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文档简介

1、课题 2温度对酶活性的影响课题概述:生物体内的各项代谢,只有在酶的参与下才能迅速进行。酶的本质是蛋白质,其催化作用受温度等条件的影响。不同类酶均有其作用的最适温度,高于或低于该温度,酶的活性就会下降,直至完全遭到破坏。双氧水对大多数生物体有害,而许多生物体内都有过氧化氢酶等来分解它。过氧化氢酶H 2O2 H 2O+ O 2本实验将以酵母菌为过氧化氢酶来源,利用氧气浓度传感器来测定不同温度下该反应的速度,从而确定过氧化氢酶发挥作用的最适温度。氧气浓度传感器可测定气体中 0-27% 范围的氧气的浓度。其核心装置是一原电池,氧气分子进入其中被还原而引起电流变化,即氧气浓度决定了电流变化的大小,进而改

2、变输出电压的大小。因此通过对输出电压的测定即可确定气体中氧气的浓度。目的:1学会氧气浓度传感器的使用方法。2学会测定不同温度下酶促反应的速率,并对各速率进行比较。器材:实验材料:市售干酵母。实验仪器及用品:TI 83 Plus 图形计算器及CBL 系统、氧气浓度传感器(附配套塑料瓶 ) 、玻璃棒、温度计、 100mL 小烧杯、 50mL 量筒、小试管、刻度移液管、胶头滴管、保温杯、蒸馏水洗瓶、冰、冷水、热水、吸水纸。实验试剂: 3% H2 O2 溶液、 2%葡萄糖。步骤:一实验准备1水浴准备:保温杯(或两个烧杯间填充泡沫塑料代替之)中盛放一定量冰水或热水,分别调至05、 20 25、 3035

3、、 3540。实验期间温度计始终要悬在水中,监测温度。如有变化,及时调整。2称取0.5g 干酵母溶解在25mL2% 葡萄糖溶液中,搅拌均匀。取4 支小试管,各加入1mL 上述悬浊液,分别置于各温度水浴中5 10 分钟。二设置传感器1连接 TI 83 Plus 图形计算器、 CBL 系统。2将氧气浓度传感器与CBL 系统 CH1 通道相连。3打开 TI 83 Plus 图形计算器、 CBL 系统,按APPS ,选择“ CHEMBIO ”程序,按ENTER 。 (见图 1、 2)图1图24在“ MAIN MENU ”菜单中选择“1: SET UP PROBES”;输入传感器数量“ 1”,按 ENT

4、ER 。 (见图 3)5在“ SELECT PROBE ”菜单中选择选择“ 7: MORE PROBES ”,直至出现氧气浓度传感器。6在“ SELECT PROBE ”菜单中选择“4: OXYGEN SENSOR ”。 (见图 4)7输入通道序号“(见图 5、6)1”;在“图 3CALIBRATION”菜单中选择“图 41:USE STORE ”。8在“OXYGEN UNITS图 5”菜单中选择“图 61: PERCENT ”。 传感器设置完成后即返回“MAIN MENU”菜单。(见图7、8)图 7图 8三设置采样方式1在“2在“MAIN MENU ”菜单中选择“2: COLLECT DAT

5、ACOLLECT DATA ”菜单中选择“2:TIME GRAPH”。 (见图”,预热9)30 秒后,按ENTER 。 (见图10)图9图 103输入采样间隔时间:“ 30”秒, 按 ENTER 。输入采集数据点的点数:“16”个, 按 ENTER 。屏幕显示该次采样共需历时480 秒,按 ENTER 。 (见图 11、 12)图11图124在“ CONTINUE ”菜单中选择“1: USE TIME SETUP ”。 (见图 13)图 135输入 Y 轴(氧气百分含量 )的最小值:“ 19.0”(%),按 ENTER 。输入 Y 轴的最大值:“ 22.0” (%),按 ENTER 。输入 Y

6、 轴坐标点间隔:“ 0.5”,按 ENTER 。随后出现的屏幕上告知“按 ENTER 开始收集数据”。 (见图 14、15)图14图15四数据采集1用移液管移取3mL3% H 2O2 溶液于氧气浓度传感器附带之塑料瓶中,再加入3mL 蒸馏水后,放入35-40 水浴中温育5 分钟左右。2用滴管滴加 4 滴 35-40温度的干酵母葡萄糖溶液,略微震荡摇匀后塞上氧气浓度传感器,按 ENTER 开始收集数据。3当 CBL 显示“ DONE ”时,采样全部完成 (见图 16)。按 ENTER 即可看到氧气浓度随时间变化曲线,按 ENTER 。4在“ REPEAT”菜单中选择“ 1: NO”。 (见图 1

7、7)图 16图 175在“ MAIN MENU ”菜单中选择“ 7: QUIT ”。6取出传感器,洗净塑料瓶,吸干水分。用风扇或纸扇对传感器扇风一分钟左右以换气。五数据存储1在主界面中按2nd+LIST ,在“ NAMES ”菜单中选择“1:L1 ”;按STO;按 ALPHA+A, 按 ENTER 。此操作将L1 数组中的数据存储到A 数组中。( 见图 18、19)图18图192在主界面中按2nd+LIST ,在“ NAMES ”菜单中选择“2:L2 ”;按STO;按 ALPHA+B, 按 ENTER 。此操作将L2 数组中的数据存储到B 数组中。( 见图 20、21)图20图21六继续数据采

8、集。1按 APPS,选择“ CHEMBIO ”程序,按ENTER 。2重复三、四、五的操作步骤,可以依次测定30-35、 20-25、 0-5下过氧化氢酶催化反应的速率。实验结果及数据处理:1按 ENTER ,在“ MAIN MENU”菜单中选择“7:QUIT ”。2在主界面中按2nd+LIST ,在“ NAMES ”菜单中选择“A ”;按 STO;按2nd+LIST ,在“ NAMES ”菜单中选择“1: L1 ”, 按 ENTER 。此操作将A 数组中的数据复制到L1 数组中。 (见图 22)3在主界面中按2nd+LIST ,在“ NAMES ”菜单中选择“B ”;按 STO;按2nd+L

9、IST ,在“ NAMES ”菜单中选择“2: L2 ”, 按 ENTER 。此操作将B 数组中的数据存储到L2 数组中。 (见图 23)图22图234按 2nd+LIST ,在“ OPS”菜单中选择“ 8: SELECT( ”; 按 2nd+LIST ,在“ NAMES ”菜单中选择“ 1: L1 ”;按 ,;按 2nd+LIST ,在“ NAMES ”菜单中选择“ 2: L2 ”;按 ) ; 按 ENTER 。此操作将从 L1 、L2 数组中截取出一段。 (见图 24、25)图 24图 255截取出曲线上最近似于直线的一段,以便进行回归。按至所选取的直线的起点,按 ENTER ;按至直线终

10、点,按ENTER 。按 2nd+QUIT 。 (例:见图26、 27、28)举例如下 (起点: X =90 ,Y =19.283 ;终点: X =390 , Y =21.079)图26图27图 286按 STAT ,在“ EDIT ”菜单中选择“1: EDIT ”,可以看到截取的数据自动替换了原 L1 、 L2 中的数据。按2nd+QUIT 退出。 (例:见图29、 30)图 29图307按STAT ,在“ CACL ”菜单中选择“4:LinReg(ax + b) ”; 按 2nd+LIST,在“ NAMES”菜单中选择“1:L1 ”;按 ,;按2nd+LIST,在“ NAMES ”菜单中选择

11、“2:L2 ”。 此操作将对L1 、 L2 数组中数据进行线性回归。得到线性回归的方程为y = 0.00603x + 18.739,线性回归的相关系数r = 0.999。 (例见图31、32、33)图31图32图 338以上操作完成了对40时过氧化氢酶分解双氧水,生成氧气速率曲线的回归计算。重复 28 操作,依次完成 35, 25, 5时过氧化氢酶分解双氧水,生成氧气速率曲线的回归计算。 (例:见图 34、35)图34图35图示: 1.40下酵母菌催化双氧水分解速率曲线;2.35下酵母菌催化双氧水分解速率曲线;3.25下酵母菌催化双氧水分解速率曲线;4.5下酵母菌催化双氧水分解速率曲线。水浴温

12、度()回归直线斜率58.12010-4251.74810-3354.91110-3406.03410-3实验说明:1由于实验中总共要测得4 个温度共 8 组数据,为防止下一组数据覆盖本组数据,在每次测定完成后,必须将L1 、L2 中的时间、氧气浓度数据改名存储。2注意氧气浓度传感器只能用于测定空气中 氧气的含量,正常工作的温度范围是0 40。3氧气浓度传感器应始终垂直向下放置。思考问题:1根据实验数据说明温度是如何影响酶活力的。2哪个温度区间酶活力最大?为什么?3预测如温度继续升高(达到五六十摄氏度)酶活力将会怎样变化?拓展:1 040之间可细分为多个区间( 如每 5一档细分为8 个温度区间 ) ,测定各温度下反应速度,详细研究随温度变化而变化的情况, 找出过氧化氢酶作用的最适温度。2酶的浓度对其分解底物的效率会有何影响。设计实验,

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