呼吸运动实验

1、实 验 七 家兔呼吸运动调节与实验性急性呼吸衰竭,【实验目的】 1、学习气管插管方法； 2、学习记录呼吸运动曲线的实验方法； 3、观察神经因素、体液因素等对呼吸运动的影响； 4、学习复制急性肺水肿呼吸衰竭动物模型； 5、观察家兔急性呼吸衰竭时的呼吸运动变化并分析其病理 生理学机制。,一、呼吸生理 1、呼吸运动及其形成机制 2、呼吸运动的反射性调节 二、呼吸衰竭：定义及其发病原因 1、肺通气功能障： （1）限制性通气不足、 （2）阻塞性通气不足 2、弥散障碍； （1）肺泡膜的面积减少 （2）肺膜的厚度增加 （3） 通气/血流比值,【实验原理】,呼吸实验有关的背景知识,呼吸是指机体与外界环境之间的

2、气体交换过程。,呼吸肌的收缩、舒张所造成的胸廓的扩大与缩小，即呼吸运动。,呼吸衰竭（respiratory failure）是指外呼吸功能严重障碍，导致po2降低或伴有pco2增高的病理过程。呼吸衰竭时的主要血气标准是pco2低于8.0kpa2（60mmhg），伴有或不伴有pco2高于6.7kpa（50mmhg）。,呼吸运动是一种节律性运动，呼吸的频率和深度能随内、外环境条件的改变而改变，这都依靠神经系统的反射性调节来实现。,6,延髓 基本呼吸中枢 吸气神经元 吸气切断神经元,脑桥 呼吸调整中枢,脊髓 呼吸肌运动神经元,吸气肌,呼气肌,+,+,+,+,+,+,-,-,迷走神经,呼吸节律的形成及

3、反射性调节,7,中枢化学感受器,外周化学感受器,延髓呼吸中枢,窦神经、迷走神经,+,+,+,+,co2,co2,o2,+,+,呼吸加快、加强,h+,h+,呼吸肌本体感受器,脊髓运动神经元,+,气道加长,肺牵张感受器,迷走神经,呼吸肌本体感受性反射,肺牵张反射,【实验对象】 家兔：尊重和善待生命；像对待患者一样的态度对实验动物,进行细致的观察与关怀。 【 实验器材和药品】 器材： 生物信号采集系统、计算机、张力换能器、哺乳动物手术器械1套、兔台、气管插管、动脉夹、注射器、50cm长橡胶管、听诊器、钠石灰瓶、碳酸钙瓶 药品： 25%乌拉坦、肾上腺素、乳酸、尼可刹米、生理盐水、 盐酸,【实验步骤】,

4、一、动物准备： 1、抓取（正确抓取方法） 2、称重 3、麻醉（25% 乌拉坦 4ml/kg） 4、固定 5、备皮：颈部、剑突下 6、气管插管 7、分离颈外浅静脉（呼吸衰竭插管用） 8、剑突下呼吸明显处丝线固定、连接张力换能器,称重、麻 醉,称重后麻醉 25%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）4ml/kg 耳缘静脉注射。,家兔固定和剪毛,颈部手术,颈部正中切口分离软组织暴露气管 钝性分离气管，底下穿棉线备用 气管倒t形切口，插入y形气管插管，棉线固定,气管插管,环状软骨下1cm ,做倒t型切口,图 气管插管术示意图,图 气管插管术示意图-示气管切口,图 气管插管术示意图-示固定插管,二、连接装置： 1、张力

5、换能器挂到剑突下的腹部皮肤上-选择“输入信号”1通道“张力”呼吸运动 2、进入生物信号采集系统-实验项目-呼吸运动的调节 3、记录并保存实验曲线； 4、调节实验参数、并固定； 5、实验过程做好标记； 6、实验前要有正常呼吸曲线做对比。,三、观察项目 （一）家兔呼吸运动的调节 1、正常呼吸曲线（呼吸频率和幅度）； 2、co2对呼吸运动的影响； 3、缺氧对呼吸运动的影响； 4、增大无效腔对呼吸运动的影响； 5、气管狭窄对呼吸运动的影响（橡皮管夹闭2/3- 3/4 ）； 6、窒息对呼吸运动的影响； 7、乳酸对呼吸运动的影响：耳缘静脉注射2ml乳酸 8、尼可刹米对呼吸运动的影响：耳缘静脉注射1ml尼可

6、刹米。,急性实验性肺水肿,实验目的 通过复制家兔实验性肺水肿，观察肺水 肿的临床表现，并分析肺水肿的发病机制。,实验原理 水肿是指组织间隙内的体液增多。肺间质有过 量液体积聚和/或溢入肺泡腔内，称为肺水肿。引起 肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。水肿液积聚 于肺泡腔内，使肺肿胀有弹性，质变实，重量比正 常增加23倍。 本实验主要是通过静脉大量滴注生理盐水并 注射肾上腺素导致急性肺水肿。,（二）、急性实验性肺水肿模型的复制(p97) 分组：实验组，对照组 实验组： 颈外浅静脉插管，连接静脉输液管， 生理盐水量（100ml/kg）， 速度: 以180-200滴/min 在即将输完时向输液管内加入0

7、. l肾上腺素（1ml/kg）输入静脉 。 继续输液生理盐水，10-15滴/分钟输入。以便必要时重复给药。 对照组:不给肾上腺素,其他同上.,密切观察： 是否出现呼吸困难、急促，呼吸曲线有否变化。 气管内是否有粉红色泡沫样液体溢出。 肺部是否出现湿性罗音（听诊器）。 如果，肺水肿表现不明显时，可重复使用肾上腺素，方法同上，直至出现肺水肿表现。,-当动物出现明显的呼吸急促、气管内有泡沫样液体溢出、两肺出现湿性罗音等肺水肿体症时， -处死动物-取肺-称重、求肺系数 对照组也处死-取肺-称重、求肺系数.,开胸取肺,动物打开胸腔; 用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出; 在结扎处以上切断气管; 小心

8、将心脏及其血管分离（勿伤及肺），把肺取出， 用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算系数 肺系数计算：肺系数=肺重量（g）/体重（kg）正常肺系数为45。,实验预期结果,1. 呼吸：正常时无异常，当大量快速输液时变为浅快呼吸。注射肾上腺素后呼吸暂停。 2. 血压：正常时无异常，当大量快速输液时，血压升高。注射肾上腺素后，血压急剧升高。 3. 粉红色溢出液：当大量快速输液、注射肾上腺素后出现粉红色溢出液。 4. 取出肺观察：肺比正常的肺大，肺内水肿液形成明显。 5. 可见兔子从口鼻或气管插管的通气孔中流出粉红色泡沫样液体,思考,大剂量快速输注生理盐水与肾上腺素 引起急性肺水肿的机制,呼吸曲线描记,图1

9、家兔呼吸运动的实验曲线,实验结果标记、打印、讨论分析，书写实验报告,【实验结果及结果分析】,【 注意事项】 1、麻醉要适量，注意观察动物呼吸 2、气管插管前注意把气管内清理干净后再插管。 3、作完每一项目后，必须等待动物呼吸完全恢复正常 及平稳后再进行下一项实验。有正常呼吸曲线对照 4、静脉注射乳酸时，要严格掌握剂量，并避免乳酸溢 出血管刺激皮肤引起动物的挣扎。,【 注意事项】,5. 注入尼可刹米速度要慢,如果注入过快,会造成家兔过度兴奋以至发生惊厥。 6、在取肺前先用粗棉线在气管插管下方结扎气管，以防止洗肺液流出。 7、术中注意及时止血，若出现渗血，可用湿温生理盐水纱布压迫止血。少量出血时，

10、可用止血钳夹闭出血点。大血管出血时，应立即结扎出血管。 8、实验过程中保持装置及参数不变,在实验中请各组同学做好分工； 请保持实验室安静、有秩序！ 祝同学们实验成功！,总结讨论,增加无效腔对呼吸运动的影响 1.由于无效腔的存在，每次吸入的新鲜空气不能都到达肺泡进入气体交换。 2.增大无效腔，减少了肺泡通气量，降低了气体更新率，导致血中二氧化碳增加、氧分压下降。 3.气道加长，使呼吸气道阻力增大，从而使呼吸加深加快。,为何吸入气中二氧化碳浓度增加会使吸呼运动加强？,静脉注射乳酸后对呼吸运动的影响,尼可刹米,（1）直接兴奋呼吸中枢呼吸频率、幅度均 （2）提高呼吸中枢对co2的敏感性呼吸频率、幅度均

11、 （3）刺激颈a体、主a体外周化学感受器呼吸频率、幅度均,窒息,不完全窒息：当夹闭侧管口径的1/2时,由于气道阻力与1/r 4成正比,可引起气道阻力增加，通气功能障碍，体内co2排出减少，o2摄入减少，使pao2、paco2，刺激外周以及中枢化学感受器呼吸中枢（）呼吸频率、幅度均 完全窒息：完全夹闭侧管口径，气道完全阻塞，通气障碍，吸气、呼气均困难，急剧产生大量的co2，使paco2，pao2呼吸中枢抑制呼吸频率、幅度均死亡,缺氧,缺氧pao2颈a体、主a体外周化学 感受器受刺激，经窦n、迷走n传入延髓 呼吸中枢呼吸中枢（）反射性呼吸 加深加快呼吸频率、幅度均。,肾上腺素引起急性肺水肿机制,肾上腺素对和受体都有激动作用，可使心肌收缩力加强 ，心率加快，心肌耗氧量增加，使皮肤、粘膜及内脏小血 管收缩。沿家兔耳缘静脉注入肾上腺素后，导致体循环血 管和肺血管剧烈收缩使心脏前后负荷明显增加。