检验前标本采集和管理

检验前标本的采集和管理,内容提要,一、分析前质量控制的重要性二、标本采集的要求三、如何管理好标本,前言,随着检验医学的发展，实验室自动化与计算机信息技术的普及，人员素质的提高，人们的质量意识在不断增加，临床诊断和治疗越来越依赖于临床检验，这就使检验科面临新的挑战：必须重视实验室全面质量管理！,临床检验的目的是为临床提供准确可靠的实验诊断数据，为了保证实验数据的可靠性，在检验医学中必须坚持全面质量控制(total quality control,TQC)，全过程质控包括分析前、分析中、分析后三个阶段的质量控制。有研究证实：在实验误差中分析前误差占总误差的30%以上，应引起医务工作者的重视。,分析前的问题,分析前误差的来源：选择检验项目不正确1.9%；采集标本不规范6.8%；采集时间不对2.2%；标本收集后未及时检测22.1%。,如何保证分析前标本的质量?,分析前工作,验检申请,标本采集,标本管理,病人准备,采集过程,运送、接收，处理、保存,1、 病人的准备,1、病人的生理状况:年龄 、性别、怀孕。2、饮食情况：饥饿、饮酒、3、服药情况。4、运动5、各种检查、治疗6、其他注意事项。7、拟采用的容器。,特别注意,新生儿：ALPACPSB血常规的变化；怀孕：TPALBCRP凝血功能的变化；餐后：TPALBTGT-CHKAST升高50% ALPSBPBUN升高至少15%;饥饿：SBCRUA升高；TPTGT- CHBUNaPO降低饮酒：ASTALTTGr-GTUA升高;GLU降低；运动：GLUWBCCKCKMBUACR升高；,临床用药的影响,许多药物服用后会影响检验结果：1.影响标本的外观；2.干扰分析过程；3.改变代谢途径；。,临床用药的影响,服大剂量Vc使GLU,T-CH,TG假性降低；应用大剂量青霉素后可使AST,CK,Cr,TP升高，使ALB,SB降低；服用肝素及甲状腺素可使血中T-CH降低；而服用胆盐和氯丙嗪可使T-CH升高；。,对检验有影响的治疗和操作,手术:CRP,Alb,CK,BUN.输液和输血: K,LDH.穿刺，活检，注射，触诊，全身按摩内窥镜,对检验有影响的治疗和操作,透析体能应激测力，负荷训练，心电图安慰剂，药品精神紧张: 改变激素水平，Alb,GlU,FC,TC,二、标本的采集,1、血液标本的采集,采集的时间；止血带的使用；采血的体位；添加剂的使用；采血管的次序；溶血、脂血的影响；,采血时间的选择,应在何时采样？上次采样后多长时间？一天内的什么时间？上次饮食后多长时间？服药后多长时间？,采集的时间,K 上午比下午低；T3夏季比冬季低；V-D3在夏季较高；SB,Fe清晨最高，血C a中午最低。白细胞、激素类变化较大！,采血方式的选择,止血带使用时间过长，会影响某些指标：Alb,Ca,ALP,AST等510%，BUN；PH;细胞内K外移，引起假性增高；患者坐位与卧位采血，部分指标不一样！,添加剂的使用(1),血常规/流式细胞：EDTA-Na2/EDTA-K2：静脉采血2.0ml; 凝血功能：枸橼酸钠/柠檬酸钠空腹采血2.7ml,4小时内测定；如不能及时检测，分离出血浆4可保存8小时，否则-20 保存，但不可反复冻融； 血流变；肝素锂钠抗凝，采血4.5ml,4小时内检测完毕；,添加剂的使用(2),HBV-DNA:普通管或血常规管！不得用肝素抗凝！4小时内分离血清或血浆。HCV-RNA:用血常规管！不得用肝素抗凝！ 4小时内分离血浆.乳酸测定：不得用止血带！NaF/K2C2O2（灰头），半小时内测定；血沉：枸橼酸钠抗凝，采血1.6ml；,添加剂的使用(3),血氨：血常规管采集后放冰水中，快速送检！血气分析：采集动脉血2.0ml,肝素抗凝；半小时内检测！糖化血红蛋白：血常规管，采血2.0ml;,采血管的次序,血培养瓶红头/黄头蓝头管黑头管绿头管紫头管灰头其它（美国CLSI推荐）,溶血的影响,溶血原因：因止血带、采血管、采血、温度、震摇、抗凝、离心等因素造成；显性：肉眼可见，HB达20mg/dl;隐性：wbcplt的破坏；HB未释放，可使K,ACP,Mg升高！干扰的原因： 色素的产生； 酶的释放参与某些反应； 细胞内外成分不同！LDHACPASTK!,脂血的影响,产生原因 高蛋白饮食； 空腹时间不够； 输入脂肪乳及营养制剂；干扰机制 脂类取代水， 浊度干扰，光吸收增加。,如何正确采集血液标本？（一）,1. 空腹1214小时；2. 止血带使用不超过1分钟；3. 输液前或停止1小时以后；4. 在所有的检查、治疗前；5. 选用合适的抗凝管；6. 安排好采血次序；,如何正确采集血液标本？（二）,7. 尽量采用统一的体位8. 避免运动后采血9. 尽可能在上午79点采样；10 .输入脂肪乳和营养制剂，应在8小时以后采血；11.在病历和申请单上记录样本采集的准确时间； 12特殊状况要注明！,如何正确采集血液标本？（三）,血液培养1.采集时间： 一般在发热初期或发热高峰时采集，原则上选择在抗菌药物应用之前，对已用药而因病情不允许停药的患者，也应在下次用药前采集；,血液培养标本的采集,2.采集的部位和采集频率： 增加采样频率和多部位采样，可提高阳性率，至少24小时内不同部位采集3次或更多次；3.标本采集的容量：采血量以每瓶810ml为宜，儿童和婴幼儿，分别采集样本35mL和12mL不等，骨髓采集量一般为12mL。,血液培养注意事项：,1.推荐每份标本最少同时做两种培养，需氧和厌氧；2.培养瓶必须温度平衡至室温；3.无菌程序采取病人血样本，先将标本注入厌氧瓶，再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。,血液培养注意事项：,4.注入标本后的血培养瓶务必立即送至细菌室，切勿放冰箱存放；5.采集后的培养瓶在送检过程中应注意保温；,2、各种体液标本的采集,总体原则根据检查目的留取标本；注明标本的种类、来源；防污染！,（1）尿液标本的收集,1.尿常规：随机尿，最好晨尿，也可饭后23小时尿不超过2小时送检；2.尿沉渣：需晨尿！不得少于10ml；.3.尿生化定量：24小时尿，记尿量；4.尿液蛋白分析：晨尿；5.尿糖定量：空腹或餐后尿！6.尿蛋白电泳：晨尿5.0ml即可。,尿液细菌培养标本的采集：,总体要求：需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药5d之后留取标本，尿液在膀胱内停留6-8h以上。 注意：留取晨尿中段尿无菌-专用管！,尿液标本的收集,防污染：特别注意： 容器清洁 停止用药3天1周； 计量准确！,（2）其它体液标本留取要求,脑脊液：不少于1ml,尽快送检；胸腹水等穿刺液：不少于50ml,尽快送检；,3、 粪便标本的采集,总体原则留取病理部分；注意防污染及时送检！,粪便标本的留取,1.挑取脓血，粘液部位的粪便23g,液状粪便取絮状物于无菌容器内送检。2.要采集新鲜粪便做培养；3.腹泻病人应尽量在急性期采集标本（3天以内）。4.标本最好在用药前采集；5.用于厌氧培养的标本最好在床边接种。,三、标本的管理,处理转运交接保存,标本的保存及运输,标本处置不当，可因血细胞的代谢，蒸发，化学反应，微生物降解，渗透压改变，气体逸散等，使某些指标发生变化； Glu,CO2:降低； K,TP,Cl:升高； SB,CK被光分解。,正确保存及运送标本,1.减少标本在室温下的放置时间不超过一小时；2.及时送检；3.选择合适的存放/运输条件-低温或室温；4.尽量避光；5.避免剧烈碰撞或摇动。,标本的交接及处理,1、选择合适的离心条件；2、不能及时检测的标本要存放合适的温度，并有明确标识；3、标本转运、存放都要有交接记录；4、特殊状况要记录，并及时告知临床或相关