【《不同改良材料对土壤微生物多样性以及群落结构的影响实践探究报告》8900字】

不同改良材料对土壤微生物多样性以及群落结构的影响实践探究报告1.1不同改良材料对真菌ITS和细菌16SrRNA测序的Alpha多样性的影响八一农场试验地四个处理中细菌和真菌丰富度和多样性的比较结果如表5-1所示。细菌结果显示，表征群落丰富度的ACE指数与chao指数显示个处理与对照相比并没有显著差异。代表群落多样性的shannon指数显示，与土壤调理剂+腐植酸钾处理细菌群落多样性显著高于土壤调理剂处理（p<0.05)。而关于simpson指数，土壤调理剂处理显著低于其他各处理和对照(p<0.05)，腐植酸钾处理、土壤调理剂+腐植酸钾处理和对照组间任无显著差异。真菌结果显示，表征群落丰富度的ACE指数显示，腐殖酸钾处理显著高于对照组，腐植酸钾的加入能显著提高土壤真菌的丰富度。而表征群落多样性的shannon和simpson指数在处理间均没有显著差异。表5-1八一农场土壤微生物丰富度和群落多样性Table5-1SoilmicrobialrichnessandcommunitydiversityinBayifarm处理群落丰富度Communityrichiness群落多样性CommunitydiversityChao1ACEshannonsimpson细菌SC1698.15±19.12a1674.19±53.55a8.25±0.35b0.98±0.005bHAK1758.64±14.50a1777.85±10.33a8.96±0.12ab0.99±0.007aSC+HAK1961.09±162.19a1830.05±65.78a9.09±0.23a0.99±0.002aCK1790.79±106.08a1627.63±113.94a8.81±0.12ab0.99±0.001a真菌SC973.21±59.94a1622.87±99.22ab7.35±0.47a0.97±0.014aHAK1006.54±60.78a1696.04±25.77a7.46±0.38a0.98±0.013aSC+HAK897.46±125.15a1329.52±110.7ab7.34±0.40a0.97±0.013aCK795.1±143.68a1127.04±255.17b7.29±0.44a0.97±0.14a红光农场试验地各处理中细菌和真菌丰富度和多样性的比较结果如表5-1所示，细菌结果显示，表征群落丰富度的chao指数和ACE指数显示的结果一致表明，与对照相比，土壤调理剂处理、土壤调理剂+腐殖酸钾处理和有机肥处理均显著高于对照组，表明这几种处理均能显著提高土壤细菌群落的丰富度。而表征群落多样性的shannon指数和simpson指数在各处理上则没有显著差异。真菌结果表明，从chao指数来看，腐植酸钾处理与对照相比有显著差异，说明施用腐殖酸钾能够提高真菌的群落丰富度，ACE指数同样表明，土壤调理剂处理、腐植酸钾处理和土壤调理剂配施腐植酸钾处理均能显著提高真菌的丰富度。shannon指数表明，有机肥处理能显著真菌降低的群落多样性，但simpson指数却表明有机肥处理下细菌的群落多样性显著高于对照组。表5-2红光农场土壤微生物丰富度和群落多样性Table5-2SoilmicrobialrichnessandcommunitydiversityinBayifarm处理群落丰富度Communityrichiness群落多样性CommunitydiversityChao1ACEshannonsimpson细菌SC1972.25±171.15a2011.9±209.46a8.97±0.14a0.99±0.001aHAK1723.42±49.85ab1696.12±36.05ab8.89±0.09a0.99±0.002aSC+HAK1933.94±105.24a1880.91±83.78a8.94±0.05a0.99±0.000aOF1961.71±94.23a1945.38±108.26a8.61±0.13a0.99±0.002aCK1409.58±132.8b1377.29±132.79b8.68±0.14a0.99±0.003a真菌SC802.22±107.44ab1333.17±122.62a7.26±0.43a0.97±0.14aHAK978.08±8.07a1625.07±198.86a7.67±0.37a0.98±0.08aSC+HAK960.90±103.58ab1255.34±212.68a7.76±0.11a0.98±0.03aOF795.79±7.74ab798.99±37.58b5.27±0.86b0.85±0.06bCK694.52±116.34b757.47±169.84b7.22±0.35a0.97±0.14a1.2不同改良材料对土壤真菌和细菌群落组成的影响如图5-3所示，将处理样品按细菌和真菌门水平聚类，所有样品中相对丰度大于1%的细菌门按照其相对丰度的由高到低依次为变形菌门（proteobacteria)、酸杆菌门(Acidobacteria)、放线菌门(Actinobacteria)、厚壁菌门(Firmicutes)、绿弯菌门(Chloroflexi)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、芽单胞菌门(Gemmatimonadetes)、疣微菌门(Verrucomicrobia)。真菌门水平上，相对丰度从高到低依次为子囊菌门(Ascomycota)、被孢霉菌门(Mortierellomycota)、担子菌门（Basidomycota)、壶菌门（Chytridiomycota)、罗兹菌门（Rozellomycota)、球囊菌门（Glomeromycota)、油壶菌门（Olpidomycota)、毛霉菌门（Mucoromycota)、球囊菌门（Kickxellomycota)、毛微菌门（Calcarisporiellomycota)。图5-3不同处理中微生物门水平群落结构Fig.5-3Compositionofbacteriacommunityatphylalevelindifferenttreatments从八一农场样地各个处理来看，细菌门水平上，与当地农场常规处理相比土壤调理剂处理增加了变形菌门（proteobacteria)、厚壁菌门(Firmicutes)的相对丰度。在腐植酸钾处理中酸杆菌门(Acidobacteria)和芽单孢菌门(Gemmatimonadetes)的相对丰度会增加。当土壤调理剂与腐植酸钾配施作用下时，会增加变形菌门（proteobacteria)、放线菌门(Actinobacteria)、绿弯菌门(Chloroflexi)、芽单孢菌门(Gemmatimonadetes)的相对丰度。真菌门水平上，与常规处理相比，腐殖酸钾处理会增加油壶菌门（Olpidomycota)的相对丰度。从红光农场样地的具体各个处理来看，在细菌门水平上，与红光农场常规处理相比，在单独施用土壤调理剂的处理中，变形菌门（proteobacteria)、厚壁菌门(Firmicutes)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、疣微菌门(Verrucomicrobia)、的相对丰度均会增加。单独施用腐植酸钾的处理中，只有拟杆菌门(Bacteroidetes)的相对丰度有所增加，在土壤调理剂配施腐殖酸钾处理中，也会出现变形菌门（proteobacteria)、厚壁菌门(Firmicutes)、拟杆菌门(Bacteroidetes)丰度增加的现象，而与其他各处理相比，厚壁菌门(Firmicutes)的相对丰度最高。在有机肥处理中，酸杆菌门(Acidobacteria)、拟杆菌门(Bacteroidetes)的丰度均增高，而与其他各处理相比酸杆菌门的相对丰度最高。在真菌门水平上，腐植酸钾处理和石灰配施腐殖酸钾处理均会使子囊菌门(Ascomycota)的相对丰度呈现增加的趋势，土壤调理剂配施腐植酸钾的处理条件下，子囊菌门(Ascomycota)的相对丰度增加的最多。而在有机肥处理与其他各处理相比，被孢霉菌门（Mortierellomycota）的相对丰度最低，而其它未被分类的真菌门类的相对丰度最高。1.3不同土壤调节措施对土壤细菌和真菌高丰度OTU的影响在OTU水平上将各处理中属上有着明确分类的丰度最高的前20个细菌OTU筛选出来，如图5-4所示，丰度较高的几个OTU分别是鞘脂单胞菌属（Sphigomoas）、膨胀芽孢杆菌属（Tumebacillus）、魏斯氏菌属（Weissella）、芽孢杆菌属（Bacillus）。在八一农场样地，与对照组相比，单独施用的土壤调理剂处理显著提高了魏斯氏菌属（Weissella）、肠杆菌属（Enterebacter）、乳酸杆菌属（Phaseolus）的丰度。在红光农场样地，与对照相比，施用有机肥的处理显著增加了Dongia、硝化螺菌属（nitrospira）的丰度，显著降低了鞘脂单胞菌属（Sphigomoas）的丰度。单独施用土壤调理剂增加了（Rhodanobacter）的丰度，在土壤调理剂与腐植酸钾配施条件下，膨胀芽孢杆菌属（Tumebacillus）和芽孢杆菌属（Bacillus）的丰度有显著提高。图5-4不同处理中20个相对丰度最高的细菌OTU分析Fig.5-4Therelativeabundanceofthe20bacteriageneraintreatments在OTU水平上将各处理中属上有着明确分类的丰度最高的前10个真菌OTU筛选出来，如图所示，丰度较高的几个OTU分别是被孢霉属（Mortierella）、枝孢属（Cladosporium）、海洋嗜杀酵母属（Wickerhamomyces）、曲霉属（Aspergillus）、嗜热真菌属（Thermomyces）、锯齿藓属（Saitozyma）。在八一农场样地，土壤调理剂处理、腐植酸钾处理、土壤调理剂+腐植酸钾处理均会使枝孢属（Cladosporium）的丰度显著降低。在红光农场样地，与对照相比，有机肥处理和土壤调理剂+腐植酸钾处理均出现使被孢霉属（Mortierella）丰度显著降低。图5-5不同处理中10个相对丰度最高的真菌OTU分析Fig.5-5Therelativeabundanceofthe20bacteriageneraintreatments1.4酸化土壤关键细菌和真菌与环境因子的相关性分析利用冗余分析（RDA）描述环境因子与门水平主要细菌和真菌（如图5-6），分别为细菌群落和真菌群落前10位的优势种。RDA图中的红色箭头代表环境因子，蓝色箭头代表物种，箭头的长短代表其影响程度，箭头间的夹角代表两者之间的相关程度，夹角为锐角表示正相关，反之则为负相关，不同颜色代表不同处理。在八一农场中，关键细菌与土壤化学性质的RDA分析结果显示，前两轴的特征值共解释了细菌优势种群变异的78.6%，其中第一轴为62%，第二轴为26.6%。MonteCarlo置换检验显示土壤全钾值（TK）是影响细菌群落组成的最重要因素（p<0.05），其次是土壤全氮含量（TN）和有机质含量（SOM）。Person相关性分析结果同样显示，土壤全钾（TK）与酸杆菌门（Acidobacteria）、放线菌（Actinobacteria）、疣微菌门（Verrucomicrobia）呈显著的正相关关系。土壤中绿弯菌门（Chloroflexi）与土壤速效钾（AK）与呈正相关关系，与土壤电导率（EC）呈极显著正相关。另外，除对照组外，各处理沿两坐标轴分布显著分离，表明其各自的细菌群落结构差异较大，对照组与土壤调理剂处理和土壤调理剂+腐殖酸钾处理间的较大距离反映了土壤调理剂、土壤调理剂+腐殖酸钾的施入均能驱动环境因子的改变，来影响土壤细菌组成。而八一农场关键真菌与环境因子的RDA分析结果表明，前两轴的特征值共解释了真菌优势种群变异的82.7%，其中第一轴为82%，第二轴为0.7%。MonteCarlo置换检验显示土壤全氮含量（TN）是影响真菌群落组成的最关键因素，其次是全磷含量（TP）和全钾值（TK）。运用Person相关性分析的结果同样显示，土壤全氮含量（TN）与球囊菌门（Glomeromycota）呈现显著正相关关系，与子囊菌门（Ascomycota）呈负相关关系。罗兹菌门（Rozellomycota）与土壤全磷含量（TP）呈极显著负相关关系。土壤全钾含量（TK）与子囊菌门（Ascomycota）呈显著正相关关系，而与壶菌门（Chytridiomycota）、被孢霉菌门（Mortierellomycota）呈显著负相关关系。图5-6八一农场关键细菌与土壤因子的RDA分析表5-3八一农场土壤因子与门水平主要细菌和真菌的person相关性分析Table5-3PersoncorrelationanalysisbetweensoilfactorsandmainbacteriaandfungiatphylumlevelinBayifarmpH总氮总磷总钾速效磷速效钾含水率电导率有机质Protebacteria0.0460.4950.158-0.4790.0190.255-0.3570.328-0.468Acidobacteria0.037-0.435-0.0650.650*-0.016-0.0370.0790.1550.438Firmicutes0.0420.4510.136-0.5530.001-0.104-0.099-0.244-0.536Actinobacteria0.293-0.669-0.4150.605*-0.189-0.357-0.255-0.2750.536Chloroflexi-0.0870.074-0.012-0.109-0.0250.608*-0.0940.746**0.076Gemmatimonadetes0.23-0.408-0.1210.352-0.2430.1040.250.2530.231Verrucomicrobia-0.202-0.43-0.2540.679*-0.159-0.0780.3610.1580.116Ascomycota0.171-0.618*-0.1730.639*-0.148-0.4010.352-0.3360.414Basidiomycota0.093-0.448-0.020.572-0.061-0.4130.418-0.4080.281Mortierellomycota-0.110.5530.136-0.610*0.1380.432-0.3850.39-0.334Chytridiomycota-0.3860.5720.132-0.594*0.3460.532-0.3990.327-0.09Rozellomycota-0.406-0.295-0.722**-0.138-0.5190.26-0.1480.49-0.012Glomeromycota-0.0640.620*0.352-0.5550.3830.413-0.3250.177-0.185Mucoromycota0.408-0.2890.0370.237-0.1310.1470.2170.250.203Olpidiomycota0.609*-0.275-0.0750.117-0.201-0.058-0.0810.0060.103注：*和**分别表示在p＜0.05和p＜0.01水平上相关性显著。红光农场关键细菌与土壤理化因子的RDA分析结果显示，前两轴的特征值共解释了细菌优势种群变异的61.9%，其中第一轴为43.3%，第二轴为18.6%。MonteCarlo置换检验显示影响细菌群落变化的最关键化学因子是土壤有机质含量（SOM），其次是速效磷含量（AP）和全氮含量（TN）。Person相关性分析的结果同样显示，土壤有机质（SOM）的含量与拟杆菌门（Bacteroidetes）与呈极显著正相关关系，与变形菌门（Protebacteria）呈正相关关系，与绿弯菌门（Chloroflexi）呈极显著负相关关系。土壤速效磷含量（AP）与厚壁菌门（Firmicutes）呈显著负相关。土壤全氮含量（TN）与变形菌门（Protebacteria）呈显著正相关关系。如图5-6所示，除对照外，土壤调理剂处理、腐植酸钾处理、土壤调理剂+腐殖酸钾和有机肥处理均沿两个坐标轴分布显著分离，表明其各自的细菌群落结构差异较大，说明施入土壤调理剂、腐植酸钾、土壤调理剂+腐植酸钾、有机肥均能不同程度的显著影响土壤细菌组成。在土壤理化因子与关键真菌的RDA分析中，前两轴的特征值共解释了真菌优势种群变异的86.7%，其中第一轴为66.4%，第二轴为20.3%。MonteCarlo置换检验显示土壤全氮含量（TN）是影响其群落变化的最关键因素，其次是土壤有机质（SOM）和土壤含水率（SWC）。土壤因子与真菌群落之间未有显著的相关性。图5-7红光农场关键细菌与土壤因子的RDA分析表5-4红光农场土壤因子与门水平主要细菌和真菌的pearson相关性分析Table5-4PersoncorrelationanalysisbetweensoilfactorsandmainbacteriaandfungiatphylumlevelinHongguangfarmpH总氮总磷总钾速效磷速效钾含水率电导率有机质Protebacteria0.270.534*0.2650.070.2050.0360.28-0.3960.563*Acidobacteria-0.2790.0910.1070.1520.396-0.089-0.2050.024-0.313Firmicutes0.2-0.412-0.254-0.211-0.530*0.018-0.1320.381-0.005Actinobacteria-0.0790.1520.1290.1880.2710.185-0.061-0.229-0.185Chloroflexi-0.462-0.294-0.0930.0570.214-0.188-0.299-0.049-0.674**Bacteroidetes0.1290.28-0.148-0.061-0.414-0.0690.3190.1850.668**Gemmatimonadetes0.435-0.3450.023-0.218-0.0530.1240.193-0.449-0.116Verrucomicrobia0.449-0.1160.212-0.1280.0250.0810.486-0.330.206Ascomycota0.0720.4450.1120.1740.071-0.002-0.2680.2240.299Mortierellomycota-0.012-0.2350.069-0.1360.190.0720.459-0.276-0.131Basidiomycota-0.168-0.473-0.337-0.094-0.419-0.211-0.4110.315-0.415Chytridiomycota0.221-0.1780.105-0.1560.0860.0720.415-0.470.022Rozellomycota0.263-0.474-0.011-0.373-0.0890.1610.06-0.1090.014Glomeromycota0.006-0.403-0.129-0.224-0.116-0.1780.426-0.296-0.155Olpidiomycota-0.151-0.208-0.112-0.032-0.274-0.1730.040.124-0.081注：*和**分别表示在p＜0.05和p＜0.01水平上相关性显著。1.5讨论在本研究采用高通量测序法，探究两种类型的酸性土壤在不同的土壤调节措施下，土壤因子的变化对微生物群落结构和多样性的响应机理。由于微生物对于外界环境的变化比较敏感特点，在自然界中很容易随土壤因子变动而受到影响。通常认为，土壤pH条件对于土壤微生物有着至关重要的影响，当超出微生物的适宜土壤pH范围时，微生物的活性和增殖会被抑制或完全停止。此外，土壤中各种养分中是微生物生命活动的关键，其含量的高低与微生物的活跃度直接相关（Smith2002)。以往对于微生物的分类中，把对于碳源和氮源需求较高的微生物称为富营养型微生物，其他则称为寡营养型微生物。富营养型微生物典型的代表如拟杆菌门等；在土壤养分、碳源和氮源充足的环境中，富营养型微生物占优势。寡营养型微生物典型的代表如酸杆菌门等，对环境胁迫的耐受性比较好，在恶劣环境中的生存能力更强。从研究的结果来看，不同处理土壤中前10种门种类相似，相关研究也有此发现（王蓓蓓2015），不同处理间的优势种丰度存在差异（图5-5）。对于两块样地的细菌来说，变形菌门（Proteobacteria)和酸杆菌门(Acidobacteria)是主要的门类,分别占35%~40%和9%~22%。变形菌门的细菌能广泛参与土壤微生态的循环，同时还具有很高的代谢多样性。土壤调理剂、土壤调理剂+腐植酸钾均能提高变形菌门的丰度。因此可以推测，土壤调理剂的施入引起土壤有机碳、氮、磷、钾等养分的提高，间接驱动土壤中变形菌门含量增加。酸杆菌门的是一类在土壤中非常重要的微生物，对于土壤物质循环和生态环境具有十分重要的作用。红光农场样地中，添加有机肥引起土壤酸杆菌的丰度明显提高。而在八一农场样地，施入土壤调理剂能引起厚壁菌门丰度的提高和土壤酸杆菌丰度降低。这可能是因为酸杆菌具有嗜酸、寡营养的特点，碱性环境的形成能抑制其生长。而对于厚壁菌门的微生物来说，如芽孢杆菌能形成芽孢，在恶劣的环境中的生存能力和适应性更强。从真菌来看，子囊菌门（Ascomycota）和被孢霉菌门（Mortierellomycota）是主要的门类，分别占40%~50%和20%~35%。子囊菌在土壤中的作用，在于早期的分解过程中分解秸秆残体的易降解成分。在把红光农场试验地，土壤调理剂、腐殖酸钾、土壤调理剂+腐殖酸钾的施入均会提高子囊菌门的丰度。提高丰度的效应为土壤调理剂+腐殖酸钾>腐殖酸钾>土壤调理剂。而同样的处理在被孢霉菌门则出现相反的现象，土壤调理剂+腐殖酸钾使得土壤被孢霉菌门的丰度降低的程度最大。被孢霉菌门属于菌根共生菌，可以与从枝菌根共生，通过释放多种有机酸来提高土壤磷的潜力（OsorioNW2014）。这种现象可能是环境因子的改变在一定程度上能影响子囊菌门的丰度；而在有直接的碳源供给时，与被孢霉菌门相比，子囊菌门对碳的利用效率更高。对于两块样地的细菌和真菌群落ɑ多样性指标来说，在八一农场中，各处理的细菌丰富度指数chao与对照相比，没有出现显著差异。这可能与八一农场属于安山岩褐色砖红壤，土壤质地属于砂掺黏的类型，土壤全氮基础值高，微生物的群落营养结构更占优，对于外界环境因子改变的适应性更强（焦晓光等2011）。当有外源添加剂施入土壤中时，并不容易引起土著微生物丰度和群落结构的变化。腐植酸钾的添加能显著提高土壤真菌的丰富度指数ACE，说明单独添加碳源有利于土壤中真菌的增加；在红光农场中，土壤调理剂、土壤调理剂+腐植酸钾能够显著提高土壤细菌和真菌的丰度指数ACE和chao,这都说明，酸性土壤中施用碳酸钙类的土壤改良剂对于细菌和真菌群落都有调控的作用，这与其他研究者的结果一致，（郭安宁2020）。有机肥的加入能够导致土壤真菌多样性指数simpson降低,提高土壤真菌的群落多样性。这可能与有机肥在堆肥过程中演变和定殖的微生物有关，这些添加的微生物直接增加了土壤的微生物多样性。RDA的分析结果显示，在八一农场中，土壤TK值是影响细菌群落组成的最重要因素。由于土壤全钾含量取决于土壤母质的风化作用和粘土矿物的结构性钾的释放有很强的关联。一方面来看，当土壤钾素释放过程中风化作用加剧、干湿交替等现象，说明这些物理化学过程可能在一定程度上调控着细菌群落的变化。此外，有研究表明，腐殖质能吸附在粘土矿物表面，形成土壤腐殖质-矿质复合体，通过一系列物理生物化学作用来控制土壤中矿物结构性钾的释放（魏世勇等2009）。说明在土壤中添加腐殖物质对于调节细菌群落结构发挥着重要的作用。对于八一农场来说，土壤TN含量却是影响真菌群落组成的最关键因素。土壤中氮素主要来自于本身积累和田间施肥。对于八一农场的安山岩褐色砖红壤，土壤全氮含量的基础值较高，土著真菌群落稳定性更好，通过调节土壤化学性质和碳源供给的改良措施对微生物多样性的影响较小（如图5-6）。而对于红光农场试验地，RDA的分析结果则显示，影响细菌群落变化的最关键化学因子是有机质含量（SOM），土壤SOM的含量与拟杆菌门（Bacteroidetes）与呈正相关关系。拟杆菌门是富营养菌，碳源的添加能刺激拟杆菌门的增殖。土壤因子与真菌的RDA分析显示，土壤全氮含量（TN）也是影响真菌群落结构的最关键因素，可能是由于红光农场的土壤全氮（TN）的基础值含量较低，由于土壤微生物的活性和多样性受到氮源输入的限制（Sarathchandraetal2001），而氮的来源主要通过施肥，通过调控碳源供应的方式，在一定程度上决定了土壤微生物群落更迭和演变。1.6小结（1）对于土壤酸化严重的土壤中，土壤调理剂和腐殖酸钾单独或配合施用均能改善土壤微生物的多样性，并能在门水平改变细菌和真菌群落组成。（2）在酸性砖红壤中施用有机肥能明显增加土壤中真菌的群落多样性。（3）在有机质基础值含量较高的砂质土中，真菌的微生物群落结构往往比较稳定，少量外源无机物的加入并不会引起土壤微生物群落结构的明显改变。3.4微生物群落结构及多样性与土传枯萎病的关系3.4.1不同改良材料对病原菌相对丰度的影响八一农场和红光农场两块样地不同处理中病原菌的相对丰度如图5-8所示，在八一农场样地，土壤调理剂处理、腐植酸钾处理和土壤调理剂+腐植酸钾处理、与对照组相比均没有显著差异。而在红光农场样地，土壤调理剂+腐植酸钾处理的病原菌相对丰度显著低于与对照组（p<0.05）；土壤调理剂处理和腐殖酸钾处理与对照组相比均呈极显著低于对照组(p<0.001)。图5-8不同处理的病原菌相对丰度Fig.5-8RelativeabundanceofFOCindifferenttreatments3.4.2病原菌相对丰度和高丰度门、属之间的相关性分析将土壤细菌和真菌中丰度>1%的属和门分别筛选出来，并对丰度较高的门和属在各样品中的相对丰度和其病原菌相对丰度之间作person相关性分析。如表5-5所示，在八一农场样地，病原菌的相对丰度与高丰度门、属细菌和真菌之间均没有显著的相关性。这可能与本试验重复较少，样本容量小有关。表5-3八一农场土壤中镰刀菌相对丰度和高丰度门、属之间的相关性分析Table5-3PearsoncorrelationcoefficientsbetweentheabundanceofmircrobialtaxaandrelatveabundanceofFusarium分类单元相对丰度Relativeabundance(%)病原菌taxaSCHAKSC+HAKCKFusariumSphigomoas（BacterialOTU1)6.495.418.215.920.086Enterobacter（BacterialOTU4)10.50.150.230.48-0.100Bacillus（BacterialOTU11）2.510.883.073.5-0.808Weissella（BacterialOTU6）9.140.030.050.06-0.075CandidatusUdaeobacter（BacterialOTU9）1.193.02.112.170.425Mortierella（FungiOTU1）35.231.3435.3033.6-0.333Archaeorhizomyces（FungiOTU3）3.611.652.723.08-0.678Leohumicola（FungiOTU4）1.292.351.602.72-0.339Cladosporium（FungiOTU6）1.30.760.564.49-0.922Proteobacteria（bacterialphylum）41.7236.2137.5134.60.224Acidobacteria（bacterialphylum）12.3227.5518.4122.180.268Firmicutes（bacterialphylum）19.653.169.9211.84-0.521Actinobacteria（bacterialphylum）6.969.2711.2810.26-0.048Chloroflexi（bacterialphylum）2.756.835.444.610.554Gemmatimonadetes（bacterialphylum）3.214.575.014.30.295Verrucomicrobia（bacterialphylum）1.673.653.612.980.392Bacteroidetes（bacterialphylum）2.451.333.553.77-0.735Cyanobacteria（bacterialphylum）4.740.410.961.03-0.18Nitrospirae（bacterialphylum）1.271.441.120.860.895Ascomycota（Fungiphylum）43.6143.9141.942.720.299Mortierellomycota（Fungiphylum）35.4531.6135.6134.01-0.363Basidomycota（Fungiphylum）7.218.549.539.87-0.343Chytridiomycota（Fungiphylum）1.671.971.252.4-0.564Rozellomycota（Fungiphylum）0.052.590.90.40.743如表5-6所示，红光农场样地，病原菌的相对丰度与高丰度门、属细菌和真菌之间均没有显著的相关性。这可能与本试验重复较少，样本容量小有关。表5-4红光农场土壤病原菌相对丰度和高丰度门、属之间的相关性分析Table5-4PearsoncorrelationcoefficientsbetweentheabundanceofmircrobialtaxaandrelatveabundanceofFusariumintheHongGuangfarm.分类单元相对丰度Relativeabundance(%)病原菌taxaSCHAKSC+HAKOFCKFusariumSphigomoas（BacterialOTU1)7.049.89.04.7610.03-0.17Bryobacter（BacterialOTU4)1.23.011.461.782.29-0.333Gemmatimonas（BacterialOTU5）1.991.691.490.821.83-0.465Nitrospira（BacterialOTU6）0.761.151.201.821.220.567Mortierella（FungiOTU4）33.4328.3420.2219.38.32.66-0.441Aspergillus（FungiOTU11)0.71.354.832.971.770.645Cladosporium（FungiOTU6）1.172.871.831.252.27-0.311Archaeorhizomyces（FungiOTU）2.491.071.581.782.470.337Proteobacteria（bacterialphylum）41.9736.0240.7638.6432.84-0.179Acidobacteria（bacterialphylum）7.912.1212.3023.0214.530.577Actinobacteria（bacterialphylum）9.2914.110.955.3516.0-0.149Chloroflexi（bacterialphylum）7.3510.156.687.7110.31-0.220Bacteroidetes（bacterialphylum）12.798.996.248.663.79-0.697Gemmatimonadetes（bacterialphylum）4.414.625.735.035.230.8Firmicutes（bacterialphylum）5.923.348.142.853.280.066Cyanobacteria（bacterialphylum）2.842.711.151.693.23-0.393Verrucomicrobia（bacterialphylum）3.391.342.072.192.880.21Ascomycota（Fungiphylum）39.747.6154.9639.0246.370.162Mortierellomycota（Fungiphylum）33.728.520.2719.5332.71-0.449Basidomycota（Fungiphylum）10.059.028.6210.48.65-0.139Chytridiomycota（Fungiphylum）3.21.942.162.652.36-0.025Rozellomycota（Fungiphylum）2.712.352.971.050.96-0.5123.4.3讨论由于香蕉的许多病害都具有土传的特点，如枯萎病、叶斑病等。已有许多研究表明，当土壤微生物多样性更丰富时，土传植物病害的发生率也更低。（MENGQ