16SrDNA鉴定细菌地方法

wordword/word16SrDNA鉴定细菌的方法细菌16SrDNA鉴定主要分为7个局部：1.提取细菌基因组DNA,

2.设计/选择引物进展PCR扩增，电泳检测纯度与大小。

5.目的片段测序。

6.BLAST比对获取相似片段。

试剂：培养基：通常选择组分简单且细菌生长良好的培养基〔培养基组分过于复杂会影响DNA的提取效果，也可以在裂解细菌前用TE缓冲液对菌体进展洗涤。〕。1.21MTris-HCl(pH7.4,7.6,8.0)〔1L〕：121.1gTris，加浓盐酸约〔70ml,60ml,42ml〕，高温高盐灭菌后，室温保存。冷却到室温后调pH，每升高1℃，pH大约下降0.03个单位。(Tris-HCl缓冲液〔0.05mol/L，25℃三羟甲基氨基甲烷〔Tris〕溶液与xml0.1mol/L盐酸混匀后，加水稀释至100ml。Tris缓冲液不仅被广泛用作核酸和蛋白质的溶剂，Tris也是蛋白质电泳缓冲液的主要成分之一)0.5MEDTA〔pH8.0〕〔1L〕：186.1gNa2EDTA•2H2O，用NaOH调pH至8.0〔约20g〕,高温高压灭菌，室温保存。(配置方法1.称取186.1gNa2EDTA•2H2O，置于1L烧杯中。2.参加约800mL的去离子水，充分搅拌。3.用NaOH调节pH值值8.0〔约20gNaOH〕。注意：pH值至8.0时，EDTA才能溶解。4.加去离子水将溶液定容至1L。5.适量分成小份后，高温高压灭菌。6.室温保存。〕

1.410×TEBuffer(缓冲液〕(pH7.4，7.6，8.0)〔1L〕：组分：100mMTris-HCl，10mMEDTA。1MTris-HCl〔pH7.4，7.6，8.0〕取100ml，0.5MEDTA〔pH8.0〕取20ml。高温高压灭菌，室温保存。

1×TEBuffer用10×TEBuffer稀释10倍即可。

1.510%SDS〔W/V〕：称10gSDS，68℃加热溶解，用浓盐酸调pH至7.2。室温保存。用之前在65℃溶解。配置时要戴口罩。

6、5MNaCl：称292.2gNaCl，高温高压灭菌，4℃保存。

7、CTAB/NaCl〔10%CTAB，0.7MNaCl〕：溶解4.1gNaCl，加10gCTAB〔十六烷基三甲基溴化铵〕，加热搅拌。用之前在65℃溶解。

8、氯仿/异戊醇：按氯仿：异戊醇=24：1〔V/V〕的比例参加异戊醇。

9、酚/氯仿/异戊醇〔25：24：1〕：按苯酚与氯仿/异戊醇=1：1的比例混合Tris-HCl平衡苯酚与氯仿/异戊醇。

10、TAE缓冲液：使用液1×：0.04mol/LTris-乙酸，0.001mol/LEDTA。浓储存液50×：242gTris，57.1ml冰醋酸，100ml0.5mol/LEDTA(pH8.0)。

11、6×上样缓冲液〔100ml〕：0.25%溴酚蓝〔BPB〕，40%蔗糖，10mmol/LEDTA(pH8.0)〔0.2ml〕，4℃保存。

12、0.6%琼脂糖凝胶：称取0.3g琼脂糖用TAE溶液配置50ml。

13、EB：10mg/ml。称取1g溴化乙锭定容至100ml。棕色瓶室温避光保存。EB的工作浓度为0.5ug/ml。当配置50ml琼脂糖凝胶时参加EB为2.5ul。〔因EB是剧毒物质，目前很多实验室用生物荧光染料替代，常用的有Gelred等〕

14、蛋白酶K：20mg/ml溶于水，-20℃保存，反响浓度50ug/ml，反响缓冲液：0.01mol/LTris(pH7.8),0.005mol/LEDTA,5%SDS，反响温度37-56℃。无需预处理。

15、RNaseA：10mg/ml。25mgRNaseA加1MTris〔pH7.5〕25ul，2.5MNaCl15ul，无菌水2460ul，于100℃加热15分钟，缓慢冷却至室温，分装成小份保存于-20℃。〔为防止RNA的干扰，使用RNA酶降解基因组中的RNA。〕根本步骤：材料准备破碎细胞或胞膜—内容物释放核算别离、纯化沉淀或吸附核酸，并去除杂质核酸溶解在适量缓冲液或水中基因组DNA提取所需仪器：高速冷冻离心机、恒温冰箱、移液器、水平电泳槽、紫外/荧光观测仪细菌基因组DNA提取方法综述细菌基因组DNA的提取方法主要有5种。不同的方法所选择的试剂会有所不同。

1快速微量提取法取1.5ml菌体培养物于一灭菌Ep管中，12000rpm离心1min,丢去上清夜，收集菌体。参加400ul裂解液〔40mMTris-醋酸，20mM醋酸钠,1mMEDTA,1%SDS,pH7.8〕混匀,置于37oC水浴1hr。然后参加200ul5mol/L的氯化钠溶液，混匀后于13000rpm离心15min。取上清液，用苯酚抽提2次，氯仿抽提1次。加两倍体积无水乙醇，1/10体积醋酸钾(3M,pH8.0)，-20度保存1小时后，13000rpm离心15min，弃上清液，沉淀用70%乙醇洗2次；置于室温枯燥后，溶于50ulTE溶液中，置4℃保存备用。

2蛋白酶/SDS法制备

用10ml含适当抗生素的GBM过夜培养Delftiasp.4000rpm离心10min收集菌体，用WashingTE〔50mmol/LTris-HClpH8.0,10mmol/LEDTApH8.0〕洗菌体2次。将菌体充分悬浮在5ml1×TE缓冲液中，先后参加0.5ml5mg/L的蛋白酶、0.5ml10%SDS，轻轻混匀后50℃放置3h-5h。用等体积的Tris饱和苯酚抽提2次，苯酚/氯仿/异戊醇抽提一次，氯仿抽提一次。〔取上清液。乙醇沉淀DNA。用自动移液器吸管头将絮状DNA沉淀块吸附到Ep管中，70%乙醇洗2次，枯燥后溶于适当1×TE或ddH2O中。3

细菌培养：细菌接种于5ml液体培养基中，37℃摇床〔300rpm〕培养过液。细菌收集：取1ml培养物于1.5mlEP管中，室温8000rpm离心5min，弃上清，沉淀重新悬浮于1mlTE〔pH8.0〕中〔用ddH2O也行)。菌体裂解：参加6μl50mg/ml的溶菌酶，37℃作用2h。再加2mol/LNaCl50μl，10%SDS110μl，20mg/ml的蛋白酶K3μl，50℃作用3h或37℃过夜。〔此时菌液应为透明粘稠液体〕。抽提：菌液均分到两个1.5mlEP管，加等体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1)，混匀，室温放置5-10min。12000rpm离心10min。抽提两次。〔上清很粘稠，吸取时应小心，最好枪头尖应剪去〕。沉淀：加0.6倍体积的异丙醇，混匀，室温放置10min。12000rpm离心10。洗涤：沉淀用75%的乙醇洗涤。抽〔凉〕干后，溶于50μlddH2O中，取2-5μl电泳。作PCR模板用。

5CTAB/NaCl裂解法接两环菌〔0.75ml甘油管菌液〕于25mlLB培养基中，37℃、200r/min培养24h。取1.5ml菌液于1.5mlEppendorf离心管中，8000r/min离心5分钟,弃去上清。参加1.5mlTE离心洗涤后,用567ulTE溶解菌体,混匀。参加30μl10%SDS和3ul20mg/ml的蛋白酶K〔100ug/ml〕，混匀，于37℃温育1h。参加100μl5mol/LNaCl,充分混匀，再参加80μlCTAB/NaCl,混匀,65℃温育10分钟。参加等体积的氯仿/异戊醇(24:1)〔0.8ml〕,混匀,12000r/min离心5分钟,保存上清。上清中参加等体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1)(0.8ml),混匀,12000r/min离心5分钟,保存上清。参加0.6倍的异丙醇〔0.48ml〕,轻轻混合直到DNA沉淀下来〔0.5h〕,12000r/min离心15分钟,收集DNA沉淀,用75%乙醇(1ml)12000r/min离心5分钟洗涤DNA沉淀，真空枯燥0.5h。用50ul双蒸水溶解DNA,参加终浓度为20μg/mlRNaseA，4℃保存。用0.6%琼脂糖凝胶电泳鉴定提取的DNA,每孔点样6μl(4μl样品+2μlloadingbuffer),80V,电泳1.5小时。2.设计选择引物进展16SrDNA的PCR扩增一般细菌鉴定选择通用引物，最常用的通用引物为27F/1492R。27F：5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'1492R：5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3'2.1实验原理2.1.1PCR多聚酶链式反响(polymerasechainreaction)简称ＰＣＲ技术，是８０年代中期开展起来的一种体外扩增特异ＤＮＡ片段的技术。此法操作简便，可在短时间内在试管中获得数百万个特异的目的ＤＮＡ序列的拷贝，ＰＣＲ技术虽然问世仅数年时间，但它已迅速渗透到分子生物学的各个领域，引起了生物技术开展的一次革命，目前它在分子克隆，目的根底检测，遗传病的基因诊断，法医学，考古学等方面得到了广泛的应用。ＰＣＲ技术实际上是模拟体内DNA合成过程，是在模板ＤＮＡ，引物和４种脱氧核苷酸存在的条件下依赖于ＤＮＡ聚合酶的酶促合反响，ＰＣＲ技术的特异性取决于引物和模板ＤＮＡ结合的特异性。反响分三步：①变性〔denaturation〕；②退火〔annealing〕；③延伸〔extension〕，反响过程见图。PCR〔PolymeraseChainReaction)的原理2.1.216SrDNA的核酸序列分析16SrDAN是编码原核生物核糖体小亚基rRNA〔16SrRNA〕的基因，是细菌分类学研究中最常用、最有用的“分子钟〞。16SrRNA的序列高度保守，可准确指示细菌之间的亲缘关系，16SrRNA的大小为1500bp左右，所含信息能反映生物界进化关系，易操作，适用于各级分类单元。目前常用的是建立在PCR技术根底上的16SrRNA基因的直接测序法，方便快捷。较之23SrDNA等看家基因而异，它具有分子大小适中，突变率小等优点，素有“细菌化石〞之称。其序列包含10个可变区〔variableregion〕和与之一样的11个恒定区〔constantregion〕，可变区因细菌而异，且变异程度与细菌的系统发育密切相关。2.1.3PCR法的操作过程Step1:DNA热变性；Step2:引物退火；Step3:引物延伸2.2PCR反响标准体系DNA模板引物反响缓冲液dNTPddH2O耐热聚合酶2.2.1PCR反响体系各组分的作用和使用量与反响条件ＤＮＡ模板：反响中ＤＮＡ量在５０ng～２００ng左右。且ＤＮＡ纯度较高，以增加反响特异性。dNTP:反响体系中达100μM～200μM。Mg2+：Mg2+是Taq酶的辅基浓度在2.0mM左右，浓度太低Taq酶活力降低；太高反响特异性降低。引物：根据目的基因两侧特定序列设计。引物约20碱基左右；Ｇ＋Ｃ含量在40％－70％之间；引物内部不能有回该序列；引物３’端不能互补。Taq酶：它是从嗜热杆菌中提取的耐热性ＤＮＡ聚合酶，在９５℃时３０分钟还有５０％活力。变性温度：在９３～９５℃之间使模板充分变性。复性温度：５５℃左右，此温度选择是根据模板和引物配对结合强弱而定，它是反响特异性的决定因素。延伸温度：７０～７２℃左右，为Taq酶最适反响温度。2.2.2材料设备与试剂设备：eppendorf管、微量取液器、台式高速离心机、电泳仪、电泳槽、凝胶成像系统、PCR仪试剂：16SrDNA引物、细菌基因组DNA、TaqPlus、dNTP、PCR、冲液、琼脂糖、TAE电极缓冲液、LamdarDNA/HindⅢ、染色液、加样缓冲液2.2.3操作步骤PCR反响依次混匀如下试剂5μl10×PCR反响缓冲液1μl4种dNTP2μl上游引物〔引物１〕2μl下游引物〔引物２〕1μl模板DNAμlTaqDNA聚合酶μlH2O混匀后离心5秒。扩增：用94℃变性3分钟，94℃变性1分钟，61℃退火1分钟,72℃延伸1分钟,循环30轮,进展PCR。最后一轮循环完毕后,于72℃下最后延伸5-10分钟，使反响产物扩增充分。电泳检测：1%琼脂糖凝胶电泳，分析PCR产物电泳结果。琼脂糖凝胶电泳别离和胶回收目的片段用TaKaRaDNA纯化试剂盒对PCR扩增产物纯化4.纯化后的目的片断送到测序公司测序也可以直接将电泳检测后的PCR产物送到测序公司，让公司对产物进展纯化和测序5.BLAST比对获取相似片段。将测序得到的16SrDNA序列在NCBI上进展blast比对，选择与比对序列相似度高的菌株。6.构建系统进化树将选择的序列与测序序列用DNAStar软件的MegAlign构建菌株系统进化树。如果要测16SrDNA的全序列长度如此需要对PCR产物做T-A克隆。T-A克隆步骤：PCR连接转化鉴定1.1T-A克隆需要在PCR产物末端加A尾巴有些PCR聚合酶可以在产物末端加A尾巴，但并不是所有的聚合酶会加A尾巴，所以在克隆之前最好搞清楚使用的酶到底是否加A，否如此克隆出来的白班太少，又要讨论很久。具有3'到5'外切酶活性的高保真酶就不会产生A尾巴。产物末端加A步骤：用高保真酶扩增完之后，在反响管中参加0.7-1unit的Tap聚合酶。无需更换buffer期中的dATP已经够用。在72孵育8-10min。立即进展纯化，沉淀、跑胶、或用纯化试剂盒。这一点相当重要，否如此高保真聚合酶会将A尾巴或T载体上的T尾巴切掉。1.2将加A尾巴的PCR产物与T载体连接常用的T载体有Invitrogen的T载体；Promege的pGEM-T和TaKaRa的pMD18-T。1.3将载体与目的片断的连接产物转化到大肠杆菌感受态细胞中进展液体摇床培养，涂平板进展蓝白斑挑选。1.4对挑选的菌落提质粒，电泳检测大小，对正确的阳性克隆的质粒进展酶切目的片断回收。目前对于T-A克隆技可以通过T-A克隆试剂盒来完成。细菌16SrDNA鉴定是应注意的问题和常见问题1细胞裂解须知事项1.1材料应适量，过多会影响裂解，导致DNA量少，纯度低2核酸别离纯化2.1采用吸附材料吸附的方式别离DNA时，应提供相应的缓冲体系。2.2采用有机〔酚/氯仿〕抽提时应充分混匀，但动作要轻柔。2.3离心别离两相时，应保证一定的转速和时间。2.4针对不同材料的特点，在提取过程中辅以相应的去杂质的方法。3核酸沉淀、溶解3.1当沉淀的时间有限时，用预冷的乙醇或异丙醇沉淀，沉淀会更充分。3.2沉淀是参加1/10体积的NaAc(PH5.2,3M)，有利于充分沉淀。3.3沉淀后应用70%的乙醇洗涤，以除去盐离子等。3.4晾干DNA，让乙醇充分挥发。3.5假如长期储存建议用TE缓冲液溶解，TE中的EDTA能螯合Mg2+或Mn2+离子，抑制DNase，TE缓冲液PH8.0可以防止DNA发生酸解。4DNA样品不纯，抑制后续酶解和PCR反响4.1DNA中含有蛋白，多糖，多酚类杂质：应重新纯化DNA，去除杂质。4.2DNA在溶解前有酒精残留，酒精抑制后续酶解反响：应重新沉淀DNA，让酒精充分挥发。4.3DNA中残留有金属离子：应增加70%乙醇的洗涤次数〔2-3次〕。5DNA提取量少5.1实验材料不佳或量少：应尽量选择新鲜的材料。5.2破壁或裂解不充分：G+菌裂解前应先用生物酶或机械方式破壁；高温裂解时，时间适当延长5.3沉淀不完全：低温沉淀，延长沉淀时间；加辅助物促进沉淀。5.4