GB∕T 18648-2020 非洲猪瘟诊断技术

B41中华人民共和国国家标准代替GB/T18648—2002非洲猪瘟诊断技术2020-12-14发布2020-12-14实施国家市场监督管理总局国家标准化管理委员会Ⅰ前言 2规范性引用文件 3缩略语 4生物安全措施 5临床诊断 5.1易感动物和宿主 5.4临床诊断结果判定 6实验室诊断样品采集及处理 7普通PCR方法 7.5试验成立条件 7.6普通PCR结果判定 8荧光PCR方法 8.3引物和探针 8.5试验成立条件 8.6荧光PCR结果判定 9荧光RAA方法 Ⅱ 9.5试验成立条件 9.6荧光RAA结果判定 10高敏荧光免疫分析法 10.4高敏荧光免疫分析结果判定 11夹心ELISA抗原检测方法 11.4试验成立条件 11.5夹心ELISA抗原检测结果判定 12间接ELISA抗体检测方法 12.4试验成立条件 12.5间接ELISA抗体检测结果判定 13阻断ELISA抗体检测方法 13.4阻断率计算方法 13.5试验成立条件 13.6阻断ELISA抗体检测结果判定 14夹心ELISA抗体检测方法 14.4试验成立条件 14.5夹心ELISA抗体检测结果判定 15间接免疫荧光方法 Ⅲ15.4试验成立条件 15.5间接免疫荧光结果判定 16综合判定 附录A（规范性附录）样品保存液的配制方法 附录B（规范性附录）聚合酶链式反应溶液的配制方法 附录C（规范性附录）酶联免疫吸附试验溶液的配制方法 Ⅴ本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。本标准代替GB/T18648—2002《非洲猪瘟诊断技术》，与GB/T18648—2002相比，除编辑性修改外，主要技术变化如下：—增加了缩略语（见第3章—增加了生物安全措施（见第4章—增加了临床诊断（见第5章—增加了实验室诊断样品采集及处理（见第6章—增加了荧光PCR方法（见第8章）、荧光RAA方法（见第9章）、高敏荧光免疫分析法（见第10章）、夹心ELISA抗原检测方法（见第11章）、阻断ELISA抗体检测方法（见第13章）、夹心ELISA抗体检测方法（见第14章）、间接免疫荧光方法（见第15章）等实验室诊断方法；—增加了综合判定（见第16章—增加了样品保存液的配制方法（见附录A)、聚合酶链式反应溶液的配制方法（见附录B);—修改了酶联免疫吸附试验溶液的配制方法（见附录C,2002年版的附录C)。请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。本标准由中华人民共和国农业农村部提出。本标准由全国动物卫生标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。本标准起草单位：中国动物卫生与流行病学中心。1非洲猪瘟诊断技术本标准规定了ASF的临床诊断，实验室诊断样品采集及处理，以及普通PCR方法、荧光PCR方法、荧光RAA方法、高敏荧光免疫分析法、夹心ELISA抗原检测方法、间接ELISA抗体检测方法、阻断ELISA抗体检测方法、夹心ELISA抗体检测方法、间接免疫荧光方法等实验室诊断方法。本标准适用于家猪和野猪ASF的诊断与监测。2规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB19489实验室生物安全通用要求3缩略语下列缩略语适用于本文件。非洲猪瘟(非洲猪瘟病毒(焦碳酸二乙酯(乙二胺四乙酸(酶联免疫吸附试验(光密度(磷酸盐缓冲液(聚合酶链式反应(重组酶介导的等温核酸扩增技术(无特定病原体(四甲基联苯胺(4生物安全措施进行ASF实验室诊断时，如样品处理、核酸提取等，应按照GB19489执行。5临床诊断5.1易感动物和宿主猪科动物是ASFV的易感动物。家猪和欧亚野猪对ASFV高度易感，且表现出相似的临床症状和死亡率；而非洲野猪，例如疣猪、丛林猪、红河猪和巨林猪，感染ASFV后很少或者不出现临床症状，是2病毒的储存宿主。5.2.1最急性：无明显临床症状突然死亡。有黏液脓性分泌物；呕吐；便秘，粪便表面有血液和黏液覆盖；或腹泻，粪便带血。共济失调或步态僵直，呼吸困难，病程延长则出现瘫痪、抽搐等其他神经症状。妊娠母猪流产。病死率可达100%。病程5.2.3亚急性：临床症状与急性相同，但病情较轻，病死率较低。体温波动无规律，一般高于40.5℃。仔猪病死率较高。病程5d~30d。5.2.4慢性：波状热，呼吸困难，湿咳。消瘦或发育迟缓，体弱，毛色暗淡。关节肿胀，皮肤溃疡，跛足。死亡率低。病程2个月到15个月。5.3病理变化典型的病理变化包括浆膜表面充血、出血，肾脏、肺脏表面有出血点，心内膜和心外膜有大量出血点，胃、肠道黏膜弥漫性出血；胆囊、膀胱出血；肺脏肿大，切面流出泡沫性液体，气管内有血性泡沫样黏液；脾脏肿大，易碎，呈暗红色至黑色，表面有出血点，边缘钝圆，有时出现边缘梗死；颌下淋巴结、腹腔淋巴结肿大，严重出血。最急性型的个体可能不出现明显的病理变化。5.4临床诊断结果判定易感动物出现上述临床症状和病理变化，可初步判定为疑似ASF病例。6实验室诊断样品采集及处理配制方法见附录A的配制方法见甘油保存液配制方法见青霉素浓度为链霉素浓度为6.2.2容器：真空采血管（含EDTA抗凝剂）、离心管(2mL、10mL)、样品保存管等。6.2.4采样记录用品：采样单、记号笔、防水标签等。6.3样品采集采集病死猪或发病猪、同群猪的口鼻拭子样品。用医用棉签在口腔或鼻腔转动至少3圈，采集口腔、鼻腔的分泌物；蘸取分泌物后，立即将拭子浸入1mL50%甘油-PBS保存液中，剪去露出部分，盖紧3离心管盖，密封后冷藏或冷冻保存。6.3.2全血样品采集在发病猪群中，使用真空采血管（含EDTA抗凝剂）采集一定数量发病猪、同群猪全血各5mL,密封后冷藏或冷冻保存。6.3.3血清样品采集在每一发病猪群中，采集发病猪、同群猪全血各5mL,室温放置12h~24h,分离血清，装入离心管中，密封后冷藏或冷冻保存。采集病死猪或扑杀发病猪的组织样品。首选脾脏，其次为扁桃体、淋巴结、肾脏、骨髓等。脾脏、肾脏采集约3cm×3cm大小，扁桃体整体采集，淋巴结选取出血严重的整体采集，骨髓采集长度约3cm。将所采集样品放入50%甘油-PBS保存液中。6.4样品处理口、鼻拭子标记样品编号，立即进行ASF病原检测或冷冻储存备用。6.4.2全血样品处理全血标记样品编号，立即进行ASF病原检测或冷冻储存备用。6.4.3血清样品处理血清标记样品编号，立即进行ASFV抗体检测或冷冻储存备用。取适量采集的组织样品置于组织匀浆器中充分研磨，加入终浓度为1000IU/mL的青霉素、的链霉素灭菌的制备组织匀浆液。离心处理10min。取上清液，标记编号，立即进行ASF病原检测或冷冻储存备用。方法7.1.1DNA提取试剂盒。预混液的7.1.4TAE缓冲液，配制方法见B.2和B.3。7.1.52%的琼脂糖凝胶，配制方法见B.4。7.1.66×上样缓冲液。47.2.2PCR扩增仪。7.2.3台式低温高速离心机（最大离心力12000g以上）。7.2.4稳压稳流电泳仪和水平电泳槽。7.2.7无核酸酶离心管与吸头。7.2.8PCR扩增管。引物针对上游引物下游引物扩增产物大小为7.4试验程序采用DNA提取试剂盒提取各类样本中的病毒核酸，或用自动化核酸提取仪提取各类样本中的病毒核酸。如在2h内检测可将提取的核酸置于冰上保存，否则应置于-20℃冰箱保存。每次抽提核酸，应至少包括一个阳性对照和一个阴性对照。阳性对照样品应为ASFV核酸阳性样本（血清、全血、10%组织匀浆或细胞培养上清液阴性对照样品应为无核酸酶水或者ASFV核酸阴性样本（血清、全血、10%组织匀浆或细胞培养上清液）。每个样品配制22μLPCR反应混合液，组成如下：无核酸酶水7.5μL预混液(将22μLPCR反应混合液加入每个0.2mLPCR扩增管；将3μLDNA模板加入PCR扩增管中。每次进行普通PCR扩增时均应设立阳性、阴性及空白对照。阳性对照应用阳性对照样品所提取核酸作为模板，阴性对照应用阴性对照样品所提取核酸作为模板，空白对照应用无核酸酶水作为模板。加入模板后，密封反应管，瞬时离心。将所有PCR扩增管放在PCR仪中。按7.4.2.2条件运行扩增程序。预变性变性退火延伸个循环终延伸7min。7.4.2.3PCR扩增产物电泳将5μL的6×上样缓冲液加入PCR产物中，混匀后取8μL加入到使用1×TAE缓冲液配制的2%琼脂糖凝胶中，电泳30min~40min。电泳结束后，将琼脂糖凝胶置于凝胶成像仪中观察结果。7.5试验成立条件阳性对照应有大小为257bp的特异性扩增条带，且阴性对照和空白对照应无任何扩增条带。57.6普通PCR结果判定符合7.5的条件，被检样品有大小为257bp的特异性扩增条带，且与阳性对照条带分子量大小相符，则该样品判为ASFV核酸阳性；被检样品无特异性的扩增条带，则判为ASFV核酸阴性。8荧光PCR方法8.1.1DNA提取试剂盒。荧光预混液(8.2.1荧光PCR扩增仪。8.2.2台式低温高速离心机（最大离心力12000g以上）。8.2.4无核酸酶离心管与吸头。8.2.5PCR扩增管。8.3引物和探针引物和探针针对基因的保守序列设计。上游引物下游引物′;探针每个样品配制18μL荧光PCR反应混合液，组成如下：无核酸酶水5.9μL荧光预混液(将18μL荧光PCR反应混合液加入PCR扩增管；将2μLDNA模板加入每个PCR扩增管中。每次进行荧光PCR扩增时均应设阳性、阴性及空白对照。阳性对照应用阳性对照样品所提取核酸作为模板，阴性对照应用阴性对照样品所提取核酸作为模板，空白对照应用无核酸酶水作为模板。加入模板后，密封PCR扩增管，瞬时离心。将所有PCR扩增管放入荧光PCR仪中。按8.4.2.2运行扩增程序。6孵育预变性变性退火延伸个循环在每一循环的58℃时收集FAM荧光信号。8.5试验成立条件阳性对照的Ct值<30且出现特异性扩增曲线，阴性对照无Ct值或阴性对照Ct值≥40且无特异性扩增曲线，试验结果有效；否则应重新进行试验。8.6荧光PCR结果判定符合8.5的条件，被检样品Ct值≤38且出现特异性扩增曲线，则判为ASFV核酸阳性；当无Ct值或Ct值≥40,则判为ASFV核酸阴性；当38<Ct值<40且出现特异性扩增曲线，则判为疑似。对疑似样品，模板量加倍(4μLDNA模板）进行1次复检，做3个重复；有2个重复Ct值<40且出现特异性扩增曲线即判为ASFV核酸阳性，否则判为ASFV核酸阴性。9荧光RAA方法9.1.1DNA提取试剂盒。9.1.3RAA反应预混液。9.1.4RAA荧光基础反应单元：包含重组酶，单链结合蛋白，DNA聚合酶的冻干粉。乙酸镁。9.2.1恒温荧光基因检测仪。9.2.2台式低温高速离心机（最大离心力12000g以上）。9.2.4无核酸酶离心管与吸头。引物和探针针对基因的保守序列设计。上游引物探针(THF)(BHQ1-dT)CCCGTGGCTTCAAAG。9.4试验程序7每个样品配制42.5μL荧光RAA反应混合液，组成如下：预混液将42.5μL荧光RAA反应混合液加入RAA荧光基础反应单元中；将5μLDNA模板加入每个反应管中，将2.5μL乙酸镁加在反应单元管盖上。每次进行荧光RAA扩增时均应设立阳性、阴性及空白对照。阳性对照应用阳性对照样品所提取核酸作为模板，阴性对照应用阴性对照样品所提取核酸作为模板，空白对照应用无核酸酶水作为模板。加入模板后，密封反应管，放入恒温振荡混匀仪。完成混匀收集后，将所有反应管放入荧光恒温检测仪中。按9.4.2.2运行扩增程序。扩增温度39℃,扩增时间15min,每隔20s收集荧光信号。9.5试验成立条件阳性对照起峰时间≤1.67min且出现特异性起峰曲线，阴性对照无起峰时间或阴性对照起峰时间＞10min且无特异性起峰曲线，试验结果有效；否则应重新进行试验。9.6荧光RAA结果判定符合9.5的条件，被检样品起峰时间≤10min且出现特异性起峰曲线，则判为ASFV核酸阳性；被检样品无起峰时间或被检样品起峰时间＞10min且无特异性起峰曲线，则判定为ASFV核酸阴性。10高敏荧光免疫分析法配制方法见10.1.3ASFV抗原高敏荧光检测试剂卡（检测卡）。等不同规格10.2.4台式低温高速离心机（最大离心力12000g以上）。8全血需经过抗凝处理，血清、血浆无需处理。取猪组织（优先采集脾或淋巴结组织）4g加入匀浆机，加入1mL0.1mol/LPBS(pH7.4)缓冲液，打碎搅拌成匀浆、离心，取上清液待检。待检样本和检测卡从2℃~8℃取出，平衡到室温(25℃左右高敏荧光分析仪开机。用微量可调移液器吸取样本40μL加入检测卡，然后加入50μL稀释液，从加样开始静置免疫反应15min后读值。用微量可调移液器吸取样本50μL加入检测卡，5min后加入50μL稀释液，接着再加入50μL稀释液冲洗。从加样开始静置免疫反应15min后读值。用微量可调移液器吸取样本40μL加入检测卡，然后加入50μL稀释液，从加样开始静置免疫反应15min后读值。避光层析15min后，将检测卡放入高敏荧光分析仪，点击“诊断”读值。10.4高敏荧光免疫分析结果判定读值与ASFV抗原含量成正比。被检样品读值<12,则判定为ASFV抗原阴性；被检样品读值≥16,则判定为ASFV抗原阳性；12＜被检样品读值<16,则判定为可疑。10.4.2可疑样品复测判定可疑样品读值<12,则判定为ASFV抗原阴性；可疑样品读值≥12,则判定为ASFV抗原阳性。911夹心ELISA抗原检测方法11.1.2酶标抗体：辣根过氧化物酶标记的P30蛋白单抗（针对P30蛋白的不同表位）。11.1.3对照：ASFV阳性对照（纯化的杆状病毒表达P30蛋白）、ASFV阴性对照(SPF猪血清）。微量可调移液器(2P30蛋白单克隆抗体用包被缓冲液1:200倍稀释后，每孔100μL包被96孔酶标板，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次后拍干，300μL/孔加入封闭缓冲液，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次后拍干。11.3.2夹心ELISA抗原检测操作步骤在所有孔中加入稀释液，25μL/孔。酶标板上对照和待检样品的分布图，见图1。在A1、B1孔中加入阳性对照，25μL/孔；在C1、弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗4次，洗涤缓冲液300μL/孔。孔孵育弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗4次，洗涤缓冲液300μL/孔。每孔加入底物溶液，50μL/孔，室温避光作用10min。每孔中加入50μL终止液，终止反应。11.3.2.8用酶标仪在450nm123456789APBPCNDNEFGH说明：P—阳性对照孔；N—阴性对照孔；—待检样品孔，其余类推。图1样品加样记录表（推荐模式）11.5夹心ELISA抗原检测结果判定则判定该待检样品为ASFV抗原阴性。12间接ELISA抗体检测方法12.1.1包被抗原：杆状病毒表达的ASFVP30重组蛋白。12.1.2酶标抗体：辣根过氧化物酶标记的羊抗猪二抗。12.1.3对照：ASFV阳性对照血清、ASFV阴性对照血清。12.1.8TMD底物溶液，配制方法见C.5。用包被缓冲液将ASFVP30重组蛋白稀释至终浓度0.3μg/mL,每孔100μL包被96孔酶标板奇数条作为检测孔，使用抗原稀释液包被96孔酶标板偶数条作为对照孔，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次后拍干，300μL/孔加入封闭缓冲液，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次后拍干。12.3.2间接ELISA抗体检测操作步骤12.3.2.1待检血清与阴性、阳性对照血清使用样品稀释液做40倍稀释。酶标板上对照和待检样品的分布图，见图2。50μL/孔，在A1、A2和B1、B2孔中加的阳性对照血清，在C1、C2和D1、D2孔中加入稀释后的阴性对照血清，在E1、E2等其余孔加入稀释后弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗4次，洗涤缓冲液300μL/孔。孔孵育弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗4次，洗涤缓冲液300μL/孔。每孔加入底物溶液，50μL/孔，室温避光作用10min。每孔中加入50μL终止液，终止反应。……(1)式中：123456789APPBPPCNNDNNEFGH说明：P—阳性血清对照孔；N—阴性血清对照孔；—待检血清孔，其余类推。图2样品加样记录表（推荐模式）12.4试验成立条件12.5间接ELISA抗体检测结果判定在试验成立的前提下，待检样品OD450差＞0.2,则判定该待检样品为ASFV抗体阳性；待检样品OD450差≤0.2,则判定该待检样品为ASFV抗体阴性。13阻断ELISA抗体检测方法13.1.1包被抗原：杆状病毒表达的ASFVP30重组蛋白。13.1.2酶标抗体：辣根过氧化物酶标记的抗ASFVP30蛋白单抗。13.1.3对照：ASFV阳性对照血清、ASFV阴性对照血清。13.1.8TMD底物溶液，配制方法见C.5。用包被缓冲液将ASFVP30重组蛋白稀释成终浓度为0.3μg/mL,每孔100μL包被96孔酶标板，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次，300μL/孔加入封闭缓冲液，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次后拍干。13.3.2阻断ELISA抗体检测操作步骤酶标板上对照和样品的分布图，见图3。每孔加入50μL的稀释液，在A1、B1孔加入50μL阳性对照血清，在C1、D1孔加入50μL阴性对照血清，在E1、F1孔加入50μL稀释液，其余每的血清样品孵育弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗5次，洗涤缓冲液300μL/孔。用稀释缓冲液将酶标孔孵育弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗5次，洗涤缓冲液300μL/孔。每孔加入底物溶液孔室温避光作用每孔中加入100μL终止液，终止反应。13.3.2.7用酶标仪在450nm的波长下测定各孔OD值，计算阻断率。123456789APBPCNDNECmFCmGH说明：P—阳性血清对照孔；N—阴性血清对照孔；—待检血清孔，其余类推。图3样品加样记录表（推荐模式）13.4阻断率计算方法阻断率按式(2)~式(4)计算： 式中：BRS—待检血清样品阻断率；—阴性对照血清阻断率；BRPC—阳性对照血清阻断率；13.5试验成立条件阳性对照阻断率＞70,且阴性对照阻断率<30,试验结果有效；否则，应重新进行试验。抗体检测结果判定在试验成立的前提下，待检样品阻断率＞50,则判定为ASFV抗体阳性；待检样品阻断率≤50,则判定为ASFV抗体阴性。抗体检测方法14.1.2酶标抗原：辣根过氧化物酶标记的重组P54蛋白。14.1.3对照：ASFV阳性对照血清、ASFV阴性对照血清。14.1.8TMD底物溶液，配制方法见C.5。ASFV重组P54蛋白用包被缓冲液稀释至终浓度为0.1μg/mL,按每孔100μL的量包被96孔酶标板，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次后拍干，300μL/孔加入封闭缓冲液，37℃饱和湿度下吸附2h,用洗涤缓冲液洗板4次后拍干。14.3.2ELISA操作步骤酶标板上对照和样品的分布图，见图4。在A1和B1孔加入ASFV阳性对照血清各50μL,在C1和D1孔加入ASFV阴性对照血清各50μL;剩余孔中加入待检样品血清50μL。轻轻振匀孔中样品勿溢出孵育甩干ASFV抗原包被板孔中的液体，每孔加入300μL洗涤缓冲液，洗涤5次，在洗涤和加入下一个试剂前，避免孔壁变干。每孔加入的酶标抗原(孵育甩干ASFV抗原包被板孔中的液体，每孔加入300μL洗涤缓冲液，洗涤5次，在洗涤和加入下一个试剂前，避免孔壁变干。每孔加入避光孵育每孔加入50μL终止液终止显色反应；使用酶标仪测定450nm波长处的OD值。123456789APBPCNDNEFGH说明：P—阳性血清对照孔；N—阴性血清对照孔；—待检血清孔，其余类推。图4样品加样记录表（推荐模式）14.4试验成立条件14.5夹心ELISA抗体检测结果判定CutOff值按式(5)计算：式中：值则判为抗体阴性值则判为抗体阳性。15间接免疫荧光方法15.1.1制备抗原板：感染ASFV的细胞或者感染重组病毒（表达ASFV蛋白）的细胞固定于固相载体。15.1.2对照血清：ASFV阳性对照血清、ASFV阴性对照血清。荧光二抗羊抗猪微量可调移液器(215.2.6与移液器匹配的吸头。选择合适细胞铺制24孔细胞培养板，待细胞生长至80%时，进行细胞计数。按合适的病毒量接种ASFV种毒或表达ASFV蛋白的重组病毒，37℃维持培养约48h。每孔加入200μL预冷细胞固定液将细胞固定10min,弃去固定液，将细胞培养板晾干。晾干后储存于-20℃冰箱备用。15.3.2间接免疫荧光检测操作步骤将固定的抗原板从-20℃冰箱中取出，每孔用洗涤缓冲液清洗3次，洗涤缓冲液1000μL/孔。抗原板上对照和样品的分布图，见图5。弃去反应孔中的液体，在A1孔加入200μL阳性对照血清，在B1孔加入200μL阴性对照血清，其余每孔加入200μL的待检血清样品，37℃孵育60min。123456APBNCD说明：P—阳性血清对照孔；N—阴性血清对照孔；—待检血清孔，其余类推。图5样品加样记录表（推荐模式）弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗3次，洗涤缓冲液1000μL/孔。用稀释缓冲液将荧光二抗稀释至工作浓度，200μL/孔，37℃孵育50min。弃去反应孔中的液体，每孔用洗涤缓冲液清洗3次，洗涤缓冲液1000μL/孔。15.3.2.6荧光显微镜观察结果。15.4试验成立条件阳性对照出现特异性绿色荧光，且阴性对照无特异性绿色荧光，试验结果有效；否则，应重新进行试验。15.5间接免疫荧光结果判定在试验成立的前提下，待检样品出现特异性绿色荧光，则判定待检样品为ASFV抗体阳性。待检样品无特异性绿色荧光，则判定待检样品为ASFV抗体阴性。待检样品出现非特异性绿色荧光或荧光信号较弱，则判定待检样品为ASFV抗体可疑，建议重新检测血清样品或用不同的方法重新检测。16综合判定RAA方法（见第9章）任一项检测出ASFV核酸阳性的，或经高敏荧光免疫分析法（见第10章）、夹心ELISA抗原检测方法（见第11章）任一项检测出ASFV抗原阳性的，可诊断为ASF病例。如经普通PCR方法（见第7章）检测出ASFV核酸阴性的，或经高敏荧光免疫分析法（见第10章）、夹心ELISA抗原检测方法（见第11章）检测出ASFV抗原阴性的，仍需经荧光PCR方法（见第8章）、荧光RAA方法（见第9章）进行再检，任一项检出ASFV核酸阳性的，可诊断为ASF病例。16.2无明显临床症状的易感动物，经普通PCR方法（见第7章）、荧光PCR方法（见第8章）、荧光RAA方法（见第9章）任一项检测出ASFV核酸阳性的，或经高敏荧光免疫分析法（见第10章）、夹心ELISA抗原检测方法（见第11章）任一项检测出ASFV抗原阳性的，可诊断为ASFV感染；如经普通PCR方法（见第7章）检测出ASFV核酸阴性的，或经高敏荧光免疫分析法（见第10章）、夹心ELISA抗原检