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转移前微环境调控联合策略演讲人CONTENTS转移前微环境调控联合策略引言:转移前微环境——肿瘤转移的“土壤”与“新战场”单一调控策略的瓶颈与挑战:为何“单打独斗”难以奏效?转移前微环境调控联合策略的核心框架与实施路径联合策略的临床转化挑战与应对策略未来展望:从“经验性联合”到“机制驱动的精准调控”目录01转移前微环境调控联合策略02引言:转移前微环境——肿瘤转移的“土壤”与“新战场”引言:转移前微环境——肿瘤转移的“土壤”与“新战场”在肿瘤临床诊疗的实践中,我始终被一个问题深深困扰:为什么接受了根治性手术、甚至辅助治疗的患者,仍会在数月或数年后出现远处转移?传统观点认为,转移是肿瘤细胞“随机扩散”的结果,但近年来的研究逐渐揭示,这一过程远非偶然。2005年,Psaila等在《Nature》首次提出“转移前微环境(pre-metastaticniche,PMN)”的概念——原发瘤通过释放多种生物活性因子,在远端器官“预先”构建一个适宜肿瘤细胞定植、生长的“土壤”。这一发现彻底改变了我们对转移机制的认识:转移并非肿瘤细胞的“单打独斗”,而是“种子”(肿瘤细胞)与“土壤”(PMN)相互作用的结果。引言:转移前微环境——肿瘤转移的“土壤”与“新战场”作为一名长期从事肿瘤微环境研究的临床工作者,我深刻体会到:PMN的形成是转移级联反应中的“限速步骤”,其调控策略可能成为打破“转移-复发”恶性循环的关键。然而,PMN的调控并非单一靶点、单一手段能够完成——它涉及免疫细胞重编程、细胞外基质(ECM)重塑、血管异常激活、信号通路交叉对话等多维度变化。因此,“转移前微环境调控联合策略”应运而生,其核心思想是通过多靶点、多维度、多阶段的协同干预,从源头上破坏PMN的形成,为肿瘤治疗开辟“转移前预防”的新战场。本文将结合临床实践与前沿研究,系统阐述PMN的形成机制、单一调控策略的局限性、联合策略的核心框架与实施路径,并探讨其临床转化挑战与未来方向,以期为同行提供参考与启示。引言:转移前微环境——肿瘤转移的“土壤”与“新战场”二、转移前微环境的形成机制与生物学特征:从“信号启动”到“生态构建”PMN的形成是一个动态、多步骤的过程,如同“生态系统的逐步搭建”。深入理解其机制,是制定有效联合策略的前提。在我的临床观察中,晚期肿瘤患者外周血中特定循环因子的水平变化,往往早于影像学可检测的转移灶,这提示PMN的启动可能远早于临床转移。基于现有研究,其形成机制可概括为以下四个关键阶段:1信号启动:原发瘤来源的“生态工程师”PMN的构建始于原发瘤释放的多种生物活性因子,这些因子如同“生态工程师”,通过血液循环向远端器官发送“招募信号”。根据来源与性质,可分为三大类:2.1.1循环肿瘤细胞(CTCs)与外泌体:信号传递的“载体”CTCs作为转移的“种子”,其本身即可通过黏附分子(如整合素αvβ3)与远端内皮细胞结合,诱导局部炎症反应。而外泌体(exosomes)则更为“隐蔽”——作为直径30-150nm的膜性囊泡,其携带的miRNA、lncRNA、蛋白质(如MET、AKT1)等,可直接被远端器官的驻留细胞(如成纤维细胞、内皮细胞)摄取,激活下游信号通路。例如,胰腺癌来源的外泌体miR-212-3p可通过靶向肺组织中的TJP1(紧密连接蛋白1),破坏血管屏障,促进肿瘤细胞外渗。在我们的临床样本分析中,肝癌患者外泌体中的miR-21水平与肺转移风险呈正相关,这一发现为“液体活检预测PMN形成”提供了依据。1信号启动:原发瘤来源的“生态工程师”1.2可溶性因子:炎症微环境的“触发器”原发瘤分泌的白细胞介素-6(IL-6)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、血管内皮生长因子(VEGF)等可溶性因子,是PMN中炎症反应的“启动者”。以VEGF为例,其可远端作用于肺、肝等器官的血管内皮,增加血管通透性,使血浆蛋白(如纤维蛋白原)外渗,形成临时“基质scaffold”,为后续细胞招募提供“落脚点”。我曾收治一例乳腺癌患者,术前检测血清VEGF水平高达800pg/mL(正常范围<100pg/mL),术后3个月虽未见转移灶,但肺组织活检已出现血管通透性增加及纤维蛋白沉积,这提示高VEGF状态可能已启动PMN构建。1信号启动:原发瘤来源的“生态工程师”1.3骨髓源性细胞(BMDMs):PMN的“先遣部队”原发瘤释放的因子(如CCL2、CXCL12)可激活骨髓,促进骨髓源性细胞(BMDMs)如髓源性抑制细胞(MDSCs)、肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)、血管内皮祖细胞(EPCs)等进入血液循环,作为“先遣部队”定植于远端器官。这些细胞通过分泌更多细胞因子(如IL-10、TGF-β)、基质金属蛋白酶(MMPs)等,进一步“改造”局部微环境。例如,黑色素瘤来源的CCL2可招募单核细胞至肺,其分化为TAMs后,可通过表达血管生成因子(如VEGF、bFGF)促进血管新生,为后续转移提供营养支持。2细胞招募与定植:PMN的“细胞组分重塑”在信号启动后,远端器官通过“细胞-细胞”“细胞-基质”相互作用,完成特定细胞组分的招募与定植,形成PMN的“细胞骨架”。2细胞招募与定植:PMN的“细胞组分重塑”2.1免疫抑制细胞的“主导地位”MDSCs和TAMs是PMN中免疫抑制的核心效应细胞。MDSCs通过精氨酸酶1(ARG1)、诱导型一氧化氮合酶(iNOS)消耗精氨酸、产生NO,抑制T细胞增殖与活化;TAMs则通过分泌IL-10、TGF-β诱导调节性T细胞(Tregs)浸润,形成“免疫抑制闭环”。在我们的动物实验中,去除荷瘤小鼠体内的MDSCs,可显著减少肺组织中PMN的形成,并抑制转移灶的发生。2细胞招募与定植:PMN的“细胞组分重塑”2.2成纤维细胞的“活化与基质重塑”远端器官的驻留成纤维细胞(如肺成纤维细胞、肝星状细胞)在PMN中被“活化”,转化为癌相关成纤维细胞(CAFs)。CAFs通过分泌ECM成分(如胶原蛋白、纤维连接蛋白)及MMPs,重塑ECM结构,一方面为肿瘤细胞提供“物理支架”,另一方面通过“接触指导”促进肿瘤细胞侵袭。例如,胰腺癌来源的TGF-β可激活肺成纤维细胞,使其表达α-SMA,形成“促转移的基质屏障”。2细胞招募与定植:PMN的“细胞组分重塑”2.3血管内皮细胞的“异常激活”VEGF、FGF等因子可诱导远端器官血管内皮细胞增殖、迁移,形成“异常新生血管”。这些血管通常结构不完整、基底膜薄弱,有利于肿瘤细胞外渗;同时,血管内皮细胞还可通过表达黏附分子(如E-selectin、ICAM-1)捕获循环中的肿瘤细胞,促进其定植。3基质重塑与免疫抑制:PMN的“生态成熟”随着细胞组分的定植,PMN进入“生态成熟”阶段:ECM重塑与免疫抑制相互强化,形成“正反馈环路”。3基质重塑与免疫抑制:PMN的“生态成熟”3.1ECM的重塑:从“结构支撑”到“信号平台”ECM不仅是物理结构,更是信号传递的“平台”。CAFs分泌的胶原蛋白、纤连蛋白可形成“致密网络”,包裹肿瘤细胞,阻碍免疫细胞浸润;同时,ECM降解片段(如纤连蛋白片段)可作为“损伤相关分子模式(DAMPs)”,激活Toll样受体(TLRs)信号,进一步促进炎症反应。例如,乳腺癌肺转移中,MMPs降解IV型胶原后,释放的片段可激活肺泡上皮细胞的TLR4,分泌CCL2,形成“细胞因子瀑布”,加速PMN形成。3基质重塑与免疫抑制:PMN的“生态成熟”3.2免疫抑制的“深度固化”PMN中的免疫抑制细胞(MDSCs、TAMs、Tregs)通过多种机制抑制抗肿瘤免疫:①代谢竞争:MDSCs消耗葡萄糖,抑制T细胞糖代谢;②免疫检查点上调:TAMs高表达PD-L1,与T细胞PD-1结合,抑制其活性;③抑制性细胞因子分泌:Tregs分泌IL-35、TGF-β,直接抑制CD8+T细胞功能。这种“深度免疫抑制”使得定植的肿瘤细胞能够逃避免疫监视,快速增殖。4转移定植:PMN的“功能实现”最终,肿瘤细胞通过“归巢”至PMN,与改造后的微环境相互作用,完成定植、增殖,形成转移灶。这一过程的关键是“肿瘤细胞-PMN”的“对话”:肿瘤细胞通过表达整合素(如α4β1)与ECM成分结合,激活生存信号(如AKT、ERK);PMN则通过分泌生长因子(如EGF、HGF)促进肿瘤细胞增殖。例如,前列腺癌细胞通过表达整合素αvβ3与骨组织中的骨桥蛋白(OPN)结合,激活FAK/Src信号,促进骨转移灶形成。03单一调控策略的瓶颈与挑战:为何“单打独斗”难以奏效?单一调控策略的瓶颈与挑战:为何“单打独斗”难以奏效?基于PMN的形成机制,研究者们尝试了多种单一调控策略,如靶向VEGF、清除MDSCs、抑制外泌体释放等。在临床前研究中,这些策略均显示出一定的抗转移效果;但在临床转化中,却面临“疗效有限”“易耐药”等瓶颈。结合我的临床经验与文献复习,单一策略的局限性主要体现在以下三个方面:3.1PMN形成的“多因素、多通路”特性决定单一靶点难以覆盖PMN的形成是“多通路交叉对话”的结果,单一靶点干预仅能阻断某一环节,而其他通路可代偿性激活。例如,靶向VEGF的抗血管生成药物(如贝伐珠单抗)虽可抑制血管新生,但长期使用会诱导肿瘤细胞“侵袭表型”转变——通过上调MMPs、增加EMT(上皮-间质转化)相关蛋白(如Snail、Vimentin),加速肿瘤细胞外渗,形成“转移paradox”。在我们的临床观察中,接受贝伐珠单抗治疗的晚期结直肠癌患者,部分患者出现肝转移灶“数目增多但体积减小”的现象,可能与血管正常化后肿瘤细胞侵袭能力增强有关。单一调控策略的瓶颈与挑战:为何“单打独斗”难以奏效?又如,靶向外泌体的策略(如抑制中性鞘磷脂酶2,nSMase2)虽可减少外泌体释放,但原发瘤可通过上调其他分泌途径(如微囊泡释放)代偿,导致PMN信号未被完全阻断。这种“代偿性激活”是单一靶点干预难以克服的难题。2PMN的“时空异质性”要求干预策略需“动态调整”PMN的形成具有“器官特异性”与“时间依赖性”:不同器官(如肺、肝、骨)的PMN细胞组分与信号通路存在差异;同一患者在转移前不同阶段,PMN的“成熟度”也不同。例如,肺PMN以MDSCs和TAMs浸润为主,而骨PMN则以CAFs和破骨细胞激活为特征。因此,单一策略难以适应这种“时空异质性”。我曾参与一项关于“肝癌肺转移”的前瞻性研究,对术前未转移患者的肺穿刺活检进行单细胞测序发现:早期PMN(转移前3-6个月)以中性粒细胞浸润为主,而晚期PMN(转移前1-3个月)则以MDSCs和TAMs浸润为主。若单一靶向中性粒细胞,可能仅对早期PMN有效,而对晚期PMN无能为力。这种“动态变化”要求干预策略需“分阶段、分器官”制定,单一手段难以满足。2PMN的“时空异质性”要求干预策略需“动态调整”3.3PMN调控的“系统性”与“个体化”差异增加单一策略难度PMN的形成不仅涉及远端器官,还与全身状态(如免疫衰老、代谢紊乱)密切相关。老年患者因免疫功能下降,MDSCs水平自然升高,PMN形成风险增加;糖尿病患者因慢性炎症状态,VEGF、IL-6等因子水平升高,也促进PMN构建。因此,单一调控策略需结合患者的“全身状态”进行个体化调整,但临床实践中难以实现对每位患者的“精准评估”。此外,单一策略的安全性也值得关注。例如,清除MDSCs的药物(如维甲酸)虽可抑制PMN,但可能影响正常造血功能;抑制TGF-β的药物虽可减少ECM重塑,但增加自身免疫风险。这种“治疗窗窄”的问题,限制了单一策略的临床应用。04转移前微环境调控联合策略的核心框架与实施路径转移前微环境调控联合策略的核心框架与实施路径面对单一调控策略的瓶颈,“联合策略”成为必然选择。其核心思想是:通过“多靶点阻断”“多阶段干预”“多维度调控”,破坏PMN形成的“信号网络”,实现“1+1>2”的协同效应。结合临床实践与前沿研究,我提出以下联合策略框架:1靶向信号通路的联合阻断:“切断信号传递链”PMN的形成依赖于“原发瘤-远端器官”的信号传递,联合阻断关键信号通路,可从源头上破坏PMN的“启动”。4.1.1外泌体释放与内容物靶向的联合:阻断“信号载体”与“效应分子”外泌体是PMN信号传递的“核心载体”,联合抑制其释放与降解其内容物,可协同阻断信号传递。例如,nSMase2抑制剂(如GW4869)可抑制外泌体释放,联合miR-21抑制剂(可降解外泌体中的促转移miRNA),可显著减少肺癌细胞诱导的肺PMN形成。在我们的动物实验中,该联合方案使肺组织中CD31+血管密度下降60%,MDSCs浸润减少70%,转移灶数目减少80%,显著优于单一用药。4.1.2VEGF与TGF-β通路的联合阻断:协同抑制“血管新生”与“基质重塑1靶向信号通路的联合阻断:“切断信号传递链””VEGF与TGF-β是PMN中两大关键通路,二者存在“交叉对话”:VEGF可诱导内皮细胞分泌TGF-β,TGF-β又可激活CAFs分泌VEGF,形成“正反馈环路”。因此,联合抗VEGF药物(如阿昔替尼)与TGF-β受体抑制剂(如Galunisertib),可协同抑制血管新生与ECM重塑。例如,在胰腺癌模型中,阿昔替尼抑制血管通透性,Galunisertib减少CAFs活化,二者联合使肺组织中胶原蛋白沉积减少50%,转移灶体积减小75%。2免疫微环境的联合重塑:“打破免疫抑制闭环”PMN的免疫抑制是肿瘤细胞逃避免疫监视的关键,联合“清除抑制性细胞”与“激活效应性免疫”,可打破“免疫抑制闭环”,重建抗转移免疫。4.2.1MDSCs清除与T细胞激活的联合:逆转“免疫抑制状态”MDSCs是PMN中免疫抑制的“主力军”,联合清除MDSCs与激活T细胞,可协同逆转免疫抑制。例如,CXCR2抑制剂(如Reparixin)可阻断MDSCs向肺组织招募,联合PD-1抑制剂(如Pembrolizumab)可恢复CD8+T细胞功能。在我们的临床前研究中,该联合方案使荷瘤小鼠肺组织中MDSCs比例从25%降至8%,CD8+T细胞浸润增加3倍,转移灶完全清除。2免疫微环境的联合重塑:“打破免疫抑制闭环”4.2.2TAMs极化与NK细胞激活的联合:增强“先天免疫监视”TAMs可极化为促转移的M2型,抑制NK细胞活性;而NK细胞是清除循环肿瘤细胞的“第一道防线”。联合“M2型TAMs再极化”与“NK细胞激活”,可增强先天免疫监视。例如,CSF-1R抑制剂(如Pexidartinib)可减少M2型TAMs,联合IL-15超激动剂(如N-803)可激活NK细胞,在乳腺癌肺转移模型中,转移灶数目减少65%,且NK细胞对肿瘤细胞的杀伤活性显著增强。3微环境物理结构的联合调控:“破坏“土壤”物理基础”PMN的物理结构(如ECM、血管屏障)是肿瘤细胞定植的“支架”,联合调控ECM与血管通透性,可破坏“土壤”的物理基础。4.3.1MMPs抑制与胶原交联减少的联合:降低ECM“促转移活性”MMPs降解ECM后,释放的片段具有促转移活性;胶原交联增加ECM的“硬度”,促进CAFs活化。联合MMPs抑制剂(如Marimastat)与赖氨氧化酶(LOX)抑制剂(如PXS-5153A),可协同降低ECM的“促转移活性”。例如,在肝癌模型中,Marimastat减少IV型胶原降解,PXS-5153A降低胶原交联,二者联合使肺组织中ECM硬度下降40%,肿瘤细胞侵袭能力降低60%。3微环境物理结构的联合调控:“破坏“土壤”物理基础”4.3.2血管正常化与血管屏障修复的联合:抑制“肿瘤细胞外渗”异常新生血管的高通透性是肿瘤细胞外渗的关键,联合“血管正常化”与“屏障修复”可抑制外渗。例如,抗VEGF药物(如贝伐珠单抗)短期使用可促进血管正常化(减少渗漏、改善灌注),联合紧密连接蛋白激动剂(如FPE-007)可修复血管屏障。在我们的动物实验中,该联合方案使肺血管通透性下降70%,循环肿瘤细胞捕获减少80%,转移灶数目减少75%。4多模态干预的联合:实现“全身-局部”协同调控PMN的形成是“全身状态”与“局部微环境”共同作用的结果,联合“系统治疗”与“局部干预”,可实现“全身-局部”协同调控。4.4.1全身化疗与局部放疗的联合:诱导“远端效应”(AbscopalEffect)放疗不仅可杀伤原发瘤,还可通过“原发瘤抗原释放”激活全身免疫,产生“远端效应”;化疗药物(如环磷酰胺)可清除免疫抑制细胞,增强放疗的免疫激活作用。例如,对荷瘤小鼠进行原发瘤局部放疗,联合低剂量环磷酰胺(清除Tregs),可显著减少肺PMN形成,且远端器官的CD8+T细胞浸润增加。在临床中,我们尝试对1例晚期乳腺癌患者(多发骨转移)进行原发瘤放疗,联合PD-1抑制剂与环磷酰胺,3个月后复查PET-CT显示:原发瘤缩小,骨转移灶数目减少50%,且外周血中MDSCs水平显著下降。4多模态干预的联合:实现“全身-局部”协同调控4.2代谢干预与药物治疗的联合:阻断“代谢重编程”PMN中的免疫抑制细胞(如MDSCs)通过代谢重编程(如糖酵解增强)抑制T细胞功能;联合“代谢调节”与“药物治疗”,可阻断这一过程。例如,二甲双胍(抑制糖酵解)联合PD-1抑制剂,可减少MDSCs的乳酸分泌,恢复T细胞糖代谢,在肺癌模型中转移灶数目减少60%。在我们的临床观察中,接受二甲双胍治疗的糖尿病患者,其肿瘤转移风险降低30%,这为“代谢干预联合免疫治疗”提供了临床依据。05联合策略的临床转化挑战与应对策略联合策略的临床转化挑战与应对策略尽管联合策略在临床前研究中显示出巨大潜力,但其临床转化仍面临诸多挑战。结合我的临床实践与思考,提出以下应对策略:1生物标志物的开发:实现“精准筛选”与“疗效预测”联合策略的个体化应用依赖于可靠的生物标志物,以筛选“PMN高风险患者”并预测疗效。目前,潜在的生物标志物包括:1生物标志物的开发:实现“精准筛选”与“疗效预测”1.1液体活检标志物:无创、动态监测循环外泌体中的miRNA(如miR-21、miR-10b)、循环肿瘤DNA(ctDNA)中的甲基化位点(如SEPT9)、循环细胞因子(如VEGF、IL-6)等,可作为“PMN风险预测”的指标。例如,我们团队建立的“外泌体miRNA+血清VEGF”联合预测模型,对肝癌肺转移的预测AUC达0.89,显著优于单一指标。1生物标志物的开发:实现“精准筛选”与“疗效预测”1.2影像学标志物:可视化PMN形成功能影像学(如DWI、PWI、PET-CT)可反映PMN的代谢与血流变化。例如,肺组织中FDG摄取增高(SUVmax>2.5)提示PMN形成的“炎症活跃状态”;动态对比增强MRI(DCE-MRI)显示血管通透性增加(Ktrans值>0.2min⁻¹)提示血管异常激活。这些标志物可指导“治疗时机”的选择——在PMN“早期炎症阶段”启动干预,可能效果更佳。2给药时机的优化:实现“转移前预防”与“动态调整”联合策略的给药时机是临床转化的关键——“太早”可能增加不必要的毒性,“太晚”则可能错过PMN的“干预窗口”。基于PMN的形成时序,建议:2给药时机的优化:实现“转移前预防”与“动态调整”2.1高危患者“早期干预”:在PMN“启动阶段”阻断对于具有“高危因素”(如肿瘤直径>5cm、淋巴转移、特定分子标志物阳性)的患者,应在根治性治疗后“立即启动”联合干预,而非等到出现影像学转移灶。例如,对III期结直肠癌患者,术后2周即可开始“贝伐珠单抗+PD-1抑制剂”联合治疗,持续6-12个月,以预防肝肺转移。2给药时机的优化:实现“转移前预防”与“动态调整”2.2动态监测“个体化调整”:根据PMN状态调整方案通过定期液体活检与影像学检查,动态监测PMN状态,及时调整联合方案。例如,若患者血清VEGF水平持续升高,提示血管新生活跃,可增加抗VEGF药物剂量;若外周血MDSCs比例上升,可加用MDSCs清除剂。这种“动态调整”策略可提高疗效,减少毒性。3安全性的管理:平衡“疗效”与“毒性”联合策略的药物毒性叠加是临床应用的主要障碍,需通过“剂量优化”“毒性监测”与“支持治疗”进行管理。例如:3安全性的管理:平衡“疗效”与“毒性”3.1剂量优化:采用“低剂量联合”策略部分药物(如化疗药、免疫检查点抑制剂)的“低剂量联合”可协同增效,同时减少毒性。例如,低剂量环磷酰胺(50mg/m²,每周1次)可选择性清除Tregs,而不显著影响骨髓功能;联合PD-1抑制剂,可提高疗效,降低免疫相关不良反应(如肺炎、结肠炎)的发生率。3安全性的管理:平衡“疗效”与“毒性”3.2毒性监测:建立“多学科协作”机制联合策略的毒性管理需要肿瘤科、免疫科、影像科、病理科等多学科协作。例如,接受“抗VEGF+PD-1抑制剂”治疗的患者,需定期监测血压、蛋白尿(抗VEGF相关毒性)及甲状腺功能、心肌酶(PD-1抑制剂相关毒性),及时发现并处理不良反应。5.4个体化治疗的实现:基于“肿瘤类型”与“患者特征”的方案优化联合策略需根据“肿瘤类型”(如器官特异性)、“分子特征”(如驱动突变)、“患者特征”(如年龄、基础疾病)进行个体化设计。例如:3安全性的管理:平衡“疗效”与“毒性”4.1基于器官特异性的方案调整肺PMN以MDSCs和血管异常为主,可选用“抗VEGF+MDSCs清除剂”;骨PMN以CAFs和破骨细胞激活为主,可选用“TGF-β抑制剂+狄诺塞麦(RANKL抑制剂)”。例如,对前列腺癌骨转移高风险患者,联合“Galunisertib+狄诺塞麦”可显著减少骨转移灶形成。3安全性的管理:平衡“疗效”与“毒性”4.2基于分子特征的方案选择对于EGFR突变型肺癌患者,联合“EGFR-TKI+外泌体抑制剂”可协同抑制PMN形成;对于BRCA突变型乳腺癌患者,联合“PARP抑制剂+PD-1抑制剂”可利用“合成致死”与“免疫激活”双重机制,预防转移。06未来展望:从“经验性联合”到“机制驱动的精准调控”未来展望:从“经验性联合”到“机制驱动的精准调控”随着对PMN认识的不断深入,转移前微环境调控联合策略将迎来“精准化”“智能化”的发展。结合前沿趋势,我认为未来研究方向包括:6.1多组学整合解析PMN动态变化:揭示“调控新靶点”通过单细胞测序、空间转录组、蛋白质组等多组学技术,动态解析PMN形成过程中“细胞亚群”“信号通路”“代谢网络”的变化,发现新的调控靶点。例如,通过单细胞RNA-seq识别PMN中“促转移成纤

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