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文档简介

1、想做多重免疫荧光?收好指南,教你一张片子染出七种颜色想做多重免疫荧光?需要先思考这几个问题:问题1:你认得全动 物园里的动物们吗,比如大鼠,小鼠,兔,山羊,绵羊,鸡,荷兰猪(豚 鼠)?不同种属的抗体需闹清楚。问题2:你确定能分得清字母表并做得 了十以内得加减法吗?有不同亚型鉴定的过的一抗,比如:IgGl , IgG2a, IgG2b , IgG2c , IgM , IgE不知道怎能行?问题3:你确定能将动 物和数字字母们对号入座,并找对门牌吗?有对应种属特异反应性的Fab二抗,比如:F (ab ) 2 Fragment(避免Fc反应性出现的非特异染色),Cross adsorbed (抗体纯化

2、过 程交叉吸附,避免物种交叉反应带来的背景)。问题4:你确定能将重 峦叠嶂移出两山排两吗?选择合适的荧光素,明辨激发光和发射光,且不 会导致荧光背景增强,比如:FITC、PE、Cy、Alexa Fluor、DyLig ht o就算上面的问题你都能搞定,订购来了各种试剂,准备来了片子, 你就一定能染出来多重颜色?你只是迈开了万里长征的第一步而 已。因 为要得到理想的荧光实验结果,每一个步骤都需深(w 度(k mg)优(m化(罚,固定通透方法、浓度配比、抗体共孵育、抗体稀释液、封 闭条件等等。此时,有人在你发际线还没有升高,头发还乌黑浓密的时候, 在你的耳边悄悄跟你说:做多重荧光简单,有种快捷省时

3、的方法。先让你 们随意感受一下这种方法染出来的图片:接下来我们将仔细介绍该方法实 验原理和实验步骤。多重荧光免疫组化(mIHC )实验原理上述方法采用TSA技术(Tyramide Signal Amplification?,酪胺信号放大技术):简单来说,用该方 法做多重免疫荧光是利用二抗上带有的HRP (而不是直接偶联荧光素), 来催化后续添加入体系的非活性荧光素。荧光素在HRP和过氧化氢的作用下被活化,跟临近蛋白的酪氨酸残基共 价偶联,使得蛋白样品与荧光素稳定结合。然后微波处理,前一轮非共价 结合的抗体被洗掉,共价结合的荧光素还留存在样品上。再换个一抗来第 二轮孵育,周而复始。等到所有抗体孵

4、育结束,荧光素都结合好后,最后 去检测结果。由于每次体系中都只有单一抗体孵育,因此无需担心抗体 交叉反应,以及一抗二抗种属匹配问题,大大减少了实验设计时不同种属 抗体选择匹配的限制。也就是说,如果用TSA技术,同一张片子上所有 的靶标都可以选用特异性高的兔单克隆抗体。搭配同一支抗兔的HRP二 抗就可以进行实验,而且信号放大的倍数大大增强。荧光法多重免疫组 化,可同时进行五个颜色通道以上,这种情况下发射光谱会重叠,我们可 以借助多光谱成像系统来解决这个问题。这是传统间接荧光法染色和显色 法多重免疫组化所做不到的。而且还能真实反映关键蛋白的表达情况和相互之间的关系,从而极大地节约珍贵的样品使用TS

5、A技术,你需要准备:1. 严格验证的高特异性抗体:所有CST的IHC-P验证过的抗体都满足mIHC (多重荧光免疫组化)高特异性的要求。2. HRP偶联的针对一抗种属亚型特异的二抗。3. 酪胺荧光素(PerkinElmer, Thermo Fisher Scientific 等供应商)o4. 多光谱成像系统(PerkinElmer等)。四事具备,你就可以开始尝试 进行TSA的多重荧光组化染色了。好炫的mIHC结果,比如:或者:如 何做到呢?除了优质的抗体,还需要优化的实验方案和抗体配比,比如: 如何配比抗体,如何选择荧光素等。CST研发科学家利用CST的优质抗 体,在这个领域也花了很多功夫来尝

6、试,强大的研发团队目前已经将已 有方案优化到了 7色!所以荧光染色染出七色光再也不是传说,七色光 不是传说,不是传说!而且实验方案、抗体配比全部免费开放给大家, 免费开放,免费!下面容我直接带你们收获一下胜利果实吧,请看优化好 的多重荧光免疫组化(mIHC )实验操作步骤:多重荧光免疫组化(mIHC )实验操作步骤首先,我们来解读一下CST采 用的基于TSA的mIHC实验优化原则,我们以人浆液性卵巢癌的石蜡切 片样本染 PD-L1、B7-H4、FoxP3、CD8alpha 和 CK 的 mIHC 优化流程为例介绍如何优化。基本方法1.切片脱蜡、复水2.抗原修复:优化抗原修复流程,尽可能最大程度

7、 修复抗原。3.抗体浓度优化:染色前优化抗体稀释度,提高每一个靶点 的检出率和信噪比。4.染色:用SignalStain? Antibody Diluent #8112 稀释一抗,然后用对应的 SignalStain? Boost IHC Detection Reagent (HRP , Mouse) #8125 或 (HRP, Rabbit) #8114 作 为二抗孵育,使用荧光素反应染色。5.拍照分析:用Nuance?多光谱 成像系统(PerkinElmer公司)拍摄,也可使用其他多光谱成像系统如Vectra?, Mantra?等,并用配套 inForm? Tissue Finder?模式

8、识别软件进行成像分析。流程优化1.抗体稀释优化多重染色之前,先摸索单通道下每一个单抗的最佳浓度范围。以PD-L1抗体为例,通过梯度稀释抗体,测试阴性(PC-3)和阳 性(Karpas-299)样本的荧光强 度,计算信噪比(S/N )和最高荧光强度(以每细胞平均荧光强度表示)同时能满足的稀释比例/范围。图中1: 1400是荧光强度较强的情况下,信噪比可接受的最佳点。在更高的信噪比测试点中,平均荧光强度降低较明显,使得其他测试点变为次佳选择。 强烈建议在多重染色之前先进行这种单通道测试以达到最佳效果。2.抗体-荧光素匹配多重染色需要平衡待检样品中靶点峰度和各通道 信号强度。通过此步矩阵式优化尽量做

9、到:寡靶配强光,众靶配弱光。下 图中PD-L1搭配Cy3?的荧光信号最强,但信噪比低。FITC信噪比 高,但荧光强度弱。Cy5?综合来看能达到二者的平衡,因此最适合搭 配PD-L1 o 3.染色顺序优化TSA原理的多重荧光免疫组化中,由于染 料是依次共价偶联在切片上的,并需要通过加热洗去前续抗体,因此需 要确定染色顺序,以保证:A.多次加热切片不会影响后续靶点表位完整 性;B.前续偶联的荧光素能耐受后续加热过程。基于以上荧光素染色 要点,我们可以将原来确定染色顺序的排列问题=120种情况,简化成5 x 5=25优化测试方案。针对每一个抗体-荧光素匹配通道,根据以下 表格 来进行摸索:例如,分别

10、针对每一个抗体进行如下测试:第一位染 色顺序的测试中,切片PD-L1抗体孵育,Cy5?染色 前已经进行了抗 原修复加热一次;在孵育之后,再微波加热处理5次。第五位染色顺序 的测试中,切片PD-L1抗体孵育之前,微波加热5次,孵育之后,然 后再微波加热一次。这样的测试矩阵能够测定抗体、荧光素的结合能力和 稳定性。从下图结果可以看出:染色顺序越早Cy5?荧光信号越弱, 信噪比是在第1和第5位最低。信噪比最高的是将PD-L1安排在第2和 第4位。如果同时考虑其他的抗体-荧光素配对,则将PD-L1和Cy5? 安排在第2位最佳。4.构建多光谱库在多色模式下,每一靶点自身产生的荧光素信号和同一组 合中其他

11、相关荧光素产生的信号同时被收集构建一个光谱库,进行线性 分离分析。简单来讲,需要让分析软件认识多色模式中每一个荧光素的发 射光谱,从而将针对特定靶点的真实信号同其他荧光素产生的信号区分开。 并将每一个荧光素信号附以伪彩,黑色伪彩被定义为样本自发荧光,则可 以在最后图像采集和处理时将信号减掉。5.单通道和多通道信号对比为 了进一步优化和理解多通道染色对真实信号的影响,可以进行多色和单色 染色的对比。为避免处理的差异,所有的切片都进行了同样的加热和冷却 处理。从图中可以看出5色中的4色有不同程度的平均荧光强度降低, 可能的主要原因是抗原遮 蔽,即前续TSA反应干扰了后续的抗原抗 体结合。6.显色法和荧光法对比进一步比较不同原理的染色方法,确 定验证不同靶标表达范式和表达量的真实性。图中非连续切片,视野不 同。请留意箭头处的表达位置。7.多通道染色(5个靶点+核复染)此组合能够展现出肿瘤上皮细 胞(CK )、肿瘤微环境和肿瘤浸润淋巴细胞的空间关系,可以为PD-L1疗法和肿瘤免疫评分提供重要参考。结论TSA技术下多重荧光免疫组化相比传统的多重荧光而言,具有:信号放 大倍数高、简化抗体选择、易于设计优化、超多通道同时检测、全景展 示蛋白表达特征、节约样品等诸多优点。而且CST所有IHC-P验证过 的抗体都可以用在这类应用中,随着技

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