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文档简介
神经培养技术,山东大学医学院 解剖学教研室,简 介,体外培养(in vitro culture)包括: 组织培养(tissue culture) 细胞培养(cell culture) 器官培养(organ culture) 就是将活体结构成分(如活体组织、细胞或者器官等)从体内或其寄生体内取出,放在类似于体内生存环境的体外环境中,让其生长和发育的方法。,萌芽:1885年德国学者Roux将鸡胚的神经板放入生理盐水中,发现神经板在盐水内存活数天。 起步:1907年,Harrison首次成功地用蛙淋巴液培养了蛙胚神经组织,并观察到神经细胞突起的生长过程。,神经培养的发展历史,发展:在设备、条件和方法上不断改进,尤其是自二战结束后,进入了新的飞速发展的阶段。,人类神经系统被公认为是自然界最复杂的系统。神经科学(neuroscience)已成为当今人类医学和生命科学的前沿。 多个学科、多个研究领域所进行的研究,均能以神经培养作为研究手段之一。,神经培养与神经科学,一、按培养物的整体性及大小分类,细胞分散培养 (dissociated culture) 器官-组织型培养 (器官型培养) (organotypical culture),神经培养的分类,可直接按培养的对象命名:如小脑培养,神经节培养,星形胶质细胞培养,少突胶质细胞培养,雪旺细胞培养等。,二、按培养的对象分类,静置培养:载片式、试管式、培养瓶式等。 旋转管培养:不断缓慢转动,以便经常更动培养液与培养物的关系。,三、按培养的方式分类,原代培养(primary culture):神经细胞一般不再分裂,不传代,故属原代培养。 再培养(sub-culture):把培养物切、割、取、弃等修改后,换培养液后再继续培养。 联合培养(coculture):把两种或两种以上的组织放在一起进行培养。,四、其它,按开创研究者的名字命名,如Maximow双盖片法。 在培养液中专门加入某种激素、神经生长因子或某些药物而标以某某特殊培养。 五、以上方式的综合或特殊设计的培养 综合上述数种方式的培养或培养与移植相结合的特殊设计的培养等。,一、 无污染环境 二、 温度 37 三、 气体环境和氢离子浓度 95%空气和5%二氧化碳 pH值为7.27.4,神经培养所需的环境条件,葡萄糖:较高。 氨基酸 维生素 促生长因子 神经生长因子(NGF) 其它,四、 基本营养物质,五、渗透压,260320 mOsm/kg,半固体培养基 液体培养基 天然培养基(natural medium) 合成培养基(synthetic medium) 无血清培养基(serum free medium),六、培养基,玻璃 多聚赖氨酸覆着底物 一次性塑料 细胞外基质成分 细胞粘附分子 单层非神经元细胞,七、培养器皿和附着底物,神经培养的基本实验设备,一般包括: 准备室 无菌操作室 缓冲间 进行其它操作的实验间,一、神经培养室的建立,二、实验室设备,超净工作台(super clean bench,hood)、CO2培养箱、电热干燥箱、高压蒸气消毒器、冰箱、倒置相差显微镜、解剖体视显微镜、自动纯水蒸馏器、洗刷装置、抽滤装置、离心机、微波炉等,三、器械 四、培养器皿,1. 玻璃器皿 2. 塑料器皿,培养用液,平衡盐溶液(Balanced Salt Solution, BSS) 天然培养基(Natural Medium) 合成培养基(Synthetic Medium) 其它,一、水和平衡盐溶液,1. 水:是细胞赖以生存的主要环境。 2. 平衡盐溶液:是从Ringer生理盐水发展起来的,主要由无机盐和葡萄糖组成。 PBS、Hanks、D-Hanks、Tyrode、Dulbecco、Earle、Eagle,几种常用平衡盐溶液的组成成分(g/L),1. 血清 牛血清 成年牛血清 新生牛血清 胎牛血清 马血清 羊血清,二、天然培养基,2. 胚胎浸出液: 鸡胚浸出液、牛胚浸出液 内含有生长因子、大分子核蛋白和小分子氨基酸等,有促进细胞生长的作用。,液体培养基、粉制培养基 BEM:Basal Eagle Medium 基础Eagle培养基 MEM:Minimum Eagle Medium 低限量 Eagle培养基 DMEM:Dulbeccos Modified Eagle Medium Dulbecco改良Eagle培养基 IMEM:Iscove Modified Eagle Medium Iscove改良Eagle培养基,三、合成培养基,四、无血清培养基,以合成培养基配成基础培养液,再补加其它成分。 1. 基础培养液 Ham F12和DMEM混合培养液 DMEM/F12(1:1) 神经元基础培养基(neurobasal medium),2. 生长附加成分 比较通用的: 胰岛素、转铁蛋白、硒酸钠、孕酮、腐胺(丁二胺) B-27、N-2(Gibco),全培液,以下各种成分各10 ml配制成全配液40 ml(葡萄糖含量为6g/L): 胎牛血清 DMEM 九天鸡胚渗出液 Glucose/BSS(5%葡萄糖溶液 4.7 ml,Tyrodes BSS 5.3 ml),其它常用溶液,1. 消化液 胰蛋白酶溶液(trypsin solution) 适于消化细胞间质(主要是纤维)较少的软组织。 需用不含Ca2+和Mg2+的平衡盐溶液配制。 用血清或含血清的培养液以终止消化作用。 0.25%、0.125%、0.08%,胶原酶溶液 (collagenase solution) 对胶原有强的消化作用,适于消化成年的背根神经节等纤维较多的组织。此酶作用缓和,且无须机械震荡。 Ca2+、Mg2+和血清存在下仍有活性。,EDTA溶液 EDTA(二乙胺四乙酸二钠)是一种化学螯合剂,对细胞有一定的离解作用,毒性小,价格低廉,使用方便。,2. pH调整液 NaHCO3液 7.4%、5.6%、3.7% HEPES液(羟乙基哌嗪乙硫磺酸) 终浓度1050 mmol/L,3. 抗生素液 青霉素 100U/ml 链霉素 100g/ml 4. 谷氨酰胺溶液 常配成100倍(200 mmol/L) 终浓度14 mmol/L,5. 有丝分裂抑制剂 阿糖胞苷(ara-c) 35 g/ml 5-氟脱氧尿嘧啶,神经培养的基本技术程序,培养前准备 新鲜组织取材 培养接种 标本维持 观察记录,培养前准备,1. 实验室准备 2. 器皿准备 3. 液体准备 4. 动物准备,取材,新鲜、无菌 动作轻柔,切忌损伤组织 熟练,操作时间过长会增加污染机会 取材时要滴加平衡盐溶液以防干燥 培养接种 包括组织块接种和单细胞悬液接种。,器官-组织型培养 组织不能太大,通常以薄片形式,厚度一般不超过1 mm。,细胞分散培养 细胞分散培养是从20世纪50年代才逐渐开展起来的。 神经细胞分散培养则开始于1952年由Moscona进行的鸡视网膜细胞的分离培养。,神经组织的分离 分散细胞的目的在于使细胞之间的连接解离,制成单细胞悬液。 常用的分散细胞的方法有:机械分散法和消化分离法。,标本维持,37 5% CO2 培养箱 更换培养液 一般23天,观察记录,肉眼或放大镜下观察 倒置相差显微镜观察 电子显微镜观察,新生大鼠基底神经节神经元的分散培养,取新生1天大鼠1只,75酒精棉球消毒后取心脏处死。 剪除头颅处皮肤,充分暴露颅顶骨。于颅顶骨基底环状剪开,小心去除,切勿损伤脑组织。 从后内侧向前外侧用眼科镊小心翻去大脑皮层,暴露基底神经节。 小心夹取基底神经节组织,放入有1 ml D-Hanks液的小烧杯内,眼科剪剪成1 mm3组织块。,把组织块移到离心管内,吸除多余的D-Hanks液后用0.125胰酶1 ml 37消化30 min。时间不定 50l胎牛血清终止消化,滴管小心吹打,打散组织。 200目铜网过滤,离心1000 r/min5min。 弃上清,用含10胎牛血清DMEM/F12培养液重悬悬沉积物,计数板计数,调整细胞密度为5105/ml。,六孔培养板每孔2 ml培养液,置于37饱和湿度含5CO2空气的培养箱内培养。 24 h后全量换液,以后每隔2天全量换液。若杂质较多可在 培养第3天加入终浓度为5g/ml的阿糖胞苷作用24 h后换液。,后面内容直接删除就行 资料可以编辑修改使用 资料可以编辑修改使用,主要经营:网络软件设计、图文设计制作、发布广告等 公司秉着以优质的服务对待每一位客户,做到让客户满意!,致力于数据挖掘,合同简历、
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