尿酸氧化酶Urate

1、背景尿酸氧化酶 （Urate Oxidase, EC1.7.3.3） ，又称尿酸酶 （ Uricase）是生物体嘌呤降解代谢途径中的一种酶，大部分生物在嘌呤的代谢过程中产生尿酸， 而尿酸酶能催化尿酸氧化为尿囊素。 许多物种中均发现有尿酸酶存在， 但在 鸟类，爬行类动物以及高等哺乳动物（灵长类包括人类 ）等生物的进化过程中，尿酸酶基因发生突变，使得在这些生物体，嘌呤不能被氧化为尿囊素， 而是以尿酸为终产物。尿酸及其盐类在水中溶解度很低,血液中过多积累会导致痛风综合症。痛风（ gout）是一组嘌呤代谢紊乱所致的疾病，其临床特 点为高尿酸血症（ hyperuricemia ）及由此而引起的痛风性急性

2、关节炎反复发 作、 痛风石沉积、 痛风石性慢性关节炎和关节畸形， 常累及肾脏引起慢性间 质性肾炎和尿酸肾结石形成。The pathway of purine metabolism目前临床上治疗痛风的主要药物是别嘌呤醇，它占领了美国95以上的治疗痛风药物的市场。 它是尿酸代谢过程中黄嘌呤氧化酶的抑制剂， 与嘌 呤代谢物竞争性抑制黄嘌呤氧化酶，使次黄嘌呤及黄嘌呤不能转化为尿酸， 从而减少尿酸的生成。 但该药的副作用也很明显， 个别病人可有发热、 过敏 性皮疹、腹痛、腹泻、白细胞及血小板减少，甚而肝功能损害等副作用。尿酸酶可以氧化尿酸为可溶性的尿囊素， 在基因工程技术发展以前， 从 微生物中提取尿酸

3、酶可用于临床诊断和治疗， 例如产朊假丝酵母。 但微生物产酶量较低 ,限制了其广泛应用。通过 DNA 重组技术高效表达酶基因是一条 提高产酶量的途径。迄今为止 ,已有多个物种的尿酸酶基因被克隆。但是，尿酸酶仍具有蛋白质类药物的共同缺点，如在胃肠道极易被蛋 白酶水解；血浆半衰期较短，需反复多次注射；并且由于大分子化合物具有 免疫原性，易产生过敏反应，同时还会因局部产生抗体而减效等， 这些缺点 限制了尿酸酶的大围的、持续的应用。尿酸氧化酶的纯化发酵菌液超声破碎盐析DEAE 离子交换SDS-PAGE实验容尿酸氧化酶的性质研究1）尿酸酶的动力学参数的测定2）尿酸酶的酸碱稳定性测定3）温度对尿酸酶稳定性的

4、影响实验一尿酸氧化酶粗酶提取实验目的学习可溶性表达蛋白质的初步分离纯化实验原理细菌工程菌胞表达主要分为两种形式， 一种是在强启动子条件下的高效 表达，由于蛋白的过度表达，使蛋白不能及时有效折叠而发生无规则卷曲， 以固体颗粒的形式堆积于胞间质中， 这就是所说的包涵体。 另外一种是间质 的可溶性表达，即可以发生正常折叠，具有生物活性。一般情况下，细菌只 要被正常破壁就可以通过离心的形式将包涵体和可溶性表达的蛋白分离开。 用一定功率的超声波处理细胞悬液， 使细胞急剧震荡破裂， 此法多适用于微 生物材料。盐析一般是指溶液中加入无机盐类而使某种物质溶解度降低而析出的 过程。蛋白质在水溶液中的溶解度是由蛋

5、白质周围亲水基团与水形成水化膜 的程度， 以及蛋白质分子带有电荷的情况决定的。 当用中性盐加入蛋白质溶 液，中性盐对水分子的亲和力大于蛋白质， 于是蛋白质分子周围的水化膜层 减弱乃至消失。同时，中性盐加入蛋白质溶液后，由于离子强度发生改变， 蛋白质表面电荷大量被中和， 更加导致蛋白溶解度降低， 使蛋白质分子之间 聚集而沉淀。三实验用品1 器材：超声破碎仪，离心机2 试剂：超声缓冲液： 0.1 mol/L，pH 8.5 Tris-Gly( 6.057g Tris ，8.0449gGly ， 定容至 500ml ，定容前调 pH 至 8.5。) 四实验方法发酵菌液 4000 rpm25 min 离

6、心，收集湿菌体，每 1 g 菌体加入 15 ml 超声缓冲液。超声机粉碎破壁，功率300 w，工作时间 5 s，间隔时间 5 s，共 90 个循环。取悬于超声缓冲液的菌体， 10000 g10 min 离心，上清加 (NH4)2SO4 至40%浓度，静置 1 h，12000 g15 min 离心，沉淀用 3 ml 0.1 mol/L 的pH 8.4 Tris-Gly 悬溶；上清加 (NH4)2SO4 至 70%浓度，静置 1h，12000 g 15 min 离心，沉淀保留。 五 实验结果1. 量得发酵菌液体积2. 量得发酵所得湿菌体重量3. 超声破碎离心后测上清 OD280 ，体积及留样 1m

7、l实验二 尿酸氧化酶柱纯化一 实验目的学习根据蛋白质所带电荷，选择离子交换树脂进行蛋白质的分离纯化。二 实验原理离子交换层析中， 基质是由带有电荷的树脂或纤维素组成。 带有正电荷 的称之阴离子交换树脂； 而带有负电荷的称之阳离子树脂。 离子交换层析可 以用于蛋白质的分离纯化。由于蛋白质也有等电点，当蛋白质处于不同的 pH 条件下， 其带电状况也不同。 阴离子交换基质结合带有负电荷的蛋白质， 所以这类蛋白质被留在柱子上， 然后通过提高洗脱液中的盐浓度等措施， 将 吸附在柱子上的蛋白质洗脱下来。 结合较弱的蛋白质首先被洗脱下来。 反之 阳离子交换基质结合带有正电荷的蛋白质， 结合的蛋白可以通过逐步

8、增加洗 脱液中的盐浓度或是提高洗脱液的 pH 值洗脱下来。Sepharose 是表示以琼脂糖为基质的胶， Sepharose Fast Flow 分的 ， ，就是在 Sepharose分别偶联上 二乙基氨乙基， 羧甲基， 三甲胺基，磺丙基，作为弱阴，弱阳，强阴，强阳四种离子交换填料。 三 实验用品1.器材：填料： DEAE-Sepharose F.F.；核酸蛋白仪；紫外分光光度计；梯度混合仪；分步收集器2.试剂： 透析液： 20 mmol/L ， pH8.5 的硼酸盐缓冲液，即 2.5747 g 硼砂与 2.0407 g 硼酸溶于 3000 ml 蒸馏水。平衡液： 20 mmol/L 硼酸盐缓

9、冲液， pH8.5。离子交换洗脱液： 0.5 mol/L NaCl ，20 mmol/L 硼酸盐缓冲液； 2 mol/L NaCl ， 20 mmol/L 硼酸盐缓冲液（ pH 均为 8.5）。三 实验方法将硫酸铵纯化后沉淀用 20ml， pH8.5 ，20 mmol/L 硼酸盐缓冲溶解，并 透析过夜。透析后测量体积，测 OD280 及留样 1ml 。配制 20 mmol/L 硼酸盐缓冲液 500 ml ，分别调节其 pH 为 8.5。采用上 述溶液平衡层析柱，上样后以 00.5 mol/LNaCl ，20 mmol/L 硼酸盐溶液进 行梯度洗脱，再以 2 mol/L NaCl 进行柱再生，

10、流速 2 ml/min ，收集尿酸酶活 力峰。四 实验结果1.记录透析后体积， OD280 2.测收集的尿酸酶活力峰的紫外吸收值，并绘制尿酸酶的洗脱曲线。实验三 尿酸氧化酶的鉴定实验目的学习通过 SDS-PAGE 鉴定蛋白质分子量及纯度实验原理聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺 （简称 Acr） 和交联剂 N， N亚甲基双丙烯酰胺（简称 Bis ）在催化剂作用下，聚合交联而成的具有网状立体结构的凝胶， 并以此为支持物进行电泳。 聚丙烯酰胺凝胶电泳可根据不同蛋白质分子所带电 荷的差异及分子大小的不同所产生的不同迁移率将蛋白质分离成若干条区带， 如 果分离纯化的样品中只含有同一种蛋白质， 蛋白质样品电泳后

11、， 就应只分离出一 条区带。 SDS 是一种阴离子表面活性剂能打断蛋白质的氢键和疏水键， 并按一定 的比例和蛋白质分子结合成复合物， 使蛋白质带负电荷的量远远超过其本身原有 的电荷，掩盖了各种蛋白分子间天然的电荷差异。因此，各种蛋白质 -SDS 复合 物在电泳时的迁移率，不再受原有电荷和分子形状的影响，而只是棒长的函数。 这种电泳方法称为 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（简称 SDS PAGE）。由于 SDS-PAGE 可设法将电泳时蛋白质电荷差异这一因素除去或减小到可以略而不 计的程度， 因此常用来鉴定蛋白质分离样品的纯化程度， 如果被鉴定的蛋白质样 品很纯，只含有一种具三级结构的蛋白质或含有相

12、同分子量亚基的具四级结构的 蛋白质，那么 SDSPAGE 后，就只出现一条蛋白质区带。 三实验用品聚丙烯酰胺储液： 29 g 丙稀酰胺， 1 g 甲叉双丙烯酰胺溶于 80 ml 蒸馏 水，定容至 100 ml 。Tris缓冲溶液 （1 mmol/L ，pH6.8，积层胶 ）：于800 ml 水中溶解 121.1 gTris 碱，用浓 HCl 调 pH 至 6.8，最后加水定容至 1 L。Tris 缓冲溶液 （1.5 mmol/L ， pH8.8，分离胶 ）：于 800ml 水中溶解 181.7 gTris 碱，用浓 HCl 调 pH 至 8.8，最后加水定容至 1 L 。5Tris- 甘氨酸电

13、泳缓冲液：在 900 ml 蒸馏水中溶解 15.1 gTris 和 94 g 甘氨酸，然后加入 50 ml 10 （ m/v ）电泳级 SDS 的贮存液，用去离子水补 至 1000 ml 。6上样缓冲液： 7 ml 4 Tris-HCl （pH6.8 ，0.28 mol/L） ，3.0 ml 甘油，1 gSDS，0.93 gDTT （或两倍摩尔浓度的巯基乙醇） ，1.2 mg 溴酚蓝。 考马斯亮蓝染色液： 90 ml 的甲醇 :水（ 1:1 ，V/V ）和 10 ml 冰乙酸混 合液中溶解 0.25 g 考马斯亮蓝 R250，过滤。脱色液： 45 ml 甲醇、 45 ml 水和 10 ml 冰

14、乙酸。四 .实验方法取待测样液适量，加入 6上样缓冲液，混匀，沸水浴加热 5 min，用于 上样。分离胶浓度为 12%，浓缩胶浓度为 5%，电压 80 V ，电泳完毕后，剥 胶，考马斯亮蓝 R250 染色，脱色至本底透明后摄片。五 实验结果根据电泳结果判断尿酸酶亚基分子质量及纯度。实验四 尿酸氧化酶的活力测定一 实验目的通过尿酸氧化酶活力测定方法的学习，了解一类酶的活力测定方法。二 实验原理酶的活力表现为催化某一反应的速度，反应速度越大，酶的活力也越大， 酶催化的反应速度可以用单位时间底物的消耗量或产物的积累量来表示。 由于酶 的催化作用和周围环境的关系十分密切，环境的温度、 pH、离子强度等

15、都对酶 的活力有很大的影响，因此测定酶活力时应该使这些条件保持恒定。酶活力的大小常以每 mg 酶蛋白每分钟所分解的底物量 （或生成的产物量） mol 数表示之。测定酶活性的方法很多，常因反应的底物和产物的性质不同可 选用不同的方法， 应用最广泛的是比色法或分光光度法。 凡反应系统中的化合物 在紫外区或可见光区有吸收峰的都可以用这种方法进行测定。 如果酶催化的是一 需氧反应，如氧化酶，则可用测压法或氧电极法。如果催化的反应系统中需要 ATP 或产生 ATP，如一些激酶； 或是有 NAD 存在， 如一些脱氢酶和氧化还原酶； 或者反应产生 H2O2 ，如一些氧化酶，这些酶的活性可以用生物发光或化学发

16、光 方法进行测定。 总之，测定酶活性的方法很多， 应根据具体情况选择合适的方法。 三 实验用品底物液： 0.001%尿酸（缓冲体系为 0.1 mol/L ，pH8.5 硼酸缓冲液）四 实验方法酶活测定反应体系均为 0.1 mol/L ，pH 8.5 硼酸缓冲液，以 0.001%尿酸 为底物， 25 反应 5 min ，每隔 30 s测一次 293 nm 处吸光值。酶活单位定 义为每分钟催化 1 mo底l 物转化为产物所需的酶量。五 实验结果绘制尿酸酶各步骤纯化后的活力回收表。实验五 尿酸氧化酶性质研究一 实验目的对尿酸酶的主要性质进行研究， 探讨影响尿酸酶活力的各种因素及尿酸酶的最佳保存条件。

17、二 实验原理酶促反应动力学（ kinetics of enzyme-catalyzed reactions ）：酶反应动力学主要研究酶催化的反应速度以及影响反应速度的各 种因素。在探讨各种因素对酶促反应速度的影响时，通常测定其初始 速度来代表酶促反应速度，即底物转化量 k+2 时， Km=k-1/k+1=Ks 。因此， Km 可以反映酶与底 物亲和力的大小，即 Km 值越小，则酶与底物的亲和力越大；反之， 则越小。 Km 可用于判断反应级数：当S100Km 时， =Vmax，反应为零级反应，即反应速度与底物浓度无关；当 0.01KmS100Km 时，反应处于零级反应和一级反应之间，为混合 级反

18、应。 Km 是酶的特征性常数： 在一定条件下， 某种酶的 Km 值是恒定 的，因而可以通过测定不同酶(特别是一组同工酶)的 Km 值，来判 断是否为不同的酶。 Km 可用来判断酶的最适底物：当酶有几种不同的底物存在时，Km 值最小者，为该酶的最适底物。 Km 可用来确定酶活性测定时所需的底物浓度：当 S=10Km 时， =91%Vmax ，为最合适的测定酶活性所需的底物浓度。 Vmax 可用于酶的转换数的计算：当酶的总浓度和最大速度已知时，可计算出酶的转换数，即单位时间每个酶分子催化底物转变为产 物的分子数。 Km 和 Vmax 的测定：主要采用 Lineweaver-Burk 双倒数作图法

19、和 Hanes 作图法。2酶浓度对反应速度的影响： 当反应系统中底物的浓度足够大时， 酶促反应速度与酶浓度成正比，即=kE。3温度对反应速度的影响：一般来说，酶促反应速度随温度的增 高而加快，但当温度增加达到某一点后，由于酶蛋白的热变性作用， 反应速度迅速下降。酶促反应速度随温度升高而达到一最大值时的温 度就称为酶的最适温度。酶的最适温度与实验条件有关，因而它不是 酶的特征性常数。低温时由于活化分子数目减少，反应速度降低，但 温度升高后，酶活性又可恢复。4 pH 对反应速度的影响：观察 pH 对酶促反应速度的影响，通 常为一钟形曲线， 即 pH 过高或过低均可导致酶催化活性的下降。 酶催 化活性最高时溶液的 pH 值就称为酶的最适 pH 。人体大多数酶的最适 pH 在 6.5 8.0 之间。酶的最适 pH 不是酶的特征性常数。 三实验用品乙酸、乙酸钠、 磷酸氢二钠、 磷酸二氢钠、 甘氨酸、