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文档简介
1、KDR mRNA在非小细胞肺癌中的表达及其临床意义【摘要】 探讨血管内皮生长因子受体2(KDR)与微血管密度表达与非小细胞肺癌(NSCLC)生物学行为与预后的关系。方法 分别应用原位分子杂交及免疫组织化学方法检测62例NSCLC和16例肺良性瘤样病变组织中的KDR mRNA、MVD的表达。结果 (1)NSCLC与肺的良性瘤样病变MVD、KDR mRNA的表达具有显著性差异(P0.01 ),肺癌MVD随KDR mRNA 表达增强而增多,两者呈正相关。(2)MVD和KDR mRNA的表达在肺腺癌高于肺鳞癌(P0.01)两者随淋巴结转移、TNM分期的进展而升高(P0.01)。(3)生存期5年者MVD
2、和KDR mRNA的表达显著高于生存期5年者(P0.01)。结论 MVD和KDR mRNA的表达与NSCLC的发生、发展、转移关系密切,可以作为评估NSCLC生物学行为及预后判断的指标,KDR可能成为NSCLC的一个潜在的抗血管生成治疗的靶点。 【关键词】 血管内皮生长因子受体2 非小细胞肺癌 原位分子杂交 微血管密度0 引言 肺癌的侵袭和转移是患者治疗失败和死亡的主要原因,而新生血管的生成是肺癌侵袭和转移的解剖学和生理学基础,血管内皮生长因子(Vascular endothelial growth factor, VEGF)及其受体2(Kinase domaincontaining rece
3、ptor , KDR/VEGFR2/Flk1)在促进内皮细胞的分裂与增殖,促进血管生成中起着关键作用。许多肿瘤及其血管内皮细胞均有KDR表达升高,KDR表达水平与血管内皮细胞的更新速度呈正相关。 本研究应用原位分子杂交技术检测非小细胞肺癌(Nonsmall cell lung cancer, NSCLC)中KDR mRNA的表达,应用免疫组化SP法检测微血管密度(Microvascular density, MVD)的表达,试图探讨KDR mRNA的表达对MVD的影响,以及KDR mRNA 表达与临床病理特征及预后的相关性,以探测KDR的作用机制,为NSCLC的抗血管生成治疗提供理论依据。1
4、材料与方法1.1 临床资料 选用1999年3月至2000年3月我院心胸外科手术切除并经病理学确诊的NSCLC 标本62例,其中男44例,女18例;年龄3776岁,平均55.9岁。所有患者术前均未行放疗和化疗,经影像学检查确认无远处转移。按WHO肺肿瘤组织学分型(1981)标准,包括肺鳞癌27例,肺腺癌35例。组织学分级为级7例,级25例,级30例。按UICC(1997)肺癌分期标准,包括期17例,期10例,期33例,期2例。肿瘤长径为1.811.0,平均5.0 。有淋巴结转移39例,无淋巴结转移23例。其中42例有完整随访资料,生存期5年者32例,5年者10例。另选同期肺良性瘤样病变16例(其
5、中结核球11例,炎性假瘤3例,浆细胞肉芽肿1例,纤维软骨脂肪瘤1例)组织标本作对照。1.2 主要试剂 CD34鼠单抗、免疫组化SP试剂盒和DAB显色试剂购自福州迈新生物技术开发有限公司,KDR mRNA原位杂交试剂盒购于武汉博士德生物工程有限公司。1.3 实验方法 石蜡块标本制成4m切片,原位分子杂交采用胃蛋白酶暴露mRNA核酸片断,参照试剂说明书进行,以细胞胞质内出现棕黄色颗粒为阳性杂交信号,少量胞核也有阳性信号,无阳性信号为阴性。免疫组织化学染色程序按SP试剂盒说明书进行,同时用已知的阳性切片在同条件下染色作为阳性对照,用PBS代替一抗作为空白对照。 肿瘤MVD的测量应用HPIAS2000
6、型全医学彩色图像分析系统分析处理。参照Weidner方法1,先在低倍光镜(20,100)下扫描整张切片,确定3个高血管密度区,即“热点”,再在高倍镜(400)下计数被染成黄色的微血管数目,结果用3个高倍镜视野下微血管数目的平均数表示。1.4 统计学处理 使用SPSS11.5统计软件包,两个均数之间的比较用student t 检验,计数资料用2检验 。2 结果2.1 MVD与NSCLC NSCLC组织内微血管密度分布,相互间联系紧密,MVD平均为43.7812.46;肺良性瘤样病变微血管分布均匀且少,MVD平均为7.424.12 ,NSCLC较肺良性瘤样病变显著升高(P0.01)(表1)。从表1
7、还可以看出,肺腺癌组织MVD明显高于鳞癌组织(P0.05),期组MVD明显高于期组(P0.05),有淋巴结转移组MVD明显高于无淋巴结转移组(P0.05),而不同组织学分级与肿瘤大小间无显著性差异。2.2 KDR mRNA与NSCLC KDR mRNA 阳性信号以胞质出现棕黄色或棕褐色颗粒判断(图1、2)。由表1可见,KDR mRNA表达在肺癌高、中、低分化组织中依次上调,低分化、中分化肺癌组织中阳性表达率较高分化显著升高,差异有显著性(P0.05)。TNM分期期病例中KDR mRNA表达阳性率 80(39 / 45)高于期病例的58.82(10 / 17),差异有显著性(P0.01)。有淋巴
8、结转移者表达阳性率较阴性组差异有显著性(P0.05)。肿瘤大小间KDR的阳性表达率差异也有显著性(P0.05)。而KDR mRNA表达阳性率与肺癌的病理类型无明显相关关系(P0.05)。图1 鳞癌KDR mRNA (100)(略)图2 腺癌KDR mRNA (100)(略)2.3 MVD和KDR mRNA表达与NSCLC预后 从表1可见,生存期5年组的MVD明显高于生存期5年组(P0.01);同样,生存期5年组的KDR mRNA的阳性表达率亦明显高于生存期5年组(P0.05)。表1 MVD、KDR mRNA和NSCLC临床生物学的关系(略)2.4 MVD与KDR mRNA表达的关系 62例NS
9、CLC中,KDR mRNA()49 例,KDR mRNA() 13例;KDR mRNA()者MVD为51.726.71,KDR mRNA()者MVD为 44.03 10.84 ,KDR mRNA表达阳性者MVD较KDR mRNA表达阴性者明显升高(P0.01)。见表2。表2 KDR的表达与微血管密度(MVD)的关系(略)3 讨论 肿瘤的血管新生成是一个包括血管内皮溶解,内皮细胞增殖和迁移及血管腔形成的复杂过程,并且是由促进和抑制血管生成的正负相关因子共同调控的复杂过程。在生理状况下,正负因子处于平衡状态。而肿瘤在其生长、演进过程中分泌促血管生成的相关因子,将平衡打破,诱导血管新生。肿瘤血管生成
10、过程中VEGF及其受体KDR起重要作用。KDR与VEGF的亲和力为Kd752770Pm,具有明显的化学趋化作用和促分裂活性,而Flt1缺乏此活性2.3。人在胚胎和出生时的脑血管也可有KDR表达,但成年后明显减少。VEGF基因显性阴性研究表明KDR与血管岛、血管形成和造血有关,提示KDR是血管生成的主要调控因子4。VEGF具有强烈的诱导血管内皮细胞表达其受体的作用,VEGF及其受体通过自分泌或旁分泌途径,联合调控内皮细胞分化与血管形成。由于实体瘤的生长与转移对血管新生的依赖性,VEGF及其受体已成为近年来抗治疗血管生成的重要研究靶点。 本研究结果显示,NSCLC中MVD和KDR mRNA表达明显
11、高于肺良性瘤样病变(P0.05),MVD随KDR表达增强而增多,两者呈正相关,与Koukourakis等5 报道一致。提示在NSCLC中存在着活跃的血管生成,KDR作为VEGF的的最重要的功能受体,KDR在介导肿瘤血管新生方面起重要的作用。 KDR在肿瘤组织中的表达水平与肿瘤患者预后的关系,目前仍然存在较大的争议,Delmotte等6进行的meta分析发现,VEGF可以作为预测NSCLC患者的预后指标,而KDR作为NSCLC患者的预后指标的证据不足,但Decaussin等7的研究表明,KDR mRNA的表达水平与肺癌组织中的血管生成呈正相关,而与NSCLC患者的生存期呈负相关。Harada等8
12、认为KDR可以作为结直肠癌患者的预后指标。本研究发现,KDR mRNA表达水平与NSCLC患者的生存期呈负相关,且可以作为预测NSCLC的预后指标。 综上所述,肺癌组织中KDR mRNA表达明显高于良性病变组织,且与肺癌大小、淋巴结转移状况和PTNM分期呈正相关(P0.01) ,而与癌细胞分化程度呈负相关。KDR mRNA阳性表达组的5年生存率显著低于阴性表达组,从而提示KDR参与了肺癌的发生发展与肺癌的恶性程度密切相关,可以作为肺癌生物学行为的一项评估指标。而且KDR mRNA的表达阳性者较KDR mRNA表达阴性者的MVD数目显著增加,提示KDR可能成为NSCLC的一个潜在的抗血管治疗的靶
13、点。【参考文献】 1 Weidner N. Current pathologic methods for measuring intratumoral microvessle density within breast carcinoma and other solid tumors. Breast Cancer Res Treat, 1995, 36(2):16980.2 Meister B, Grunebach F, Bautz F, et al. Expression of VEGF and its receptors in human neuroblastomaJ. Eur J Can
14、cer, 1999, 35(3):44549.3 Witte L, Hicklin DJ, Zhu Z, et al. Monoclonal antibodies targeting the VEGF receptor2 (Flk1/KDR) as an antiangiogenic therapeutic strategyJ. Cancer Metastasis Rev, 1998, 17(2): 15561.4 HeroldMende C, Steiner HH, Andl T, et al. Expression and functional significance of vascul
15、ar endothelial growth factor receptors in human tumor cellsJ. Lab Invest, 1999, 79(12): 157382.5 Koukourakis MI, Giatromanolaki A, Thorpe PE, et al. Vascular endothelial growth factor/KDR activated MVD versus CD31 standard microvessel density in nonsmall cell lung cancerJ.Cancer Res,2000,60(11):3088
16、95.6 Delmotte P, Martin B, Pasemans M, et al. VEGF and survival of patients with lung cancer:a systematic literature review and meta analysisJ .Rew Mal Respir,2002,19(5):57784.7 Decaussin M, Sartelet H, Robert C, et al. Expression of vascular endothelial growth factor(VEGF) and its two receptor(VEGFR1/Flt1 and VEGFR2/Flk1/KDR) in nonsmall cell lung carcinomas(NSCLCs): correlation with angiogenesis and survivalJ. J Pathol, 1999, 188(4):36977. 8
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