实验十二离子交换柱层析法分离蛋白质

1、实验十二 离子交换柱层析法分离蛋白质实验原理1离子交换与洗脱所谓离子交换， 是指溶液中的某一种离子与另一种靠静电力结合在惰性载体上的离子进 行可逆交换的过程， 即溶液中的离子结合到载体上而载体上的离子被替换下来。 若惰性载体 上以共价键结合着带正电荷的活性基团， 则可交换阴离子， 叫阴离子交换剂； 若以共价键结 合着带负电荷的活性基团，则可交换阳离子，叫阳离子交换剂。在一定的条件下，混合物中 不同蛋白质所带电荷的性质及电荷多少不同， 有的能与特定离子交换剂结合， 有的不能结合； 能与离子交换剂结合的蛋白质中， 结合力的大小也不一定相同， 所以，采用适当的洗脱条件， 可以对它们进行有效的分离。离

2、子交换过程可以表示如下：+ 一 一 + 一 一- RY +x t一 R X +Y（阴离子交换） + + + +- R Y +x t一 R X +Y （阳离子交换）上式中， 代表惰性载体； R 代表惰性载体上的活性基团； Y 代表平衡离子 （可替换离子 ）； x 代表蛋白质分子。样品进入离子交换柱之前，共价结合于惰性载体上的活性基团大部分处于溶剂化状态， 并吸附着平衡缓冲液中带相反电荷的离子。 蛋白质样品进入离子交换柱后， 由于分子表面一 些基团的电荷性质与交换剂上活性基团的电荷性质相反， 因而会通过静电引力结合于交换剂 上，并把其原来吸附的平衡离子取代下来。蛋白质是两性电解质， 它与离子交换剂

3、的结合力取决于分子表面能够与离子交换剂形成 静电键的数目， 而后者首先与分子所携带的电荷的数目有关， 其次与蛋白质分子的大小及电 荷排列也有一定关系， 因为它们与蛋白质分子是否易于在离子交换剂上的适当部位形成静电 键有关。 总的来说， 蛋白质分子与交换剂之间存在三种不同的结合状态： 蛋白质分子与交 换剂之间的静电键数目很多， 以致它们同时解离的机率等于零。 洗脱时， 这部分蛋白质由于 结合紧密而停留在柱顶端。 蛋白质分子与交换剂之间的静电键数目相对较少， 它们同时解 离的机率达到某一有限值 （01之间）。洗脱时，某一种蛋白质分子的静电键在某一时间里同 时解离， 随洗脱液向下移动。 蛋白质分子与

4、交换剂之间的静电键数目极少， 完全不与交换 剂结合。 处于这种状态的蛋白质分子随洗脱液的前峰移动， 呈现一个高而窄的 “穿过峰 不（ 交换峰 ”。）如果混合物中有几种蛋白质同时处于这种状态，那么它们会同时被洗脱下来，达 不到分离目的。 采用阳离子交换剂时， 带负电荷的蛋白质分子不能结合而呈 “穿过峰 ”洗脱下 来。蛋白质分子在离子交换剂上的结合状态是随着环境条件的变化而改变的。洗脱就是通过改变缓冲液离子强度或和 pH 来改变蛋白质与交换剂的结合状态， 降低其与交换剂的结合 力， 使交换上去的不同蛋白质分子以不同速度洗脱下来， 达到分离纯化的目的。 增加缓冲液 的离子强度时， 由于洗脱液中高离子

5、强度竞争性离子的存在， 与交换剂结合的蛋白质分子被 取代下来进入洗脱液中。 洗脱液中离子种类不同时， 取代能力不一样。 改变缓冲液的 pH 时， 蛋白质分子的解离度降低， 电荷减少， 从而减弱其与交换剂的结合力。 应用阴离子交换剂时 要降低pH;应用阳离子交换剂时要升高 pH。有时，同时改变两个方面的条件，有利于分离 复杂的蛋白质混合物。 在恒定的洗脱条件下， 往往难以将复杂的蛋白质混合样品有效地分离。 通常采用不断改变洗脱条件的方法，即用梯度洗脱的方法来分离蛋白质混合样品。虽然离子交换层析法分离蛋白质时，主要通过离子交换的作用，但实际上也可能存在 一些疏水吸附和分子筛作用。2离子交换剂人工合

6、成的离子交换剂由高分子的不溶性基质和许多与其共价结合的带电荷的活性基 团组成。由于活性基团的电离性质不同，而有强酸性、强碱性、弱酸性和弱碱性之分。不溶 性基质主要有树脂、纤维素、葡聚糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶和硅胶等。离子交换树脂一般只适合分离小分子物质如氨基酸等，不适合分离蛋白质等大分子物 质，一方面是因为大分子不易进入树脂紧密交联结构的内部， 另一方面是因为交联聚苯乙烯 骨架疏水性很强，用于蛋白质分离时，会出现疏水性的不可逆吸附。此外，离子交换树脂的 机械强度较差，而且树脂的体积常随着溶剂离子强度的变化发生溶胀和收缩。离子交换纤维素的种类很多， 可分为阴离子交换纤维素和阳离子交换纤维素两大类。

7、 由 于这些材料是纤维状的， 大部分活性基团分布在表面， 所以， 适合于分离蛋白质等生物大分 子。二乙基氨乙基纤维素 （DEAE 一纤维素 ）和羧甲基纤维素 （CM 一纤维素 ）分别是应用得最 广泛的阴离子交换纤维素和阳离子交换纤维素。 另外， 根据纤维素颗粒的物理结构不同， 可 分为“纤维型，和“微晶型”两大类。 微晶型”因颗粒细、比重大，能制成紧密的柱，交换容 量大，分辨率高。离子交换葡聚糖凝胶和聚丙烯酰胺凝胶具有许多优点： 不会引起被分离物质的变性或失 活；非特异性吸附很低；交换容量大（为离子交换纤维素的 34倍）；容易制成微球型，因此装柱和层析时的流速都较易控制。它的缺点是随着洗脱液的

8、离子强度和pH 的变化，床体积变化大，明显影响流速；另外，由于它的凝胶性质，有时会把大分子物质排阻在网络结构 之外。目前，用于蛋白质和多肽离子交换 HPLC 的多为以硅胶为载体的离子交换剂。以硅胶 为载体的离子交换剂的主要优点是有很好的机械强度，能耐受较高的层析柱压， 可适应广泛种类的流动相， 在含有变性剂、 有机溶剂和高离子强度的洗脱液中均能使用， 不会发生明显 的溶胀与收缩，而且可以制成各种孔径51 000 nm 的刚性填料。根据硅胶载体上键合的活性基团的不同，可分为强酸性、强碱性、弱酸性和弱碱性的离子交换剂。通常用于蛋白质与 多肽分离的强酸性阳离子交换剂联有磺酸基（一 S03H） ；强碱

9、性阴离子交换剂联有季胺碱基一 CH2N+（CH3）3;弱酸性阳离子交换剂联有羧甲基（一 CH2 C00 ，CM）;弱碱性阴离子交换剂联有二乙基氨乙基 一 CH2CH2N（CH 2CH2）2， DEAE 。强酸性和强碱性离子交换剂 的优点是流动相较大范围内的 pH 不会改变载体活性基团的带电性质，因而在酸性、中性和 碱性的流动相中均能使用。弱酸性 （CM 型）的离子交换剂宜在 pH40 的环境中使用，弱碱 性（DEAE型）的离子交换剂宜在 pH9 . 6的环境中使用。弱酸性和弱碱性离子交换剂由于对 H+和0H 一有较大的亲和力，为洗脱和再生带来了方便，对于一些吸附性能较强的蛋白质与 多肽样品采用

10、弱碱性和弱酸性的交换剂， 可以在较温和的条件下， 即较低的盐浓度和较小的 pH 改变的情况下把样品洗脱下来。这对于某些蛋白质的活性保持通常是很有意义的。以硅 胶为载体的离子交换剂可有不同颗粒孔径供选择， 大孔径的填料为相对分子质量 Mr 大的蛋 白质提供更多可交换的基团， 使每克交换剂的交换容量增大。 一般蛋白质样品应选择孔径为 30 nm的交换剂，对于相对分子质量Mr150000以上的蛋白质，应当选择孔径100nm的交换剂。3离子交换柱层析条件的选择 对于分离一个特定的蛋白质， 选择什么样的柱子、 离子交换剂和流动相等需根据具体情 况统筹考虑， 主要是根据待分离蛋白质本身的理化性质和生物学性

11、质确定。因此， 在采用离子交换层析法进行蛋白质的分离之前，应当对待分离的蛋白质的性质有所了解，如等电点、 相对分子质量、疏水性、生物活性及测定方法、溶解性、浓度、发生聚合的可能性、稳定性 以及微观不均一性等。 由于多数情况下离子交换柱层析采用梯度洗脱， 因而柱子都不需很长。 了解样品的等电点决定选用阳离子还是阴离子交换剂以及流动相的pH ;样品的相对分子质量 Mr 将决定选用多大孔径的柱填料； 疏水性强的样品则要求选用疏水吸附较小或亲水性载体的交换剂， 以防止非特异性疏水吸附； 活性测定方法可用来鉴定分离到的样品及测定回收 率；样品的溶解性在选用流动相的种类时是必须考虑的， 并依此决定是否要在

12、流动相中添加 促溶剂；根据样品的稳定性决定层析温度、流动相 pH 以及是否要在流动相中添加稳定剂； 样品的浓度和含量是选择柱体积大小和每次进样量的依据；对于那些存在微观不均一的样 品，由于它们在结构和性质上极其相似，所以在分离时要采用分辨率尽可能高的条件(如等梯度洗脱 )；对某些样品还要选用适当的样品浓度、pH 和盐浓度以防止其发生聚合。(1) 离子交换剂的选择在等电点已知的前提下，若所用缓冲液的 pH 高于等电点， 则用阴离子交换剂；反之，若所用缓冲液的 pH 低于等电点，则用阳离子交换剂；若先确定了所用 离子交换剂的类型，那么，就必须对缓冲液的 pH 作相应的调整。但在实际应用中，为了避

13、免样品处于过酸或过碱的环境，对于酸性蛋白质和多肽样品(pI8) ，通常是使其带有正电荷而采用阳 离子交换剂。 等电点未知时， 可参照电泳分析的结果。 在中性和偏碱性条件下电泳时向阳极 移动较快的物质， 同样条件下可被阴离子交换剂吸附； 向阴极移动或向阳极移动较慢的物质， 同样条件下可被阳离子交换剂吸附。 但有时有例外， 因为某一物质的层析行为， 除与分子的 净电荷有关外， 还与它的分子大小、 分子结构和电荷排列等有关。 对于等电点未知的蛋白质， 还可用阴离子交换剂和阳离子交换剂分别在较高pH(如pH 8 . 6)和较低pH(如pH 5 . 5)条件下进行离子交换实验， 观察交换吸附的情况。 如

14、果待分离的物质能被两种交换剂吸附， 则两 种离子交换剂都可用于分离，而且待分离物质与其他成分分离的机会更多。如果都不吸附， 则尽量降低样品和起始缓冲液的盐浓度， 直至几乎为零。 若发现被吸附的物质由于吸附太牢 而不易洗脱，则应选用交换当量较小或具有弱解离活性基团的离子交换剂。(2) 缓冲液的选择缓冲液离子应不影响被分离物质的活性并不干扰其测定，不影响样品 的溶解度和稳定性。如洗脱液要用 280 nm 波长检测时，缓冲液内就不能有芳香族化合物； 如要用215225 nm波长检测肽键的含量，则不能用含羧基的缓冲液。采用阳离子交换剂时， 应选用阴离子型缓冲液，如磷酸、醋酸缓冲液等。采用阴离子交换剂时

15、，应选用阳离子型缓 冲液，如 Tris 、吡啶缓冲液等。缓冲液 pH 的确定首先取决于被分离物质的等电点， 采用阳离子交换剂时应低于物质的 等电点，采用阴离子交换剂时应高于物质的等电点。同时要结合考虑被分离物质的溶解度、 稳定性和离子交换剂的活性基团的PK。用阴离子交换剂时 pH应低于其pK,用阳离子交换剂时pH应高于其pK,且应使缓冲液pH介于样品等电点和 pK之间。为了降低盐离子的竞争，起始缓冲液的浓度要尽可能的低(如 001 molL 左右)。这就需要选用其pK接近所需pH的缓冲离子，以使缓冲液具有较强的缓冲能力，避免缓冲离 子与离子交换剂作用而引起 pH 的改变。当确信样品易被吸附后，

16、可适当提高起始缓冲液的 浓度以保证一定的缓冲能力。实验材料与设备1用品与仪器 玻璃层析柱 (20 mL) ，梯度混合器，核酸蛋白检测仪，记录仪，部分收集器，接收试管、天 平，酸度计等。2试剂( 1 )蛋白质样品液：鸡卵清蛋白，pI=4 6；核糖核酸酶， pI=7 8；细胞色素 c， pI=106；胰岛素， pI=53。洗脱液 A : 0. 05 mol/L Tris H缓冲液，pH : 7. 5;洗脱液 B: 0. 05 mol /L Tris HCl 缓冲液，pH=7.5，含有 1.0mol/LNaCI.(3) DEAE 一纤维素 :0. 5 molL HCl; 0. 5 molL NaOH

17、 ;双蒸水。实验操作程序1离子交换剂的预处理称取1. 8 g DEAE 纤维素（DE52 , Whatman公司生产，6.3 mL /g）置于小砂芯漏斗中. 先在20mL 0.5 mol / LNaOH中浸泡30 min，然后用双蒸水洗至 pH=8。再用20 mL0.5 mol /L HCl 浸泡 30 min，然后水洗至 pH=4 . 0。最后用 20 mL 0 . 5 mol / L NaOH 浸泡 30 min 后水洗至 pH=8.O 。2 装柱将玻璃层析柱洗净后垂直安装于支架上，装入约 10 mL 洗脱液 A ，打开下嘴阀让缓冲 液慢慢滴出，同时，将悬浮于适量洗脱液 A 中的处理好的

18、DEAE 一纤维素一边搅动一边倒 入层析柱中， 让其自然沉降到全部加入为止。 装柱时交换剂的悬浮液最好一次倒人， 若分次 倒入，则须在再次添加之前将界面处的交换剂搅起，以保证柱床不分节。柱面要平整，柱中 无气泡。待液面离纤维素沉降面约 l cm 后，关闭下嘴阀。3 平衡连接梯度混合器，用起始缓冲液 （洗脱液A）以1. 0 mL /min的流速平衡柱子，直到流 出液 pH 与起始缓冲液的完全相同为止。4 上样揭开层析柱上盖。 打开下嘴阀， 待液面降至纤维素柱面时又关闭之。 用滴管小心将 05 mL 样品均匀地加到纤维素柱面上，打开下嘴阀，待样品液面降至与柱面平齐时又关闭之。用同样的方法加入 05 mL 起始缓冲液，让其