MTT法绘制生长曲线.doc

MTT实验实验材料： 1，5%FBS-L-DMEM, 5x104个/ml细胞悬液，5mg/mlMTT溶液，DMSO,0.01M PBS, 2, 96孔板共7个,酶标仪,50ml离心管，1.5ml离心管，0.22m滤膜，锡箔纸，MTT工作液（1ml/管）实验步骤：1， 分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液，调整细胞密度为5x104/ml。接种到96孔板，每孔接种200l细胞悬液进行培养（每孔1x104细胞）。2， 培养16-48后，每天选择6个培养孔各自加入MTT溶液（5mg/ml）20l，37继续孵育。3， 孵育4h后终止培养，吸出孔内上清，此时应该倾斜96孔板，用枪头小心的将上清液吸去，不可吸去下面的结晶颗粒，慢慢吸去。每孔加入150lDMSO,室温振荡10min，使结晶充分溶解，于试验孔平行设不加细胞只加培养液的空白对照1孔。注意事项：【1】 1, 两种方法分离小型猪骨髓间充质干细胞的比较分别取两组0,1,3代细胞，制成1x103的细胞悬液，接种到96孔板，每孔细胞悬液200微升，置37、5%CO2饱和湿度孵箱内孵育，各组每24小时分别取出4孔，每孔加入MTT（2mg/ml）20微升 37孵育，4h后吸弃孔内培养液，每孔加入150微升分析纯的二甲基亚砜，移至酶联免疫检测仪上振荡10min,用分光光度计在492nm波长处测定每孔的吸光度值（OD492），以OD(492)值为纵坐标，时间为横坐标绘制生长曲线【2】 来自：SD大鼠骨髓间充质干细胞体外分离培养的实验研究大鼠MSCs生长曲线测定：为了定量测定大鼠BMSCs的生长状况，对来源于同一动物的原代细胞进行连续培养。分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液，调整细胞密度为5x104/ml。接种到96孔板，每孔接种200l细胞悬液进行培养（每孔1x104细胞）。次日起每天选择6个培养孔各自加入MTT溶液（5mg/ml）20l，37继续孵育4h后终止培养，吸出孔内上清，每孔加入150lDMSO,室温振荡10min，使结晶充分溶解，于试验孔平行设不加细胞只加培养液的空白对照1孔。在酶标仪上选择570nm波长，以空白孔调零，测定各孔吸光度（A）值，连续测7天，以时间为横轴，A值为纵轴绘制细胞生长曲线。来自：2003人骨髓间充质干细胞的分离培养及部分生物学特性的实验研究来自：2007贴壁法培养大鼠的骨髓间充质干细胞来自：大鼠骨髓间充质干细胞移植促进皮肤创伤愈合的研究(3)接种细胞时，尽量混匀后再接种，尽量保持每孔细胞数接近（4）为防止96孔板的边缘效应，最好在实验组留出一空孔，内加平衡盐溶液，或者培养液以维持适当湿度，减少实验误差。（5）加入MTT时每孔加入量很少，通常是10-15微升，不宜准确定量，可以事先算好要加入的培养液总量，以及所需MTT量，混匀后再加入培养孔内。（6）加入MTT时，建议熄灭酒精灯，配置好的MTT应避光冷藏，一周内用完，最好在加入MTT前换一次液。（7）在进行检测期间需要换液，换液时最好不用PBS洗，这样会损失紫色结晶，可以将96孔板拿掉铺几张滤纸在其上，小心将板翻过来，孔中液体会流出来，且不会损失，肉眼可见的结晶，加入MTT溶解液后，上下吸收可以完全溶解甲簪。（8）为了防止板来回移动对细胞的影响，因此，把需要测得的孔，做完所有操作后吸出来，放在一个外面用的酶标板里，然后上机检测。 (9)MTT对菌很敏感，所以整个过程都要无菌