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重症急性胰腺炎大鼠HMGB1表达与肠黏膜屏障损害的关系 作者:栾正刚张成葛春林马晓春郭仁宣【摘要】 目的:观察大鼠重症急性胰腺炎(severe acute pancreatitis, SAP)时肠组织中高迁移率族蛋白B1(high mobility group box-1 protein , HMGB1)表达的变化及其与肠黏膜屏障损害的关系。方法:48只Wistar大鼠随机分为正常对照组(n=8)和SAP组(n=40)。正常对照组麻醉后取材,SAP组分别于建模后3、6、12、24和48 h取材。测定血浆D-乳酸、肠组织髓过氧化物酶(myeloperoxidase,MPO)水平,应用RT-PCR方法检测SAP大鼠肠组织中高迁移率族蛋白B1 mRNA表达的变化,应用western blot法检测SAP大鼠肠组织中HMGB1水平的变化。结果:随着SAP病情进展,血浆D-乳酸与肠组织MPO水平在24 h达最高值,分别为 (16.414.65) g/mL和(26.763.63) U/g(P <0.01)。SAP 6 h时大鼠肠组织HMGB1 mRNA及HMGB1表达水平显著高于对照组,并于24 h达峰值且持续至48 h(P <0.01)。结论:SAP大鼠肠组织中HMGB1表达延迟且持续增高。HMGB1作为晚期炎症介质参与了SAP大鼠肠黏膜屏障损伤的病理生理过程。 【关键词】 重症急性胰腺炎肠屏障高迁移率族蛋白B1 Relationship between high mobility group box-1 protein expression and gut mucosal barrier dysfunction during severe acute pancreatitis 【ABSTRACT】 Objective: To investigate the relationship between high mobility group box-1 protein (HMGB1) expression and gut mucosal barrier dysfunction during murine severe acute pancreatitis (SAP). Methods: Forty-eight male health adult Wistar rats were divided randomly into Control group and SAP groups. The concentration of plasma D-lactate and the activity of myeloperoxidase (MPO) in the intestinal tissue were determined. The expression of HMGB1 mRNA in intestinal mucosa was detected by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and the activity of HMGB1 was determined by Western blot. Results: Plasma D-lactate and MPO reached a peak level at 24h (16.414.65)g/mL for Plasma D-lactate and(26.763.63)U/g for MPO respectively, (P<0.01). Elevation of HMGB1 and HMGB1 mRNA expression in intestinal mucosa was found at 6 hour after SAP, HMGB1 and HMGB1 mRNA expression peaked at 24 hours and kept relative high values up to 48 hour compared with normal control group (P<0.01). Conclusion: The rise of HMGB1 expression might play an important role in the intestinal mucosal barrier injuries in SAP. HMGB1 as a late mediator was involved in the pathogenesis of SAP. 【KEY WORDS】 Severe acute pancreatitisIntestinal mucosal barrierHigh mobility group box-1 protein 重症急性胰腺炎(severe acute pancreatitis, SAP)发病凶险、并发症多、病死率高,是临床上常见的危急重症。SAP时继发肠道屏障功能衰竭,肠腔内细菌及毒素可移位至胰腺和其他脏器, 其中胰腺和胰周感染是SAP的主要死因1-2。有研究表明,高迁移率族蛋白B1(high mobility group box-1 protein,HMGB1)作为一种重要的晚期炎症介质,在炎症反应过程中表达升高较晚,维持时间较长,参与了感染性休克及多器官功能障碍综合征(multiple organ dysfunction syndrome, MODS)的发生、发展过程。本研究通过观察大鼠SAP模型肠组织内HMGB1的变化,研究其与肠黏膜屏障损害的关系,旨在从新的角度探讨SAP肠黏膜屏障损害的发生机制。 1材料与方法 1.1动物分组与SAP模型制备健康雄性Wistar大鼠48只,体重270330 g,由中国医科大学实验动物学部提供。随机分成6组,取其中1组为正常对照组,另外5组分别为SAP建模后3、6、12、24和48 h组。大鼠术前12 h禁食不禁饮。2戊巴比妥钠腹腔内注射麻醉(1 mL/kg),常规消毒后,腹部正中切口入腹腔,找到胆胰管,于其出肝门端以动脉夹暂时夹闭胆管,以5号针头注射器逆行刺入胆胰管内,于胆胰管入十二指肠端用小动脉夹暂时夹闭胆胰管,以0.1 mL/min速度匀速注入5牛磺胆酸钠(1.5 mL/kg,Sigma公司产品),注射完毕后10 min去除动脉夹,逐层关腹。术后禁食,自由饮水,皮下注射生理盐水40 mL/(kg6 h),行液体复苏。正常对照组麻醉后取距回肠末端10 cm左右小肠组织,SAP组分别于建模后3、6、12、24和48 h取材,部位同对照组。腹主动脉采血,离心(3 000 r/min 15 min)分离血浆,-80 冻存待测。无菌采取组织,液氮速冻,-70 贮存备用。 1.2观察指标 1.2.1小肠髓过氧化物酶活性测定取待测组织100 mg加0.5% HTAB 2 mL制备匀浆,超声粉碎(10 s,3次)亚细胞成分,04 40 000 r/min离心15 min,取上清0.1 mL加反应液2.9 mL,保持温度25 ,立即于分光光度计460 nm波长下进行扫描,时长120 s。以第30 s到第90 s的吸光度的变化代表酶活力的改变。1单位小肠髓过氧化物酶(myeloperoxidase, MPO)活力以25 时分解1mol H2O2来表示。所有操作均在水浴中进行。 1.2.2血浆D-乳酸水平测定将血浆标本0.6 mL + 50 L高氯酸,漩涡混匀,3 000 r/min离心10 min,留取上清液0. 5 mL,加30 L 5. 8mol/L KOH,混匀, 3 000 r /min离心10 min,除去高氯酸钾沉淀 ,留取上清液0. 4 mL,分成2管(空白管和样品测定管),各0. 2 mL。每管加pH 9. 5 甘氨酸硫肼溶液(含2 mg/mL的 NAD+ ) 0. 9 mL;样品测定管加50 L D-LDH,空白管加50 L水,置37 水浴90 min;空白管调零后,在340 nm处测定样品测定管吸光度值4。根据标准管吸光度值(标准品购于Sigma公司) ,计算各样品D-乳酸浓度。 1.2.3肠组织HMGB1水平检测采用western blot法检测。取200 mg肠组织研磨粉碎后,加入1 000 L新鲜配置的冷蛋白裂解液(50 mmol/L Tris-HCl,pH7.5、150 mmol/L NaCl,2 mmol/L EDTA,1% SDS),经4 ,12 000 r/min离心20 min,取上清液,考马斯亮蓝法进行蛋白定量。取40 g蛋白与上样缓冲液混合,煮沸5 min,SDS-PAGE电泳分离样品后电转移至PVDF膜。5%脱脂奶粉封闭过夜,加入1:400 羊抗 HMGB1抗体(Santa Cruz)4 孵育过夜后,加入二抗37 孵育1 h,显色。采用凝胶成像分析系统(GDS-8000)测定各条带的吸光度值,以此代表蛋白的表达量。 1.2.4肠组织HMGB1 mRNA的表达取小肠组织80 mg,以异硫氰酸胍一步法提取细胞总RNA (TaKaRa公司试剂盒)。用半定量逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)技术对转录产物进行扩增,以三磷酸甘油醛脱氢酶(glyceraldehydes 3 phosphate dehydrogehase, GAPDH)作为内参对照,以目的基因与内参对照的比值为基因表达的相对含量。扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳后照相。大鼠HMGB1序列5(扩增片段为680 bp): 5-ATGGGCAAAGGAGATCCTA-3(正义链); 5-ATTCATCATCATCATCTTCT-3(反义链)。大鼠GAPDH序列6(扩增片段为309 bp):5-TCCCTCAAGATTGTCAGCAA-3(正义链);5-AGATCCACAACGGATACATT-3(反义链)。 1.3统计学处理数据均以xs表示,SPSS 10.0统计分析软件进行处理,采用单因素方差分析和q检验, P0.05为差异有统计学意义。 2结果 2.1血浆D-乳酸水平变化SAP 3 h时血浆D-乳酸水平较正常对照组上升不明显;在SAP建模后6 h时血浆D-乳酸水平(9.723.26) g/mL,与正常对照组(3.941.51) g/mL比较,明显上升,P<0.01;SAP 24 h时达最高值(16.414.65) g/mL,48 h时仍显著高于对照组(表1)。 2.2肠组织MPO活性变化正常对照组大鼠肠组织MPO活性较低,SAP 6和12 h时其活性均显著高于正常对照组(P<0.01)。SAP大鼠肠组织MPO活性于24 h时达最高值,并持续至48 h(见表1)。 2.3肠组织HMGB1水平的变化正常情况下大鼠肠组织中有少量的HMGB1表达。与正常对照组相比,SAP组肠组织中可见HMGB1表达增高。SAP 6 h肠组织中HMGB1表达明显增高,12 h呈现进一步升高趋势,2448 h维持在较高水平(见表1、图1)。 2.4大鼠肠组织HMGB1 mRNA表达变化正常情况下大鼠肠组织有较低的HMGB1 mRNA表达,与正常对照组比较,SAP 6 h和12 h肠组织中HMGB1 mRNA表达增高,SAP 24 h时肠组织HMGB1 mRNA表达明显增高并持续至48 h(见表1、图2)。 3讨论 SAP时肠黏膜屏障功能受到损害,导致细菌和内毒素的移位,从而引发肠源性感染和内毒素血症,严重时可促使多器官功能衰竭发生。Ammori等发现SAP患者肠黏膜通透性明显增加。SAP时肠黏膜屏障受到损害,主要通过肠系膜淋巴结胸导管体循环途径发生细菌及内毒素移位,细菌移位至胰腺可导致胰腺坏死组织继发感染,进入血循环可进一步刺激活化单核巨噬细胞,释放更多的细胞因子和炎性介质,从而发生全身炎性反应综合征,进一步诱发MODS,最终导致死亡。HMGB1较TNF-、IL-1等早期炎症介质分泌延迟且持续时间较长,故被称作“晚期”炎症介质,。HMGB1为细胞核内非组蛋白,在创伤应激或严重感染、脓毒症等病理情况下可大量表达并分泌至胞外,参与了脏器损伤过程-。 本研究结果显示,SAP建模后612 h,大鼠肠组织中HMGB1表达才明显增高,于SAP建模后24 h,大鼠肠组织中HMGB1水平达峰值并持续至48 h。有资料表明HMGB1呈时间-剂量依赖性增加肠上皮通透性,而这必将加剧肠源性细菌与内毒素移位。在SAP大鼠肠组织HMGB1延迟并持续增高的同时,反映肠组织炎症细胞浸润程度的MPO活性亦显著的升高,说明SAP大鼠肠组织中有大量中性粒细胞浸润和过量的活性氧自由基生成。当肠道屏障通透性增加,肠道中细菌产生的D-乳酸可吸收入血,因而血中D-乳酸水平升高可反映肠黏膜损伤程度和通透性的改变。本研究结果显示,随着HMGB1表达的升高,SAP大鼠血浆D-乳酸水平持续升高,提示肠黏膜通透性持续增加。因此,我们推测SAP时,大鼠肠组织HMGB1表达上调在肠黏膜损伤中具有重要意义。SAP时TNF-、IL-1等早期炎症介质迅速合成释放,但是难以做到早期预防性治疗。本研究结果显示, SAP时HMGB1作为晚期炎症介质介导了肠黏膜屏障功能不全的发生与发展。【参考文献】 1 Garside P, Millington O, Smith KM. The anatomy of mucosal immune responsesJ. Ann N Y Acad Sci, 2004,1029: 9-15.2 Gloor B, Muller CA, Worni M, et al. Late mortality in patients with severe acute pancreatitis J. Br J Surg, 2001, 88(7):975-979.3 Wang H, Yang H, Tracey KJ. Extracellular role of HMGB 1 in inflammation and sepsisJ. J Intern Med, 2004,255(3):320-331.4 Szalay L, Umar F, Khadem A, et al. Increased plasma D-lactate is associated with the severity of hemorrhagic/traumatic shock in ratsJ. Shock, 2003,20(3):245-250.5 Wang H, Bloom O, Zhang M, et al. HMG-1 as a late mediator of endotoxin lethality in miceJ. Science, 1999,285(5425):248-251.6 Liu SF, Adcock IM, Old RW, et al. Lipopolysaccharide treatment in vivo induces widespread tissue expression of inducible nitric oxide synthase MrnaJ. Biochem Biophys Res Commun, 1993,196(3):1208-1213.7 Butturini G, Salvia R, Bettini R, et al. Infection prevention in necrotizing pancreatitis: an old challenge with new perspectivesJ. J Hosp Infect, 2001,49(1):4-8.8 Ammori BJ, Fitzgerald P, Hawkey P, et al. The early increase in intestinal permeability and systemic en

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