基因工程实验ppt课件.ppt

基因工程实验 生物化学资料网 实验目录 实验一实验计划表实验二染色体DNA的提取实验三PCR扩增实验四凝胶电泳法回收目的DNA及其体外连接实验五感受态细胞的制备实验六重组质粒的转化实验七质粒的提取实验八重组质粒的酶切鉴定 实验一实验计划表 一 实验目的 了解本学期整体的实验流程及安排 熟练使用微量移液器 学习制备琼脂糖凝胶 生物化学资料网 基因工程 GeneEngineering 又称 重组技术 把不同生物的 与载体相连 并导入到受体细胞中去增殖 表达 基因工程包括切 接 转 增 检五大要素 二 实验原理 生物化学资料网 凝胶电泳系统 微量移液器 三角瓶 微波炉 铲子 手套琼脂糖 1 TBE 加样缓冲液 三 实验用具及试剂 目的基因的获取基因组总 提取凝胶电泳检测 扩增目的基因 产物的电泳检测 产物纯化获得目的基因 四 实验操作 1 本学期实验计划 生物化学资料网 重组 转化 与pMD18 T连接DH5a感受态细胞制备转化 平板涂布 培养 筛选与鉴定抗生素抗性筛选挑单菌落培养提取质粒质粒酶切 电泳检测 2 微量移液器的使用 将微量移液器按钮轻轻压在第一挡垂直握持微量移液器 使吸头浸入页面下几毫米 千万别将吸头直接插到液体底部缓慢 平稳地松开控制按钮 吸上样品液 否则液体进入吸头太快 导致液体倒吸入移液枪内部 或吸入体积减少 等1s后将吸头提高液面 并使吸头在容器壁擦过平稳把按钮压到第一停点 在把按钮压到第二停点以排出剩余液体 提起微量移液器 使吸头在容器壁擦过然后按吸头弹射器除去吸头 使用操作 生物化学资料网 使用注意事项 未装吸头的微量移液器绝对不可用来吸取任何液体 一定要再允许范围内设定容量 千万不要将读数的调节超出其适用的刻度范围 否则会造成损坏 不要横放带有残留液体吸头的移液器不要用大量程的移液器移取小体积样品微量移液器每日用完后 应旋转到最大刻度 让弹簧恢复原形 保持弹性 为了确保微量移液器的准确性 移液器必须定期进行校准 生物化学资料网 3 琼脂糖凝胶制作 选择好胶盒 胶板和梳子 洗净 把胶板放入胶盒中 梳子插上 量取25ml1 TBE溶液放入锥形瓶或烧杯中称量0 25g琼脂糖 倒入锥形瓶中将锥形瓶放入微波炉中 让溶液沸腾2 3次 琼脂糖彻底融化锥形瓶取出 稍稍冷却后倒入胶盒中等待琼脂糖冷却凝固形成点样孔后即可 掌握酚氯仿法提取 的原理和操作 一 实验目的 实验二基因组总 提取 生物的大部分或几乎全部 都集中在细胞核或类核中 DNA在体内通常都与蛋白质结合 蛋白质对DNA制品的污染常影响到以后的DNA操作过程 因此需把蛋白质除去 一般采用酚氯仿抽提法 苯酚 氯仿对蛋白质有极强的变性作用 而对DNA无影响 经苯酚 氯仿抽提后 蛋白质变性而被离心沉降到酚相与水相的界面 DNA则留在水相 少量的或与DNA紧密结合的蛋白质可用蛋白酶予以去除 DNA制品中少量的RNA无影响 必要时可加入不含DNase的RNase去除RNA污染 二 实验原理 消化缓冲液 TE EDTA NaCl SDS 蛋白酶KTris平衡酚 氯仿 异戊醇 24 1 NaAc 无水乙醇 70 乙醇 三 实验用具与试剂 微量移液器 高速离心机 1 5ml 管 吸头 烘箱 水浴锅 1 5ml管架 胶头滴管 冰箱 切取组织 剪碎放入研钵 越细越好 磨成粉末 以消化缓冲液处理55 水浴过夜 获得组织消化液 取出消化组织液 5000rpm min 取上清液于新离心管 加等体积 ris 平衡酚 轻轻混匀 min 4 1000rpm 10min 留上清 取上清液于新离心管 加等体积酚 氯仿 异戊醇 25 24 1 抽提 轻轻混匀 min 同 加等体积氯仿 异戊醇 轻轻混匀 min 同 四 实验步骤 加1 10体积3mol LNaAc 及 倍体积预冷 无水乙醇 混匀 沉淀 min 12000rpm 15min 弃上清 加70 乙醇1ml 混匀 同 管放置于烘箱中烘干 加 ulTE或ddH2O溶解 琼脂糖凝胶电泳检测 提取染色体 的基本原理是什么 操作中应该注意什么 五 思考题 学习 扩增的基本原理 掌握 技术的常规操作 了解 扩增的参数设计 一 实验目的 实验三 扩增 聚合酶链反应 Polymerasechainreaction PCR 利用核酸变 复性的性质 以待扩增的 为模板 在体外由引物介导的酶促合成特异 片段的过程 反应体系引物 dNTP Mg 模板 TaqDNA聚合酶 Buffer 二 实验原理 循环参数 9 5min 9 30s 5 30s 72 30s goto times 72 10min TaqDNA聚合酶 PCR缓冲液 MgCl2 dNTP 引物 模板 ddH2O TBE电泳缓冲液 EB 加样缓冲液 三 实验用具与试剂 旋涡混合器 微量移液取样器 移液器吸头 0 2mlPCR微量离心管 PCR仪 台式离心机 琼脂糖凝胶电泳系统 紫外凝胶成像系统 在0 2mlPCR微量离心管中配制30ul反应体系 ddwater20 5ul10 PCRbuffer 不含MgCl2 3ul25mMMgCl22ul10mmol LdNTP1ul10 mol LPrimer11ul10 mol Lprimer21ul模板1ulTaq酶0 5ul总体积30ul 四 实验步骤 在离心机中混匀 管放入 仪中 按照原理中的条件设置程序 进行 反应 PCR结束后 取3ulPCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测 五 思考题 PCR中产生非特异性条带的原因可能有哪些 实验四凝胶电泳法回收目的DNA及其体外连接 一 实验目的 1 学习和掌握从琼脂糖凝胶中回收DNA片段的方法 2 掌握DNA体外连接的方法 二 实验原理 DNA分子在琼脂糖凝胶中的电泳速率与以下因素有关DNA分子大小DNA分子构象琼脂糖凝胶浓度电泳所用电压电泳缓冲液 生物化学资料网 2 利用硅胶膜在高盐浓度时能特异性吸附DNA 而在低盐浓度时可使DNA被洗脱的原理纯化DNA 3 Taq酶参与PCR反应中 产物双链核酸中的3 端各多连接一个脱氧腺苷酸A 与商业开发的pMD18 T载体可在DNA连接酶作用下 按照碱基配对形成环状的完整质粒 生物化学资料网 三 实验用具及试剂 凝胶电泳系统 刀片 紫外仪 酒精灯1 5mlEP管 1 5mlEP管架 65 水浴锅PCR产物 1 TBE 加样缓冲液 TakaRa胶回收试剂盒 TA克隆试剂盒 DL2000marker 生物化学资料网 1 2 琼脂糖凝胶电泳2 在紫外灯下用干净的手术刀割下含有目的DNA琼脂糖块装在1 5ml的EP管中称量减1克即为凝胶块重量3 加入5个凝胶体积量的DR Buffer4 混匀65 加热融化凝胶块5 加入DR Buffer量的1 2体积的DR Buffer 当目的片段小于400bp再加入终浓度为20 的异丙醇6 将上述溶液short后转移至spincoloumn中12000rpm 1min弃滤液7 加入500ulRinseA12000rpm30s弃滤液8 加入700ulRinseB12000rpm30s弃滤液9 同8 四 实验步骤 10 将spincoloumn安置于新的1 5mlEP管中在spincoloumn膜中央加25ulElutionBuffer放入烘箱1min12000rpm1min保存1 5mlEP管1 胶检测11 链接反应 冰上操作 在一支0 2mlEP管中加入以下试剂 纯化的目的DNA片段4 5ulVector0 5ul连接液5ul混匀16 连接过夜 五 思考题 为什么连接反应的温度要定在16度 生物化学资料网 实验五感受态细胞的制备 掌握感受态细胞的制备方法2 学习和理解影响细胞感受态的因素 一 实验目的 生物化学资料网 感受态是指受体 或者宿主 细胞最易接受外源DNA片段并实现其转化的一种生理状态 它是有受体菌的遗传性所决定的 转化过程中所用的受体细胞一般是限制 修饰系统缺陷的变异株 既不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株 用Cacl2处理受体细胞 使细胞的通透性发生了暂时性的改变 成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞 二 实验原理 生物化学资料网 三 实验用具及试剂 培养皿 离心管 冷冻高速离心机 超低温冰箱 摇床 锥形瓶Cacl2 LBAmp 液体培养基 LBAmp 固体培养基 DH5 甘油菌 1 先从保存菌种DH52 70 划线培16h 37 2 从平板中挑取一个单菌落移到4ml LBAmp 培养基中 37 摇荡过夜180 250rpm3 按1 的接种量将过夜培养的菌转接于50mlLBAmp 的培养基中 37 250rpm 2h 2 5h 4 当培养菌生长至OD600达0 5 0 6时 约2 2 5h 将培养菌取出 在无菌条件下将细菌转移至50ml无菌聚乙烯离心管中 冰浴10min 以使培养液冷至0 四 实验步骤 5 4 5000rpm min 7min6 细胞沉淀用10ml冰冷的Cacl2溶液重悬于4 5000rpm min 5min7 细胞沉淀用10ml冰冷的Cacl2溶液重悬冰上放置30min 于4 5000rpm min 5min8 用2ml冰冷Cacl2溶液重悬各管细胞 然后按每管100ul的量分装于预冷的0 5mlEP管中存于 70 生物化学资料网 五 思考题 如果实验对照组本不该长菌落的平板上长出了一些菌落 你将如何解释这种想象 生物化学资料网 实验六重组质粒的转化 一 实验目的 掌握重组质粒的转化方法 生物化学资料网 二 实验原理 1 转化是将外源DNA分子引入受体细胞 使之获得新的遗传性状的一种手段 2 化学转化法利用Cacl2处理感受态受体细胞 然后通过热休克处理 即置于42 高温热激90s 热休克后 是受体菌在不含抗生素的培养液中生长至少半小时以上 使其表达足够蛋白质 以便能在含抗生素的平板上生长菌落 生物化学资料网 三 实验用具及试剂 水浴锅 培养箱 枪头 冰盒 超净台 微量加样器 制冰机 牙签DH5 感受态细胞 连接产物 LBAmp 液体培养基 LBAmp 液体培养基 LBAmp 培养基平板 1 5ul连接液加100ul感受态细胞 70 取出 置冰上 加后轻轻旋动2 冰上静置30min3 42 水浴90s热休克 冰上3min4 加10ulLB Amp 至菌液 混匀 颠倒 5 37 烘箱30min6 37 摇床30min180rpm7 涂平板100ul 板 37 培养12 16h8 挑克隆挑取菌落接入5mlLBAmp 液体培养基中 37 振荡过夜 四 实验步骤 生物化学资料网 五 思考题 当质粒加入宿主细胞进行转化 再涂布在含有Amp的LB培养基平板前 为什么要在LB培养基中培养1h 生物化学资料网 实验七质粒的提取 1 学习质粒DNA提取的基本原理2 掌握质粒最常用提取方法 一 实验目的 生物化学资料网 二 实验原理 细菌质粒DNA的提取是根据环状质粒DNA分子具有相对分子质量较小 易于复性的特点进行的 碱法是常用的提取方法 在热或碱性条件下DNA分子双链解开 若此时将溶液置于复性条件 由于变性的质粒分子能在较短的时间内复性而染色体DNA不能复性 从而分离质粒DNA 生物化学资料网 三 实验用具及试剂 高速离心机 微量移液器 枪头 凝胶电泳系统 凝胶紫外成像系统 EP管EB 加样缓冲液 阳性克隆的培养液 质粒提取试剂盒 生物化学资料网 四 实验操作 1 取1 4ml过夜培养的阳性克隆菌液 12000rpm离心2min 弃上清2 用250ul的solution 含RNaseA1 充分悬浮细菌沉淀3 加入250ul的solution 轻轻上下翻转混合5 6次使菌体充分裂解 形成透明溶液4 加入400ul的4 预冷的solution 轻轻上下翻转混合5 6次 直至形成紧实凝集块 室温静置2min 生物化学资料网 5 室温12000rpm 10min 取上清6 将试剂盒中的Spincolumn安置于collectionTube上7 将操作6中的上清液转移至Spincolumn中12000rpm 1min 弃滤液8 将500ul的RinseA加入Spincolumn中 12000rpm 30s 弃滤液9 加700ul的RinseB加入Spincolumn中 12000rpm 30s 弃滤液10 同9 生物化学资料网 11 将Spincolumn安置于新的1 5ml离心管上 在Spincolumn膜中央处加入60ul灭菌或ElutionBuffer 室温静置1min12 12000rpm 1min洗脱DNA13 凝胶电泳检测提取效果 并以空载体做对照 从质粒大小上初步判断是否有外源基因进入载体 生物化学资料网 五 思考题 在碱法提取质粒DNA操作过程中应该注意哪些问题 生物化学资料网 实验八重组质粒的酶切鉴定 1 学习和掌握限制性内切酶的特性2 了解重组质粒的鉴定方法 重点掌握重组质粒的酶切鉴定方法 一 实验目的 生物化学资料网 二 实验原理 1 限制性核酸内切酶 是一类能识别双链DNA分子特异性核酸序列的DNA水解酶 是体外剪切基因片段的重要工具 所以常常与核酸聚合酶 连接酶以及末端修饰酶等一起称为工具酶 限制性核酸内切酶不仅是DNA重组中重要的工具 而且还可以用于基因组酶切图谱的鉴定 生物化学资料网 2 影响核酸限制性内切酶活性的因素DNA的纯度 DNA的甲基化程度 酶切消化反应的温度 DNA的分子结构 溶液中离子浓度及种类 缓冲液的pH值 生物化学资料网 三 实验用品及试剂 恒温水浴锅 微量加样器 枪头 凝胶电泳系统 凝胶成像系统酶HindIII和BamHI核酸内切酶 Takara HindI