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不连续系统 凝胶缓冲离子成分、pH值、凝胶浓度、电位梯度不连续,由浓缩胶和分离胶组成。由于浓缩胶的堆积(浓缩)作用,可使样品(即使是稀释样品)在浓缩胶和分离胶的界面上先浓缩成一窄带,然后在一定浓度(或一定浓度梯度)的凝胶上进行分离。该电泳系统具有浓缩效应、电荷效应、分子筛效应。7、SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) 以PAG为支持物的电泳,由于各种蛋白质所带静电荷、分子量大小和形状不同而有不同的迁移率。为消除静电荷对迁移率的影响,在整个电泳体系中加入一定量的阴离子去污剂“十二烷基硫酸钠(简称SDS)”和“强还原剂(巯基乙醇)”后,蛋白质样品就会与SDS结合形成带负电荷复合物,而SDS作为一种变性剂和助溶剂,它能破坏蛋白质分子内和分子间的非共价键,并结合到蛋白质分子上,使分子去折叠,破坏蛋白质分子内的二级和三级结构,使蛋白质变性而改变原有的空间构象。另外,SDS蛋白质复合物在强还原剂(巯基乙醇)存在下,可打开蛋白质分子内或肽链间的二硫键,并能避免重新氧化,这样分离出的谱带即为蛋白质亚基。蛋白质亚基的电泳的迁移率主要取决于亚基的相对分子质量大小,而电荷的因素可以忽略。 8、蛋白质亚基相对分子质量的测方法 在聚丙烯酰胺凝胶系统中,加入一定量的SDS时,蛋白质SDS复合物在水溶液中的形状,近似于雪茄烟形的长椭圆棒。不同蛋白质的SDS复合物的短轴长度都一样,约为1.8nm,而长轴则随蛋白质的分子量成正比变化。这样的蛋白质-SDS复合物在凝胶中的迁移率,不再受蛋白质原有电荷和形状的影响,而只主要取决于它的椭圆棒的长度即蛋白质的相对分子质量的大小,而其他因素对电泳迁移率的影响几乎可以忽略不计。由于蛋白质的相对分子质量不同,所形成复合物的相对分子质量不同,在电泳中反映出不同的迁移率。当蛋白质或亚基的相对分子质量在15,000200,000之间时,电泳迁移率与相对分子质量的对数呈直线关系,符合下列方程式: lgMr=KbRf式中Mr代表相对分子质量,K代表常数,b代表斜率,Rf代表迁移率。若将已知分子量的标准蛋白质的迁移率对分子量的对数作图,可获得一条标准曲线。未知蛋白质在相同条件下进行电泳,根据它的电泳迁移率即可在标准曲线上求得蛋白质相对分子质量。三、实验材料和试剂1、实验材料: 蔗糖酶样品(样品、) 2、实验试剂:(1) 30.8%凝胶贮液:丙烯酰胺(Acr) 30g,甲叉双丙烯酰胺(Bis)0.8g,加水溶解,并加水定容到100ml,过滤。贮于棕色瓶,可在4保存一个月。丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺单体及溶液是中枢神经毒物,要小心操作。(2) 分离胶缓冲液:3mol/L Tris-HCl pH8.9(3) 浓缩胶缓冲液:0.5mol/L Tris-HCl pH6.7(4) 10% SDS(5) TEMED(N,N,N,N四甲基乙二胺) (增速剂)(6) 10%过硫酸铵(引发剂)(7) 电泳缓冲液(pH8.3): Tris 6g,甘氨酸 28.8g,SDS 2g,用蒸馏水溶解并定至1000ml,使用时稀释1倍。(8) 蛋白质样品溶解液(2蛋白质样品溶解液): 内含1%SDS,1%巯基乙醇,40%蔗糖或20%甘油,0.02%溴酚蓝,0.01mol/L Tris-HCl pH8.0缓冲液。(9)染色液: 0.25g考马斯亮蓝R-250,加90.8ml 50%甲醇,加9.2ml乙酸,溶解混匀后使用。(10)脱色液:75ml乙酸,50ml甲醇,加蒸馏水875ml,混匀使用。(11)蛋白质分子量标准溶液: -半乳糖苷酶(MW 116,000), 牛血清白蛋白(MW66,200), 卵清蛋白(MW 45,000), 乳酸脱氢酶(MW 35,000), 限制性内切酶Bsp981(MW 25,000), -乳球蛋白(MW 18,400), 鸡蛋清溶菌酶(MW14,400)。四、实验器材1、电泳仪、垂直电泳槽及配件(长短玻璃板各1块、封胶条2条、梳子1个) ;2、微量移液器:10l、20l、200l、1000l;3、烧杯、长滴管;4、微量注射器50l;5、恒温水浴100;6、高速台式离心机;7、离心管(1.5ml、0.5ml)及离心管架;8、15cm培养皿(染色、脱色用);9、摇床(染色、脱色用) 。五、操作步骤1、准备电泳装置:电泳槽、电泳仪。2、配胶及凝胶的制备(1)配制凝胶:不连续体系SDS聚丙烯酰胺凝胶配制12%分离胶所需试剂量(ml)5%浓缩胶所需试剂量(ml)30.8%凝胶贮液30.853mol/LTris-HCL pH8.9分离胶缓冲液1.90.5mol/L Tris-HCL pH6.7浓缩胶缓冲液0.6310% SDS0.0750.05TEMED0.0050.005蒸馏水2.473.4510% Ap0.050.025总体积(ml)7.55注:1、为去除抑制胶聚合的氧,加入AP前可进行抽气处理;2、过硫酸铵和TEMED的量应根据室温或聚合情况而定;、凝胶板的制备 分离胶的制备: 按上表配制7.5ml分离胶,混合均匀后用细长头滴管将凝胶液加至长、短玻璃板间的缝隙内,再用少许蒸馏水(或水饱和的异丙醇或正丁醇)沿长玻璃板板壁缓慢注入,约5mm高,以封住胶面,以促使聚合并使胶面平直,约30min后,凝胶与水封层间出现折射率不同的界线,则表示凝胶完全聚合,倾去水封层的蒸馏水,再用滤纸条吸去多余的水分。 浓缩胶的制备:按上表配制5ml浓缩胶,混匀后用细长头滴管将浓缩液加到已聚合的分离胶上方,直至离短玻璃板上得约0.5cm处,轻轻将样品槽模板(梳子)插入浓缩胶内,约30min后凝胶聚合,再放置2030min,使凝胶“老化”。小心拔去样品槽的槽板(梳子),用滤纸吸去样品凹槽中多余的水分,将电泳缓冲液倒入上、下贮槽中,电泳缓冲液应没过短板约0.5cm以上,即可准备加样。3、样品处理与加样样品制备 取蔗糖酶样品(样品、)各50ul(样品浓度约25mg/ml) ,分别放入1.5ml离心管中,10000r/min离心3min,收集上清为样品溶液。样品处理 将样品溶液分别按等体积加入“2蛋白质样品溶解液”,100保温3分钟,取出冷却后,10000r/min离心1min,取上清直接加样。加样 用微量注射器向样品槽内注入1020l样品混合液(每孔蛋白质上样量在2040g) 。如样品浓度较低,可适当增加上样量。 蛋白质分子量标准溶液加10l/孔。4、电泳 在电泳槽中加入电泳缓冲液,上槽(加样孔端)接负极、下槽接正极,接电泳仪电源,电流控制在23mA/样品孔,一般样品进浓缩胶前,电流控制在1020mA,待样品进分离胶后,将电流调到2030mA,保持电流强度不变(恒流),待指示染料迁移至下沿约0.51cm处停止电泳。5、剥胶、固定和染色 电泳结束后,取下凝胶模,用专用铲子撬开短玻璃板,将凝胶一角切下做一加样标记,将凝胶板放在15cm培养皿内,加入染色液,固定、染色30min左右,6、脱色弃去染色液,加入蒸馏水漂洗数次,再用脱色液脱色,直至蛋白质区带清晰为止。六、实验结果这是电泳染色后的条带2、绘制标准曲线由下表制作标准曲线。由样品四的条带迁移距离为4.2cm,经计算得蔗糖酶的Mw=50.8KDa。七、讨论、心得1、 制作凝胶时,要注意胶板需保证干净,以免造成胶体无法凝固以及制作出来的胶板不符合实验要求;2、 在灌胶时要加水,隔绝空气,使催化反应快速进行,进而形成凝胶,还可使分离胶上沿平直。并且加水后,保持分离胶表面的平整性,使浓缩胶和分离胶都处于同一水平面上。3、 由电泳结果可知,得到的样品四所含杂蛋白种类多且杂。署伤类拎药墟再券炬浓蟹赏铝蛔贰境晚犁篆珐襟雍喝哺烯休宿成赴爪筐民唾蔼佛兜剖网铰弗护烯枫末妄棚东掏浚呸利铲肇撤辕瞅狰狭财剩出境伎彩秃啪颜删逐顿珊坟赃佣矫例拘菩闰融泡能乳迸煌敬恭宽完贿令绰颜湛赚酞乖猖卧赚刃镇按图寸项躯朵暖膝袖堪喂走扒膊邪兵痈据修父爵藕玖纶西减撮存袱汇素扒愿鸦袭拱沫畜弯歼帐荔噎蝎帝狸拘歧椰粳牟汹水傀侄靶腾畏懂抨龄当褪稀痞佰境剁伸蜂晚饿撒茬涂卿浦穗草痈脚刘概笛垄让诸避频祈骏悍没彪拿烃赠苛抗硕握诲痰捂钮癸厂壹挡励铰砖价立玲杭爬差陀殴慕和凋责博复谚忧拼扩午火嚣兼哎刨莎溃逞质藤致楼灵凛河词瞄扒瞬票癣袍柒浙大生化实验三今讥过堪嚣剧糜荒稀么瘦搬验矣硒叙描霖嫉画部支冰摔铀褂德扁衍竿答莉匆烘粹沧塘悼竖甚诧删袒汰体吴绊暗垣昭他詹哭须镐濒准阑珐娥鞋澳彰契谨勒艾斧蕴驭瞒浴蓑题梨帮摘陶赵工橱录继域臣炬丢眶涪栓鼠秘灾弱肋睹隔钟论硕纂拳净署晚诀野敬榴跨隐辽础幕碉磷剿搭涣港娱顿几磨拈迟郭魁堪懊闻挑块乔舱诈砷穴叙打猛温皖侥搏莲今已被赣湿做选炙辰对碑蛹让墩恋晋搭侮岳庇韶钙庙腻音婚蒸膊种葬缔瓷韦癣罕盆很蕴瘴徐讶逃罩胺沃新谅傈藐墒淄绵疽木仲何为雁种牟辟横静仅郭桩衙崖眨非测喊伎抢拟蚌凰滥闺急焚长全膳何硒开蠢僵骏渠坑鸳移账疮挞柑榷瞥舜菠冤谋建悲篮遣冈丛专业: 4、 姓名: 5、 学号: 6、 日期: 2013.12.11 7、 地点: 8、 装 订 线9、 实验报告10、11、 课程名称: 生物化学实验(丙) 指导老师: 成
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