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文档简介
1、粗蛋白的测定 凯氏定氮法 粗蛋白含量的测定(凯氏定氮仪测定) 蛋白质含量测定(凯氏定氮法) 1 原理 蛋白质是含氮的有机化合物。食品与硫酸和催化剂一同加热消化,使蛋白质分解,分解的氨与硫酸结合生成硫酸铵。然后碱化蒸馏使氨游离,用硼酸汲取后再以硫酸或盐酸标准溶液滴定,依据酸的消耗量乘以换算系数,即为蛋白质含量。 2 试剂及其配制 硫酸钾(分析纯)、五水硫酸铜(分析纯)、浓硫酸(分析纯)、40%naoh溶液(400g/l)、蒸馏水 0.1n盐酸标准溶液:量取9ml盐酸加适量水稀释至1000ml。 4%硼酸:取40g硼酸加水适量溶解后,定容至1000ml容量瓶中。 指示剂:甲基红0.1g,溴甲酚绿0
2、.1g,混合定容至100ml 95%乙醇中,在滴定中加23滴于硼酸中。 3 仪器 消化炉、半自动凯氏定氮仪、天平(0.1mg、0.1g) 4 分析步骤 4.1 称1g(精确至0.1mmg)左右样品于消化管中; 4.2 加7g硫酸钾和0.8g五水硫酸铜; 4.3 加12ml浓硫酸,渐渐地摇动,将样品用酸浸湿; 4.4 将涤气装置接在支架中的消化管上,将水抽气泵水龙头全开; 4.5 将装有涤气装置的消化管连支架放入消化器中; 4.6 5min后调小抽气泵水流,使酸恰好吸入涤气罩头; 4.7 连续消化直至全部样品变为透亮的蓝绿色澄清液体,依据样品种类,消化时间大约在3060min之间(将温度升到42
3、0时开头计时); 4.8消化完毕,将装有涤气装置的消化管连支架一起从消化器中取出冷却15-20min; 4.9 在每个消化管中加入25ml蒸馏水; 4.10 将30ml接受液加入锥形瓶再加2滴甲基红-溴酚绿指示剂,放入蒸馏器升起持瓶台后,使馏出液出口浸入接受液; 4.11 将消化管放入蒸馏器,关上平安门; 4.12 加60ml 40% naoh加入消化管后进行蒸馏; 4.13 接受瓶中的溶液呈绿色,表示有碱-氨存在。 4.14用标准盐酸溶液滴定馏出液至蓝/灰色为滴定终点,记录盐酸溶液用 粗蛋白含量的测定(凯氏定氮仪测定) 量,同时做试剂空白试验。除不加样品外,从消化开头操作完全相同,记录空白试验消耗盐酸标准溶液的体积。 5 结果计算 粗蛋白(干基%)=n(v1-v2)0.114.007f/m(1-m%) 式中:nhcl标准溶液的浓度,mol/l v1滴定样品汲取液时消耗盐酸标准体积,ml v2滴定空白汲
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