太平洋细须螨的检验及鉴定方法

T/GDP

广东省农药协会团体标准

T/GDPXXXXX—2020

太平洋细须螨的检验及鉴定方法

DetectionandIdentificationofTenuipalpuspacificusBaker

（征求意见稿）

2019-12

XXXX-XX-XX发布XXXX-XX-XX实施

广东省农药协会发布

T/GDPXXXXX—2020

太平洋细须螨的检验及鉴定方法

1范围

本标准明确了太平洋细须螨的检测、标本保存和室内鉴定等方法。

本标准适用于兰科植物种植过程中的太平洋细须螨的检验和鉴定。

2术语

下列术语和定义适用于本标准：

2.1

颚体gnathosoma

足I基节前的体段称为颚体。颚体由颚基gnathobase、1对螯肢chelicera和1对须肢palpus组成。

2.2

足leg

足一般分为7节：基节coxa、转节trochanter、股节femur、膝节genu、胫节tibia、跗节tarsus和前跗

节pretarsus。

前跗节结构复杂，其末端的爪claw、爪间突empodium和爪垫pulvillus构成步行器ambulacralorgan，

具有步行功能，步行器基部与前跗节骨片和肌腱相连。细须螨科Tenuipalpidae的爪间突垫状，着生有梳

状黏毛。

2.3

躯体idiosoma

位于颚体的后方，成螨着生4对足，着生足的部分为足体podosoma。前足体、后足体和末体合称

为躯体。

2.4

前足体propodosoma

足I、II着生体段称为前足体。

2.5

后足体metapodosoma

足Ⅲ、Ⅳ着生体段称为后足体。

2.6

末体opisthosoma

2

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足Ⅳ以后的体段称为末体。

2.7

前半体proterosoma

颚体和前足体合称为前半体。

2.8

后半体hysterosoma

后足体和末体合称为后半体。

2.9

感毛chemosensoryseta

指能感受化学物质的毛。例如感棒、荆毛和芥毛等。细须螨科足I和足II跗节上各有1根~2根感棒。

感棒solenidion是不含光毛质的化感毛，着生于附肢上，光滑，一般呈棍棒状，端部钝圆，内壁有

轮状细纹。

2.10

喙板rostralshield

细须螨科有些种类的前足体左右对称，突起向前方突出，覆盖颚体基部，此种前足体的突起称为喙

板。

2.11

拇爪复合体thumbclawcomplex

有些螨类的须肢胫节末端具有大的爪状毛，而跗节离开原位，移至胫节腹侧，即须肢的跗节与胫节

的爪形成拇指（跗节）和食指（胫节爪）相对之势，这种须肢的构造成为拇爪复合体，拇爪复合体有把

握事物的作用。叶满科、长须螨科和肉食螨科等螨类具有拇爪复合体，而细须螨的螨类则无此复合体。

3有害生物信息

3.1分类地位

学名TenuipalpuspacificusBaker

英文名phalaenopsismite

隶属蛛形纲Arachinida蜱螨亚纲Acari细须螨科Tenuipalpidae。

3.2传播

各螨态可随被害叶片作远距离传播；细须螨本身可作小范围移动，极易附在昆虫或人身上作近距离

的扩散传播。太平洋细须螨的生物学特性和繁殖特性参见附录A。

4仪器、用具和试剂

4.1仪器和用具

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放大镜、解剖针、镊子、挑针、环形针、指形管、小培养皿、描笔、载玻片、盖玻片、体视显微镜、

生物显微镜（具油镜）、电热板、干燥箱、贝氏漏斗（Berlesefunnel）、标签。

4.2试剂

奥氏液（Oudemans’fluid）配方：70%酒精87ml、冰醋酸8ml、甘油5ml；

内氏液（Nesbitt’sfluid）配方：水合氯醛40g、浓盐酸2.5ml、蒸馏水25ml；

霍氏液（Hoyer’smedium）配方：水合氯醛100g、阿拉伯胶15g、甘油10ml、蒸馏水25ml；

乳酸、中性树胶。

5实验室检验

5.1检验方法

5.1.1直接采集

在放大镜或体视显微镜下重点检查严重失绿变黄，呈现灰色密集小斑点的叶片，检查叶片背面、托

叶鞘和花梗，肉质假鳞茎的种类重点检查茎干和花梗，借助挑针仔细检查，若有橘黄色或橘红色囊状物

活动，需要调整显微镜放大倍数检查，确认是螨类后，用挑针或描笔挑入盛有奥氏液的指形管中，同时

放入采集标签。采集标本时，作好记录，内容包括采集时间、地点、寄主植物、被害症状、为害程度、

体色、斑点形状、数目以及在植物上的栖息部位等。

采集和挑取标本时要注意雌雄标本兼顾。

5.1.2分离采集

取待检植物活体、脱落的黄叶等放置于贝氏漏斗网上，漏斗下放置承接器皿，器皿内放少量清水，

以防螨逃逸或干死。用40W灯泡为热源，烘烤干燥24h，然后将承接器皿放在体视显微镜下检查，发现

螨类后，挑入盛有奥氏液的指形管，并做好标签和记录。

5.2标本制作

5.2.1清洗

在体视显微镜下，用环形针将螨移入盛有内氏液的小培养皿中，浸泡24h。

5.2.2临时性玻片标本制作

使用乳酸作浮载剂制作临时玻片，加微温使螨体透明。根据鉴定需要，轻微推动盖片，使螨体标本

滚动至合适部位，便于在镜下观察。

5.2.3永久性玻片标本制作

在载玻片上滴1至2滴的霍氏液。从内氏液中挑出根螨，触碰滤纸去除多余液体，然后放入霍氏液，

整姿后，盖上盖玻片，放在60W白炽灯或500W电热板上加热至气泡排出，用油性笔在载玻片下方标出

螨体位置，并贴上采集标签。在低倍显微镜下检查、调整螨体位置，用40x以下物镜进行初步鉴定。

将玻片标本放在50℃左右干燥箱中干燥，1周后即可用于油镜（100x）观察。

5.2.4标签

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载玻片右侧贴采集标签，注明寄主植物、采集地点、采集时间和采集人。左侧贴定名标签，注明该

种学名、中名、鉴定人和鉴定日期。

中名：寄主：

学名：采集地点：

鉴定人：采集时间：

鉴定日期：采集人：

玻片标本标签标注方法图示

5.3样品保存

5.3.1浸泡标本

为害状样品以及根螨应妥善保存。放入盛有奥氏液或70%~75%酒精的指形管中制成浸渍标本，并

插入标签；再将指形管放入盛有70%~75%酒精的广口瓶中，密封保存。

5.3.2玻片标本

干燥约3个月后，在盖玻片周围封中性树胶，继续干燥1日~2日即可在常温下保存，也可置于

干燥器中长期保存。

6鉴定特征

6.1细须螨科Tenuipalpidae的主要鉴定特征

成螨体长200um~400um，一般扁平，多为红色。须肢由1节~5节构成，同一属中不同种类的节

数亦不同，无爪，无拇爪复合体。有些种类的前足体左右对称，突起向前方突出，覆盖颚体基部。躯体

背面有龟甲状或网状花纹，体壁表面的形状因种类而不同。躯体背毛及腹毛的排列也为分类上的主要特

征。足粗短，多有横皱。I、II跗节近末端有短棒状或纺锤状的感器1个~2个。足上的爪和爪间突多有

黏毛。

6.2太平洋细须螨TenuipalpuspacificusBaker的主要鉴定特征

6.2.1卵

橘红色，椭圆形。孵化时幼螨前半体先破壳而出，之后幼螨的第Ⅰ足和第Ⅱ足用力将躯体从卵壳中

脱出。卵壳为白色。

6.2.2幼螨

橘红色，身体柔软，三对足，末体中央有一脊状突起，不活泼。在脱皮进入第一若螨期之前有一静

息期，静息期间不动不吃，三对足伸直，躯体圆润。

6.2.3第一若螨

橘红色，四对足，前足体两侧，后足体和末体中央开始出现黑斑，斑块色淡，体型较幼螨大。在脱

皮进入第二若螨期之前有一静息期。

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6.2.4第二若螨

似第一若螨，体型稍大，斑块颜色深一些。在进入成螨期之前有一静息期。

6.2.5雌成螨

——雌螨刚蜕皮时似第二若螨，之后躯体颜色变深，硬化，整个躯体中间有一脊状突起，末体钝圆。

——体长312um~354um，宽约190um；

——背面有不规则纵条纹；背毛13对，前半体背毛3对，第3对背毛是第1对背毛长度的3倍；

——后半体背板具不规则的横纹，背侧毛5对，第5对背侧毛细长，鞭毛状，长度稍短于末体长；

——末体两侧有小孔1对；

——足转节I有2根刚毛，转节II有3根刚毛，转节Ⅲ和转节Ⅳ具1根刚毛，膝节Ⅰ和膝节Ⅱ具

2根刚毛，膝节Ⅲ具1根刚毛，膝节Ⅳ刚毛缺如。

——雌成螨特征参见附录B。

6.2.6雄成螨

体较雌成螨小，体橘红色，较柔软，躯体较扁平，末体近方形，两侧几近平行，末体几乎无黑斑。

体长269um~283um，宽约152um，末体收窄，其余特征与雌成虫相似。雄成螨特征参见附录B。

7结果判定

以成螨的形态特征为依据。符合6.2.5和6.2.6上述形态的可鉴定为太平洋细须螨。卵、幼螨和若螨的

形态特征可作为参考。

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附录A

（资料性附录）

太平洋细须螨TenuipalpuspacificusBaker其他信息

A.1地理分布

泰国、菲律宾、印度尼西亚、英国、荷兰、德国、美国、巴拿马、南非、澳大利亚、波兰。

A.2寄主植物

兰科Orchidaceae：指甲兰属Aerides，卡特兰属Cattleya，杓兰属Cypripedium，石斛兰属Dendrobium，

斑被兰属Grammatophyllum，金蝶兰属Oncidium，蝴蝶兰属Phalaenopsis和襄唇兰属Saccolabium。

水龙骨科Polypodiaceae：兔脚蕨Davalliafejeensis和鹿角蕨属Platyceriumsp.。

A.3生物学特性

细须螨科的螨类种类很多，分布亦广，以植物的叶片、叶柄、嫩枝和花柄等为食，也有形成螨瘿的

种类。危害各种果树和经济作物。

太平洋细须螨T.pacificusBaker个体微小，繁殖能力较强，但自身扩散能力较弱，可随农事活动和

寄主植物的调运而远距离扩散。

太平洋细须螨最初为害蝴蝶兰叶片背面，大量发生时也为害叶片正面，肉眼观察可见橘黄色或橘红

色的螨体，受害部位失绿变黄，被害叶片呈现灰色密集小斑点。斑点可布满整株叶片，包括花梗，而后

叶片渐变成暗褐色斑块，最后枯黄脱落。由于该螨的蜕皮留在叶片上，肉眼可看到受害叶片表面布满白

色斑块。该螨不吐丝。在蝴蝶兰温室大棚内，由于温度一般保持在28℃左右，适宜该螨生存，一旦发

生，螨口数量可在短时间内大量增加，造成严重为害，危害症状参见附录C。

A.4交配繁殖

雄螨通常比雌螨提前羽化，守在处于静息期的第二若螨旁边，待其一羽化即与其交配，交配时间可

长达30min。交配时雄螨钻到雌螨体下，用足I紧抱雌螨末体，并将其末体向上抬起，与雌螨进行交配。

产卵前期2d~3d，卵单产，雌成螨一生可产卵30粒左右。太平洋细须螨主要营两性生殖，在雄螨很少

时也可孤雌生殖。

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A

附录B

（资料性附录）

太平洋细须螨TenuipalpuspacificusBaker重要形态特征

图B.1雄成螨特征图图B.2雌成螨特征图

图B.3雄成螨后半体特征图图B.4雌成螨后半体特征图

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附录C

（资料性附录）

太平洋细须螨TenuipalpuspacificusBaker危害特征图

C.1叶片背面受害状及螨体

C.2体视镜下的雌成螨、卵和幼螨C.3体视镜下的雄成螨

_________________________________

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前  言

本标准按照GB/T1.1-2009《标准化工作导则第1部分：标准的结构和编写》给出的规则起草。

本标准由广东省农药协会提出。

本标准起草单位：广州海关技术中心、仲恺农业工程学院、广州禾立田生物科技有限公司、广州白

云机场海关、惠州海关技术中心、韶关禾立田农场有限公司

本标准主要起草人：林莉、韩群鑫、邵振芳、王泽清、章柱、于飞、颜素娟、梁远成、陈伟

本标准为首次发布。

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太平洋细须螨的检验及鉴定方法

1范围

本标准明确了太平洋细须螨的检测、标本保存和室内鉴定等方法。

本标准适用于兰科植物种植过程中的太平洋细须螨的检验和鉴定。

2术语

下列术语和定义适用于本标准：

2.1

颚体gnathosoma

足I基节前的体段称为颚体。颚体由颚基gnathobase、1对螯肢chelicera和1对须肢palpus组成。

2.2

足leg

足一般分为7节：基节coxa、转节trochanter、股节femur、膝节genu、胫节tibia、跗节tarsus和前跗

节pretarsus。

前跗节结构复杂，其末端的爪claw、爪间突empodium和爪垫pulvillus构成步行器ambulacralorgan，

具有步行功能，步行器基部与前跗节骨片和肌腱相连。细须螨科Tenuipalpidae的爪间突垫状，着生有梳

状黏毛。

2.3

躯体idiosoma

位于颚体的后方，成螨着生4对足，着生足的部分为足体podosoma。前足体、后足体和末体合称

为躯体。

2.4

前足体propodosoma

足I、II着生体段称为前足体。

2.5

后足体metapodosoma

足Ⅲ、Ⅳ着生体段称为后足体。

2.6

末体opisthosoma