试验动物保定方法

1、、实验动物的捉拿、固定及给药方法1 . 小白鼠：右手抓住鼠尾，放在台上或鼠笼盖铁丝网下，然后用左手拇指沿其背部向前抓住其颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住其尾固定在手上。另一抓法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾尖，后用手掌及小指夹住其尾巴，再以拇指及食指捉住其颈部皮肤。前一方法易学，另一方法稍难，但便于快速捉拿给药。小鼠灌胃（PO）法：将小鼠固定后，右手持装有灌胃器的注射器，自口角外插入口腔，沿上颚插入食道。如遇阻力，可将注射器拔出再插，以免穿破食道或误入气管，造成动物死亡。灌胃容量一般为 0.10.2ml/10g,不超过0.5ml/只。小鼠皮下注射法：两人合作，一人一手抓住小白鼠头部皮肤

2、，另一手抓住鼠尾。另一人注射药物。注射部位在背部皮下组织。如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好药液的注射器针头插入背部皮下组织。如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好的药液的注射器针头插入背部皮下将药注入。注射量不超过0.5ml/只。小鼠腹腔注射法：左手持鼠，右手持注射器从下腹左或右侧（避开膀胱）朝头部方向刺入，宜先刺入皮下，经23mm再刺入腹腔，此时针头与腹壁的角度约45度。针尖插入不宜太深或太近上腹部，避免刺破内脏，注射量一般为0.10.25ml/只。小鼠尾静脉注射法：将小鼠置于固定器内，使其尾巴露出，用70% 酒精擦尾部，或将鼠尾浸入50热水中。待尾部静

3、脉扩张后，左手拉尾，右手进针。注射容量不超过0.5ml/只。2 .兔 ：用手抓起它脊背近后颈处皮肤，抓的面积越大其持重点越分散。如家兔肥大，应再以另一手托住它的臀部，将持重点承托于手上。将兔作仰卧位，一手仍抓住颈部皮肤，另一手顺其腹部抚摸至膝关节，压住关节。另一人用绳带捆绑四肢，使兔腹部向上，固定在兔手术台上。头部则用兔头固定夹固定。兔灌胃法：二人合作，一人固定家兔于两膝之间，一手固定兔头，使头部后仰，另一手将开口器插入兔口，并向后翻转数次，使兔舌伸直并压在开口器下面。另一人将胃管从开口器中央孔也插入口内缓慢插入食道和胃。插管时感觉顺利，动物不挣扎，也不屏气，表示胃管在胃内，为慎重起见，将胃管

4、外端放入水中，当兔呼气时，未见气泡出现，即证实胃管在胃内，然后将药液缓缓经胃管注入。灌胃容量一般为10ml/kg。兔耳静脉注射法：两人合作，一人固定兔身及兔头，一人将兔耳后缘之毛拔去，显露耳缘静脉，用手指轻弹耳壳，使血管扩张。助手左手指压住耳缘静脉根部，待血管明显充血后， 将抽好药液的注射器从静脉近耳尖处插入血管。针头刺入血管以后，以左手拇指和食指将针头与兔耳固定，不让针头滑动。放开耳根静脉手指压力，即可注放药液，若针头确实在血管内，则推药通畅无阻力，并见血液被药液冲走，如沆入皮下则耳壳肿胀、推注不顺，需拔出重新注射。注射守毕，用手指按在针眼上，然后将针尖抽出，并继续用手指或加棉球轻轻按压2

5、3分钟，以防出血，注射量 0.52.5ml/kg。3 .大白鼠：以左手或持夹子抓住鼠尾，左手戴防护手套或用厚布盖住鼠身作防护，握住其整个身体，并固定其头骨，防止被咬伤，注意不要握力过大，勿捏其颈部以免窒息致死，根据实验需要可指定于大鼠固定笼内或用绳绑其四肢，固定于大鼠手术台上。大白鼠灌胃、腹腔注射、静脉注射均可一人操作，基本方法与小鼠相似。也可将大鼠腹股沟切开，从股静脉注射药物，也可从外颈静脉插管给药（麻醉后）。4 .豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢挟在豚鼠头与右手拇指和食指之间，整个抓住颈胸部（不要抓得太紧以免窒息），左手抓住两后肢，使腹部向上，而后进行操作。豚鼠腹腔注射可二人操作，一

6、人固定，将动物置于仰卧位，另一人注射。雄性豚鼠可作阳茎背静脉注射给药。5 .狗 ：绑狗嘴法：先将绳子绕过狗嘴，在嘴上部打一活节，再绕到嘴下部打结，最后绕到颈后打结固定，才能避免绳子脱掉。固定法：急性实验时，将麻醉狗固定在手术台，四肢绑上绳。前肢的两条绳在狗背后交叉， 然后将对侧前肢压在绳下面，再将绳拉紧，缚在手术台边缘楔子上。头部用背夹或绳扎其颌骨固定之。狗静脉注射法：常用的注射部位是后肢小隐静脉，该血管从后肢外踝后侧走向外上侧, 也可用前肢静脉，在脚爪上方背侧正前位，静注时先局部剪毛，一人用手抓紧腿使血液回流 受阻，此时可看出血管走向。另一人随即将药液注入静脉。附：资料片实验动物捉拿：1.小

7、白鼠的捉拿 2.豚鼠的捉拿 3.家兔的捉拿 4.猫的捉拿5.犬的捉拿实验动物给药:1.灌胃给药 2皮下注射 3.肌肉注射 4.静脉注射5.腹腔注射6 .蟾蛛的淋巴囊注射实验动物的性别辨认实验动物的标号有口服和灌胃两种方法。适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、狗等动物。口服法可将药物混入饲料中或溶于饮水中任动物自由摄取，此法简单，也不会因操作失误而导致动物死亡。但由于动物的状态和嗜性的不同，饮水和饲料的摄取量不同， 大部分很难准确掌握给药量。另外，室温下易分解物质的给药，小量被检物质的 给药，都很难准确平均添加。为保证准确掌握给药量，则常用灌胃法。灌胃法由 于能掌握给药时间，故能记录发现症状的时间经过。

8、灌胃法与添加给药方式相比， 每天除给药耗费时间以外，还对动物造成一定程度的机械的和心理的影响， 要减 少这些不良影响，有必要充分掌握灌胃技术。现在有各种不同型号的灌胃针头可 把药物直接送到动物胃内，注意针头顶端小球的直径应大于所用动物的气管直 径，这样药物便不会灌人肺内。小鼠：用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和头部皮肤，以无名指或小指将尾巴 紧压在掌上，使腹部朝上，头部向上有一个倾斜度，右手取注射器进行灌胃。先 从小鼠口角插人口腔内，然后用灌胃管压其头部，使口腔与食道成一直线，再将 灌胃管沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃管继续经口进入时，稍感有抵抗，此位置 相当于食道通过膈肌的部位。把灌胃管伸到底，

9、使其达胃，如此时动物安静，呼 吸无异常，可将药物注人。如小鼠挣扎或遇有阻力应抽出灌胃管再试插之，若强行操作，会损伤食道或膈肌，造成小鼠死亡。在灌入药物之后，轻轻地将管子抽 回。如插入气管注射后动物立即死亡。此种灌胃方法的要点是：动物要固定好， 头部和颈部保持平行，进针方向正确，操作时不宜粗暴。大鼠：大鼠灌胃方法与小鼠相似，只是大鼠灌胃针头比小鼠的略粗一些。 抓取 大鼠时，除将左手拇指和食指抓住两耳和头部皮肤外， 其它三指要抓住背部皮肤， 将大鼠抓持在手掌内。在进行灌胃时，首先将灌胃管放在门齿与臼齿间的裂隙， 使灌胃管沿着口腔上都向后达到喉头。在将灌胃管送入食道之前，让大鼠吞烟， 如果大鼠不吞咽

10、，轻轻转动管子刺激吞咽动作。 注意左手不要抓得太紧，以颈部 皮肤向后拉，勒住食管，灌胃针不易插人并容易损伤食管。 为防止插入气管，可 将注射器的内栓轻轻回抽一下，证实没有空气逆流后注药。豚鼠：豚鼠灌胃时，助手以左手从动物的背部把后腿伸开， 并把腰部和后腿一 起固定，用右手的扬指和食指夹住两前腿固定之。术者右手所持的豚鼠用灌胃管 沿动物上腭壁滑行插入食道，进而插入胃内灌药。也可用木制开口器，把导尿管 通过开口器中央的孔插入胃内。上述两种方法皆需回抽证实注射器内无空气时才 能慢慢注入药液。最后需注入生理盐水 2ml,将管内残留的药液冲出，以保证投 药剂量的准确。若给固体药物时，把豚鼠放在金属网上，

11、以左手掌从背部握住豚鼠的头颈部而固 定之，以拇指和食指压迫其口角都使目张开。 用摄子夹住固体药物，放进豚鼠舌 根部的凹处，使动物迅速开口而咽下。当证实咽下后即放开手。兔：兔的固体药物口服法与豚鼠基本相似。液体药物灌胃法需二人协作进行。一人坐好，将兔的躯体夹于两腿之间，左手紧握双耳，固定其头部，右手抓住前 肢。另一人将开口器横放于兔口中， 将舌头压在开口器下面，把开口器固定。将 合适的胃管或导尿管经开口器中央小孔慢慢沿上颗壁插入食道约1518cmi为避免误入气管，可将胃管的外口端放入清水杯中， 若有气泡逸出，则证明在气管 内，应拔出重新插入，若无气泡则用注射器将药物灌入，然后再注入少量清水， 将

12、胃管内药液冲入胃内。灌胃完毕后先拔出胃管，后拿出开口器，以免胃管被动 物咬坏。现将各种动物一次灌胃能耐受的最大容积列表如下，以供参考。各种动物一次灌胃能耐受最大容量物物种类体重(g)最大容积(ml)动物种类体重(g)最大容积(ml)家兔>3500200大鼠>3008.0250035001502503006.0200024001002002494.0 5.0100 199 |3.0小鼠>301.0豚鼠>3006.025 300.82503004.0 5.020 240.5随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据 实验研究目的、实验动物的种类及药物

13、剂型、 剂量的不同，要求对实验动物实施 不同的给药方法。尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定， 经口灌 胃给药方法是一种重要的途径。 在国内文献上却很少见到具体的描述。 在此，作 者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、 大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法 介绍如下。一、灌胃器具制作1.1 小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I216号灌胃针。二是自制。自制方法为：取12号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光， 再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。加工成有20 度弧度的灌胃针，连接1ml 或 5ml 的注

14、射器，即成为大小鼠的灌胃器。 在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。1.2 家兔灌胃器的制作取12号腰椎穿刺针。加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm并连接 10ml 或 20ml 注射器，即家兔灌胃器。、灌胃操作方法2.1 小鼠经口灌胃给药方法先保定动物, 即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时， 用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢， 以小指压住小鼠尾巴即可。在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部， 以免窒息死亡。以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直

15、线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎， 必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。注完药液后轻轻抽出灌胃针。小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w 。2.2 大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。为了防止大鼠咬伤， 应戴上帆布手套。大鼠体型较大，所以不能象保定小鼠那样可以把尾巴压住。同样在保定大鼠时不能用力过大和握其颈部，尤其在采取抓握保定大鼠时，要特别注意

16、。 大鼠灌胃的关键是左手把大鼠头部固定好，使其头不能随意摆动。其他操作方法与小鼠基本相同。灌胃针进入深度为5cm左右。大鼠一次灌胃最大容量 2ml/100g.w。2.3 豚鼠经口灌胃给药方法把豚鼠放在实验台上，用一块干纱布罩住其头，将豚鼠固定在左手掌下，用拇指和食指挤压其口角部让口张开。然后， 右手持抽好药物的灌胃器，沿豚鼠上腭壁插入食道。如果灌胃器插入顺畅，位置正确，豚鼠会自动吞咽。否则，豚鼠会乱动，此时应立即拔出灌胃器，重新插入灌胃器，灌胃器进入深度为5cm左右。豚鼠一次灌胃最大容量2.0ml/100g.w 。2.4 家兔经口灌胃给药方法把实验兔放在实验台上，用左手掌从头部握住兔头颈部，将其固定，用拇指和食指使劲压迫其口角部使口张开。然后， 右手持抽好药液的灌胃器，用有弧度灌面从右口角处慢慢插入。如插入位置正确就会看见兔自动吞咽，如插入不对，动物就会乱动，此时应立即拔出灌胃器，重新插入灌胃器，灌胃针进入深度为1518cm。 药物注完后，慢慢拔出灌胃器。用此方法给兔灌胃给药，基本上不会把药物误注入气管。家兔一次的最大灌胃量为：80150ml/只。三、注意事项3.1 小鼠、大鼠保定动物时，一定要固定好动物，使动物头不要随意摆动，但不能挤捏颈部。灌胃器针头弧度面向前