期的 边界上。 4 悬浮培养中细胞生

14、长量的计算 q细胞计数 q细胞密实体积（PCV） 5铬酸或0.25果胶酶使悬 浮细胞团分散 用血球计数板进行。 将体积已知、均匀分散的悬浮液放入一个 15ml 的离心管中，3000rpm离心，用每毫升培 养液中细胞总体积的毫升数表示。 q细胞鲜重 q细胞干重 细胞鲜重：细胞培养物过滤，洗去培养 基，真空抽滤，称重。 细胞干重：60干燥12h，称重。 以每毫升培养物或106个细胞的重量 表示。 5 培养细胞活力的测定 v相差显微术法 v vTTC法（2,3,5-氯化三苯基四氮唑） vFDA法（荧光素双醋酸酯法） v伊凡蓝法(Evans blue)（FDA的互补法） 根据细胞质环流和细胞核存在与否，鉴别细胞 的死活。 环流正常、核存在表明有活力； 在活细胞中，TTC被还原成红色甲鐟，提取甲 鐟用分光光度计检测。 活力受损的细胞能够摄取这种染料，完整的活细 胞则不能，凡染蓝色的细胞是不具有活力的细胞 FDA法的原理 vFDA本身不具有极性，不能发出荧光，可以自由出 入细胞