木质纤维素的酶解最新

1、木质纤维素的酶水解Biological conversion of cellulosic biomass to fuels and chemicals offers the high yields to products vital to economic success and the potential for very low costs. En zymatic hydrolysis that conv erts lig no cellulosic biomass to ferme ntable sugars may be the most complex step in this pr

2、ocess due to substrate-related and en zyme-related effects and their in teracti ons. Although en zymatic hydrolysis offers the pote ntial for higher yields, higher selectivity, lower en ergy costs and milder operat ing con diti ons than chemical processes, the mecha nism of en zymatic hydrolysis and

3、 the relati on ship between the substrate structure and function of various glycosyl hydrolase comp onents is not well un derstood. Con seque ntly, limited success has bee n realized in maximizing sugar yields at very low cost. This review highlights literature on the impact of key substrate and en

4、zyme features that in flue nee performa nee, to better un dersta nd fun dame ntal strategies to adva nee en zymatic hydrolysis of cellulosic biomass for biological conversion to fuels and chemicals. Topics are summarized from a practical point of view in cludi ng characteristics of cellulose (e.g.,

5、crystalli ni ty, degree of polymerizati on and accessible surface area) and soluble and in soluble biomass comp onents (e.g., oligomeric xyla n and lig nin) released in pretreatme nt, and their effects on the effectiveness of enzymatic hydrolysis. We further discuss the diversity, stability and acti

6、vity of in dividual en zymes and their syn ergistic effects in dec on struct ing complex lig no cellulosic biomass. Adva need tech no logies to discover and characterize novel enzymes and to improve enzyme characteristics by mutage nesis, post-tra nslatio nal modificati on and over-expressi on of se

7、lected en zymes and modificati ons in lig no cellulosic biomass are also discussed.基于酶水解技术基础上的纤维素乙醇生产技术是 20世纪80年代生物质技术 的主要研究领域，自从20世纪70年代 能源危机”之后，美国能源部一直积极支 持规模以上乙醇生产，并建立独立部门用于管理和支持这项工作。 虽然通过纤维素酶水解纤维素生物质产生的生物燃料和化学产品提供了更高的收益率， 较高的 选择性，降低能源成本以及相对化学过程更温和的操作条件等， 但是这种技术在 那个时代依然被判定为高风险行业 1 。然而新兴生物技术为纤维素乙醇

8、生产成 本降低并使其更具有竞争性提供了重要的保证。 改进的稀酸预处理方法和二战时 期发现的纤维素酶生产菌 Trichoderma reesei 是 20 世纪 80 年代纤维素乙醇历史 性成本降低的主要原因2-4。Rutgers University通过经典突变技术和菌种选育获 得了来源于野生型 T. reesei QM9414 的著名纤维素生产菌株 Trichoderma reesei Rut305。杰能科公司的纤维素酶150 L非常高效是因为&葡萄糖苷酶的水平大 幅提高6，501。最近宣布糖苷水解酶成本显着改善多达20至 307,8 。值得注意的是自然环境中大多数的细菌和真菌具有生产生物质

9、水解酶的能 力。纤维素相关微生物进化形成了具有完全降解能力的微生物个体以及作为某些 微生物群落中生物质水解反应链中某一环节的微生物个体。 通过这些微生物分泌 的纤维素酶被分类为糖苷水解酶（GHs），其中也包括某些具有木素修饰能力的 酶。酶和微生物的结合在不同的生物质水解生态系统中是动态变化的， 这依赖于 初始的生物质资源和环境影响因子。 通过已有的生物技术， 发现以及改良新的酶 资源，并使这些酶具有新的特性就具有了更大的潜力， 这些特性包括平衡协同基 础上更高的特异活性， 更好的热稳定性， 更好的抗抑制能力以及改进的多种组合 （如纤维素酶， 半纤维素酶， 果胶酶以及蛋白酶） 酶活性以获得低成本

10、前提下的 高产量的复合糖。不幸的是，纤维素乙醇生产技术尚未被商业化的部分原因至少是因为从具有 天然生物结构屏障的纤维素材料中释放糖具有极大的困难 9,10。其结果是水解 时需要大量的酶制剂，根据每 g经过预处理的纤维素通常需要使用15 FPU剂量纤维素酶实现经济的糖产量换算，相当于制成1L的生物乙醇需要大约30g纤维素酶。图 1 说明了酶蛋白的生产成本（美元 /千克酶）和包括所需要所有酶种类 情况下必须用于乙醇的成本关系（美元 /加仑的乙醇），这一数据包括不同的酶达 到同样乙醇产量所需要的成本（数据来源于国家可再生能源实验室报告的数据） 11。因此，为了实现预期的生物乙醇成本目标（ $0.10

11、/加仑或更低），美国能源 部计划将酶的成本控制在低于$ 2/kg，并大幅削减产量高所需的酶负荷即提高酶的效率或者两种战略并行实施12-14。此外，酶水解机制以及限制水解效率的因 素还不清楚，这也使许多的商业应用因此受到了一定的限制15。提高对生物质及其水解酶的结构和功能的认识将对确定影响木质纤维素生物质转化和生物 预处理，水解以及酶对生物质转化中的作用以及制定适当的策略以实现高糖得率 和低酶用量起到重要的作用。o .Q..43.2.1q 1.1.l1.1,1.0.00.o.00.Cost of protein, USs pen kg of prot

12、Figure K Cost of cellulase for ethanol production versus cost of protein at different I。话din孚* that 阂II achieve the sime ethanol yield,D100 倍）被证明是与较高的无定形 区比例相关的 35,39,50-55。许多实验结果显示酶的吸附作用,包括整个糖苷水 解酶系统,纤维素结合结构域（ CBM ）以及单一的酶组分都随着纤维素结晶度 的提高而下降。最近，Joeh和同事发现结晶度极大地影响了 Cel7A （CBHI ）吸 附,导致水解程度的下降 55。 Hall 和

13、同事发现初始酶水解率随结晶度下降而上 升，而吸附酶浓度保持恒定 42。此外，不同纤维素酶组分已被证明有不同的吸 附电能力和纤维素酶活性50,51。纤维素内切酶（EGI）是一种用于进攻并优先 吸附在无定形区纤维素的酶， 似乎具有相同的吸附能力， 并且在两类纤维素的研 究中活性大大高于 CBHI 。类似的模式在丁， 徐56的研究中也存在。 此外， Banka 和 Mishra 发现在瑞氏木霉中结晶度上升将导致一种非水解蛋白质的结合能力提 高，这种蛋白质命名为纤维形成蛋白 57。这样的结果表明纤维素的结晶度对非 水解酶组分具有重要影响，它可以有效的影响纤维素酶水解。纤维素结晶度不仅仅影响纤维素酶的吸

14、附， 同时还影响了纤维素酶组分的吸 附效率。文献报道纤维素的结晶度影响了纤维素酶的协同42,51,58 -66。Hoshino等发现瑞氏木霉中 EGII 和 CBH1 之间协同作用将随着结晶度的上升而增加，最 高的协同作用出现在结晶度达到约 1.0 时。在另外一项研究中， Igarashi 和同事 发现天然结晶纤维素聚合区影响CBHI的水解能力67-69。另外Mizutani70和Gama 以及 Mota 71 展示表面活性剂对纯纤维素糖化过程的增加是通过影响结 晶度实现的。一些研究针对纤维素酶水解过程和结晶度之间的关系开展。 瑞氏木霉酶系中 的主要酶 CBHI 的酶解过程受到结晶度的影响。

15、通过对纤维二糖和葡萄糖比例关 系间接反应的酶解过程的粗略估计发现，细菌纤维素和无定性纤维素分别有 23 和14个纤维二糖单元形成72。在另一项研究中，CBHI from T. reesei酶解过程 分别是 88 10, 42 10 and 34 2.0 二糖单元分别对应于细菌纤维素( CrI 88)， BMCC(CrI 92)以及内切酶处理过的纤维素(unknown Crl)73。目前还需要更多 的证据证明结晶度对酶水解过程和酶效率的影响。聚合度一些研究和文献讨论在不溶性和可溶性纤维素中改变 DP 后，底物被一套完 整的纤维素酶或纯化的酶组分水解的影响 43,44,51,52,74-80。然而

16、，对纤维素链 长度对水解过程的影响了解仍然有限。 Sinistyn 等研究表明通过 G -辐照降低棉 绒聚合度的同时保持结晶度不变时对水解速率的影响可以忽略不计 35。 Zhang and Lynd 81的动力学研究发现降低聚合度导致的水解速率的提高要大大小于 增加B糖苷键可及度所产生的水解速率提高的效果。在不溶性纤维素中Nidetzky等82发现随着聚合度的提高纤维寡糖被 CBH1 水解的初始速率逐渐提高，到纤 维六糖之后基本保持不变 82 。类似的报道在 CBHII 和 EGI 作用于纤维糊精时也 被发现51。此外据报道&葡萄糖苷酶的活性会随着 DP降低而减少83,84。然 而并没有可靠的

17、结果证明不溶性底物聚合度在纤维素酶催化效率方面的影响， 除 了较高的 DP 可能会导致更高 CBHI 和 EGI 65,81,85,86之间的协同作用之外。 此外，纤维素的聚合度可能影响了酶水解进程的反应数，在短链上的全过程的 CBHI 水解可能是不准确的 61。目前仅仅获得极少的数据证明聚合度影响了纤 维素酶的吸附。 Kaplan 等证明随着某些开环棉花纤维素 DP 降低而导致的减少水 解会使纤维素酶的吸附显著下降，然而这一过程中结晶度没有受到影响 87。考 虑到 CBHI 在全酶系中占有的巨大比例( 65%)以及它的偏好性 82,88-91可以 快速得出结论 DP 的降低快速提高水解速率的

18、原因是产生大量可供 CBHI 结合的 末端，因此提供了一种通过降低 DP 的方法提高酶水解效率和产率的方法。纤维素酶可接触的表面纤维素酶接触纤维素的能力受限于纳米层次的纤维素微纤丝结构（图2）。纤维素链之间的交联以及微纤丝被大量的基质多糖和木质素包被的结构赋予天 然细胞壁额外的结构抗性，然而同时也使纤维素酶的降解变得更加复杂92 。虽然在纤维素纯化和制备中结构经过大量修饰， 但是细胞壁微纤丝的直径仍然保持 在 3-5 纳米的水平上，与初始状态相同，但是这些微纤丝的长度被降低到几百纳 米（图 2）。纤维素酶的可及度受到两个因素控制和影响，首先是纤维素酶可以 接触到的微晶纤维素的表面， 也就是 C

19、BHI 的碳水化合物结合模块只能够接触到 具有亲水特性的纤维素面 93-95 。第二个限制因素是植物细胞壁的解剖结构， 这种结构也可以影响纤维素酶的可及度， 尤其是植物细胞壁中出现的允许纤维素 酶进入植物细胞组织并接触到微纤丝的那些孔洞。 预处理的重要影响之一就是可 以扩大这些孔的尺度并促进纤维素酶进入生物质。基于纤维素酶水解反应是一种表面反应的前提， 纤维素酶可攻击的纤维素表 面应该是对纤维素酶解最有影响的生物质结构特性， 这一特性会影响纤维素酶对 纤维素表面的吸附以及随后的纤维素酶的水解过程 16，96-101。许多论文讨论 了在这种背景下可用的孔体积和比表面积 51,44。可及度也可以与

20、其他底物结构 因素相联系，如纤维素的结晶度和聚合度等。然而一些研究证明孔洞体积 44,101-105和纤维素颗粒大小 37,103,106-108也会影响纤维素水解。 尽管如此， 由于一些细菌纤维素酶如多酶复合体纤维小体具有100倍于真菌纤维素酶的尺寸，但却表现出高于真菌纤维素酶的水解效率， 这样看来微孔的作用就不那么重 要了 50，109。此外根据观察，纤维素酶组分并没有渗透到微孔中110，微孔体积与降解能力并没有任何关系 111 。颗粒大小对纤维素酶吸附 112-114和水 解47，115的影响极小，但是随着纤维素片段化的加速伴随的小颗粒纤维素的 形成的影响则不能排除。相反，它表明较大的颗

21、粒可以抑制有效的水解 116 。 另一方面，各种DP和结晶度对酶解效率影响的研究表明预处理底物的酶解效率 不能轻易地根据DP或结晶度差异来预测37, 117，这可能是由于真实纤维素的 底物的结构复杂性导致的。 然而， 纤维素酶可及度可以提供一个有用的视角， 并 帮助人们确定预处理的方法，并通过研究确定并改善预处理方法。纤维素反应以及酶功能的转换全酶法水解实验中酶的水解效率大大降低，同时单位数量的酶在水解过程中 可水解生成的可发酵多糖的产量也大幅降低，而且长时间的低效水解不能简单地 通过产物抑制作用来解释。这一过程的机制还不清楚 118119。除了酶相关的因素，如纤维素酶的热稳定性120-123

22、，产物抑制120,124-128，酶失活125,129-135,酶降速/停止136外，底物相关因子包括底物转变成不易被水解 的形式137以及底物结构的异质性137, 138也与这种现象有关。之前对于反应 速率降低的解释是底物中更易于被水解的部分具有被优先利用的可能137，但是另一方面，一些报道得出的结论是底物的反应性并不主要由长时间驻留需要纤维素良好的转化导致136Oh.13 RlB-iFtfll5 h15h0Figure 3. Features of solids resulting from interrupted hydrolysis of Avicel cellulose. 匚ryst

23、allinity index by x-ray diffractometer and atomic force microscopy for interrupted hydrolysis samples atO, 1, 2, (4L S and 15 h.目前通过利用 中断”和 重新启动”实验以确定控制纤维素水解的影响因素 136-141。重启实验利用蛋白酶移除纤维素酶，之后添加蛋白酶抑制因子用于在纤维素在初始条件下重新开始水解之前解除蛋白酶活性，通过这种技术可用于了 解纤维素水解动力学过程中反应能力丧失的原因142。吸附于Avicel之上的酶的水解速率在进行这种重启实验后保持不变， 但是连续

24、的水解速率下降。 因此纤 维素连续水解过程中水解速率的降低不能归结于底物反应特性的变化， 同时其他 酶相关影响，如酶降速是被阻拦或者人为干扰可用于解释这一现象142，143。利用这种酶重启方法， CrI 纤维素的纤维素转换在 5小时内缓慢增加到 80%144。 中断实验的 AFM 成像显示随着酶解的进行， Avicel 的表面变得光滑和平坦（图 3）。新的“重启”方法使获得酶水解过程中酶和纤维素之间的动态相互作用信息变 得更容易。不溶物分布纤维素，半纤维素和木质素是植物细胞壁的主要聚合物， 任何影响这些组分 结构的修饰或去除过程都可能会影响酶的水解效率。 然而，实验结果产生了巨大 的差异。Gr

25、ohma nr等人和其他研究者的研究结果显示去除半纤维素与纤维素的 葡萄糖产量之间存在直接关系 111,145-150，但其他研究并不支持去除半纤维素 能够改变纤维素水解速率的结论 151-154。同样，关于木质素去除能否提高纤维 素水解速率的讨论也产生了截然不同的结果相 102,155-157。所有植物细胞壁结 构及成分在预处理过程中都会被不同程度的改变， 根据所使用的技术和条件， 通 过微纤丝改变， 移除半纤维素， 修饰或者移除木质素， 或者其他影响底物结构的 因素来推断这些因素能够影响酶解效率都是不准确的。半纤维素半纤维素的去除能够显著的提高纤维素的水解速率， 这一结果暗示半纤维素 是阻

26、碍纤维素酶水解的关键屏障 157。同时预处理过程中的木质素改变会严重 影响半纤维素的作用 102，155，158，159。从更实用的角度出发，虽然液氨气 爆过程中可能会使半纤维素发生一定的程度的修饰，但是像液氨气爆（AFEX）等预处理过程仍然可以在不去除具有影响作用含量的半纤维素的前提下产生大 量易降解的纤维素 160-162。之前的研究极少考虑底物乙酰化程度。 在多种类型 的生物质中半纤维素都被大范围的进行乙酰化修饰， 根据报道去乙酰化将能够使 纤维素的水解效率提高 3 倍以上，不同的报道中对去乙酰化程度影响酶水解速率 的提高存在一定的差异 163，164。一项研究表明当去乙酰化程度达到 7

27、5时，这种影响似乎就变得不那么重要了， 而另一项研究显示完全移除切除半纤维素将 能够持续提高纤维素的水解效率 156，165。 Grohmann 和同事发现移除白杨木 和麦秸中的乙酰酯使其的降解效率提高了5至7倍。Kong等观察了在保留木质素和聚糖的前提下，白杨木中乙酰去除程度对纤维素消化能力的影响 165。 Zhang和Holtzapple应用上述类似的方法进行研究但结果表明，去除乙酰键对提 高降解效率的影响要小于结晶度和/或木质素去除166。此外，Weimer等人的研 究认为木聚糖和纤维素的紧密联系并不抑制聚糖的生物降解性 167。移除半纤 维素的同时也移除乙酰基将会改变脱离的木质素的形式

28、， 这将使确定何种因素影 响了水解能力的提高变得困难。 不幸的是， 半纤维素的去除或者多糖网络的破坏 目前仍被看做是可以增强降解效率的生物质预处理手段，并进一步的进行着讨 论。这些研究使我们相信， 即使将纤维素变得完全可及， 这些纤维素酶也无法有 效的水解纤维素， 除非包括半纤维素和乙酰化作用的复杂的生物质组分组成的网 络被破坏168-170。Jeoh和他的同事通过对荧光标记的 CBHI分子对纤维素接触 能力的观测发现在去除木聚糖后，这种水解能力有了一定提高55, 171。Pan等认为纸浆中的乙酰基团可能会通过阻碍键的形成影响纤维素酶接触纤维素， 这可 能是由于纤维素直径的增加以及变化的疏水性

29、所致 168。然而目前并没有足够 的证据证明通过去除半纤维素和去乙酰化能够影响纤维素酶的吸附。 另外最近的 研究结果表明木寡糖是纤维素酶的强抑制剂， 在水解过程中的大量释放将降低水 解效率，在预处理中移除它们是十分必要的 172， 173。脱乙酰化可能会间接地 影响纤维素酶水解生物质的效率， 因为移除乙酰基以及其他取代基团之后可能会 提高木聚糖被木聚糖酶水解的效率 156,174-178，并导致纤维素的降解效率的提 高179-182。因此虽然木聚糖移除的作用在增加纤维素降解的过程中是模糊的， 但是在经济效益和技术原因指导下预处理中木聚糖的移除仍具有积极的意义， 如 回收率提高的木糖生产， 降低

30、木寡糖的抑制作用以及在生物质生产中减少半纤维 素降解和相关酶应用的过程 183， 185。木质素木质素与纤维素结合在一起， 是具有优良性能的复合结构， 但同时也降低了 纤维素酶结合纤维素的能力 21 。虽然在木质素去除程度上存在差异，但多种报 道都证实木质素的移除会显著提高纤维素的水解 44，102， 157，186。木质素 种紫丁香基以及愈创木基的比例也明显影响了水解效率 187 但是木质素影响纤 维素水解的重要性仍难以确定。 最显著的闲置之一是木质素阻碍纤维素的膨胀以 及阻碍纤维素的可及 116，188，189。人们一直认为在预处理中半纤维素的去 除过程伴随着木质素的解聚以及重聚过程， 毫

31、无疑问在不同的形态下可能改变木 质素对纤维素消化的影响 117，190-192。去除木质素不经增加了纤维素的可及 度，而且增加了更多的纤维素酶作用 157 。木质素以及它们的衍生物通过价键 沉积并连接到蛋白质上 16 ，也有报道指出木质素可以吸附液体中的蛋白质 193。由此看来木质素可能通过物理和化学手段抵抗纤维素酶对纤维素的攻击。 木质素不仅影响着纤维素酶的吸附， 同时也作为一个纤维素酶的障碍， 限制水解 的作用 194。因此，木质素去除可能同时打开更多的空间用于酶和减少酶非特 异性吸附在木质素上 157 。低水平的木质素已被证明能够提高纤维素水解，这 是由于物理分离导致微纤丝接触酶的能力的

32、增强以及提高的酶活性 16,55,157。 基因改造的生物生物质中的木质素修饰将导致糖基化水平的下降， 以及可发酵糖 产量的降低 18 。我们最近的研究显示纤维素的酶水解与半纤维素和木质素的移除相关。比 如，经过多次 CAFI 不同处理的玉米秸秆显示出相同的酶解能力，虽然不同预处 理技术会使半纤维素和木质素的去除程度发生变化 21,195 。木质素在固体底物 表面的重新定位和修饰将导致最终木质素的去除程度降低 16 。虽然某些研究显 示木质素的去除和纤维素水解之间存在明显的线性关系， 另外的一些研究却证明 移除木质素对纤维素的降解并没有影响 196。比如 AFEX 预处理固体底物时， 底物中半

33、纤维素和木质素的去除非常有限， 要取得与稀酸预处理的相同结果所需 要的酶的数量很少， 稀酸处理的底物中几乎没有半纤维素残留， 同时木质素几乎 没有去除 160 。总之木质素的去除要比半纤维素的溶解更加重要，而后者可能 更多地为表征去除的木质素的含量设定了一个参照，并用于提高纤维素的降解 194.这些实验结果是我们相信木质素的修饰可以明显的提高纤维素的降解， 并且 木质素的移除提供了更多的益处 157 。移除木质素会增加纤维素的可及度，并 降低无关酶的结合，因此能够提高酶水解的结果 16 。有趣的是，最近的木质素 模块技术为打破纤维素 -木质素 -半纤维素的结构提供了新的视角，并且可以完全 释放

34、易降解的纤维素和半纤维素用于酶水解， 而不是通过去除木质素及其衍生物 实现相同的目标 16， 197。虽然这些研究认为木质素在纤维素水解过程中的影响是巨大的， 但是至今人 们对木质素在异质化生物质的酶水解过程中的作用仍然不清楚。 然而，纤维素糖 化过程开始水解之前移除木质素在技术和经济角度可能是有益的， 因为木质素将 导致许多的酶的无效结合，并抑制发酵过程 50 ，还可能在更大规模的固体装料 时产生更多的问题 198,199。目前并不了解木质素的移除或者打乱它与糖的紧密 结合是必须的。 Grabber 和他的同事证明抑制真菌水解的过程并不是木质素导致 的200。然而，木质素浓度和它与木聚糖通过

35、阿魏酸的链接将显著的影响细胞 壁的水解 201,202。木质素浓度在烟草茎细胞壁降解过程中的负影响在另一篇报 道中由Sewalt等完成203。Ooshima和他的同事观察发现高温下稀酸处理将导致木质素的收缩和聚集， 并使纤维素酶能够吸附在纤维素上 134。其他的研究也证明了这种木质素的溶 解和重新定位 204,205。最近的研究中， Selig 等解释了木质素液滴在高温稀酸 或者水处理时可能仅仅移动到表面并阻碍纤维素酶的吸附206。Yuldashev等发现棉花茎 (cellulose: 44% and lignin: 26.4%)表面的纤维素酶数量要少于粉碎的棉 花茎(cellulose: 9

36、2% and lig nin: 0.6%)，出现了一个明显的下降；然而，木质素并 不能够使游离的或者结合的酶失活207。在另一项研究中，Ishiharaa nd和同事发 现在蒸汽处理的shirakamba wood中木质素降低了酶的吸附但是并没有影响糖的 转化208 。通过氢氧化钠有限的去除麦秆的木质素会增加纤维素酶的吸附 209。 相反的，Moo ney研究了在四种不同类型的纸浆中木质素含量对纤维素吸附能力 的影响，结果证明木质素的比例并不影响纤维素酶的吸附 210。然而， Selig 和 同事发现木质素液滴沉积在纤维素上之后会与水相互作用并形成一层界面， 阻碍 纤维素酶的运动 205。同时

37、，木质素与纤维素的连接会阻碍纤维素酶的运动。 虽然木质素可能降低纤维素水解中具有活性酶的数量， 但是木质素对酶吸附的有 效性的影响还需要进一步说明。衍生的可溶性物质分布的影响人们的关注焦点是从固体生物质中移除半纤维素和木质素， 这些成分形成了 明显的物理屏障阻碍纤维素与酶的结合， 但是目前仅有极少的工作在理解可溶性 底物 （如糖，寡糖，糖降解产物以及木质素衍生物 ）在预处理过程中如何释放以及 它们的酶水解对纤维素的酶水解有何影响。 此外， 在大多数研究中， 预处理的固 体纤维素生物质被分离并被水洗来获得预处理对纤维素降解率的影响评价。 另一 方面，酶水解预处理的全部底物， 包括预处理剩余的固体

38、和液体 （至少是部分固 体）将会极大的降低成本。 即使增加水洗的步骤， 可溶性物质从预处理固体中释 放的浓度在水解时随着固体底物浓度的增加而增加。 然而，根据报道， 通过酶水 解形成的纤维素转化量会在不进行水洗时有所下降 211，预处理水解物被添加 回预处理固体 212 或者全部预处理物 （i.e., 预处理固体和水解物 ）有利于酶水解 213 -17。这些结果显示预处理水解产物对纤维素酶水解有抑制作用。研究表明预处理水解产物中的部分成分， 通常含有木质素， 来自半纤维素的 低聚糖，糖，以及木质素降解产物对纤维素酶以及微生物活动具有抑制作用 175,218-221。 Kim 等发现氨水循环处理

39、的玉米秸秆包含有木寡糖，可溶性木质 素，糖和木质素降解物，并且严重阻碍了纤维素酶和微生物的活性 222。然而， 至今为止仍然不知道其中的什么成分影响了酶的水解，或者它们是如何作用的。最近Kumar和Wyman的工作揭示木寡糖严重的抑制了纤维素酶的作用176，紧接着的另一项研究显示木寡糖的抑制作用大大高于葡萄糖和纤维二糖， 同时木寡 糖的链长越长其抑制作用越明显 175。这项研究也说明可溶性的木寡糖对纤维 素酶具有强烈的抑制作用并且这种作用那个随着浓度的提高而增加 175。同时 研究认为来自于木聚糖的可溶性产物， 包括木寡糖和木糖强烈抑制了葡聚糖的水 解，并且这种抑制作用高于木聚糖和果胶质 22

40、3。木寡糖强烈的抑制纤维素酶 在Avice I中的吸附（Shi et al., Un published Data）。其他来自于半纤维素的糖，比如 甘露糖和半乳糖可以抑制纤维素酶和禺葡萄糖苷酶224。另外的研究认为预处理 水解产物中的糖是酶水解的主要抑制剂， 而其他可溶成分， 包括乙酸， 酚类化合 物以及呋喃对纤维素酶水解有轻微的抑制作用 225。可溶性木质素衍生物不仅能够影响微生物，而且对包括纤维素酶和&葡萄糖 苷酶等酶组分也有强烈的影响226 -38。Men dels and Rees发现通过取代酚具有 一定的抑制纤维素酶的作用233。Panagiotou和Olsson试验了多种化合物（包

41、括 呋喃，酚和低分子量的酸） ，认为蚁酸可以使纤维素酶完全失活 239，是最强烈 的抑制剂。 由于试验中采用的木质素处理物是部分可溶的， 因此观察到的对纤维 素酶的抑制作用可能是由于纤维素酶吸附在部分的木质素组分以及溶解的少量 木质素上导致 226。可溶性的酚类物质，包括香兰素，紫丁香醛，反式苯乙烯 酸以及羟基苯甲酸，都是纤维素水解的抑制剂 223。在这项研究中，香草醛对 Spezyme CP和Novozyme 188混合物具有强烈的抑制作用，而羟基苯甲酸对单酶 具有强烈的抑制作用。另一方面，可溶性木质素产物（香草醛，紫丁香醛以及 4- 羟基苯甲醛）以及羧酸具有较少的纤维素酶抑制作用 221。

42、酶相关的因子酶水解纤维素的典型特征是不溶性底物被可溶性催化剂水解， 这一过程不仅 仅受不溶性底物结构特征的影响，而且酶的相关因素，包括酶资源，产物抑制， 热稳定性，协同过程中的活性平衡，比活力，非特异性结合，酶的可持续性以及 酶通用性等等。 虽然在酶的结构， 酶的分子性质， 纤维以及纤维素超分子结构等 等方面取得了一定的结果， 但是由于纤维素底物结构和酶系统的复杂性， 纤维素 水解的机制至今仍没有彻底阐明。 至今为止关于酶的相关因素已经有很多文献报 道并综述 240-243，因此我们将关注于酶资源，酶与底物的特异性结合以及酶 的有效协同等提高酶效率的领域。来自不同微生物的糖苷水解酶特征为了有效

43、的提高纤维素生物质的酶水解效率和降低成本， 利用多种技术开展 了寻找强效酶以及更好理解酶与底物之间相互作用的研究。 在完全水解生物质的 过程中需要不同的酶类，比如纤维素酶，半纤维素酶，脱枝酶，酚醛酸酯酶以及 木质素酶 244。然而目前位置还不清楚糖苷水解酶以及他们相关连的酶、蛋白 质功能在降解木质生物质时的作用。 多种微生物包括细菌， 真菌能够生产多种多 样的糖苷水解酶用于生物质转化和降解。 在自然界中， 生物质通过不同微生物的 多种酶组分共同作用完成降解， 这些微生物来自于特殊群落， 如白蚁消化道， 牛 瘤胃以及极端环境中。 这些厌氧或者好氧菌群落可能只有细菌， 真菌或者二者都 存在 245

44、。可用于生产糖苷酶的微生物及其特性列于表 1。这些微生物由不同的环境位分离得到， 根据他们的生长环境加以分类。 糖苷 水解酶有多种不同的性质，比如通常环境下的热，酸，碱的耐受度等。根据他们Table 1. Selected bacterial and fungal strains for glycosyl hydrase production.NameEnzymes typesRef.Bacteria (aerobic)Addothermus cellulolyticusNC/HCTBacillus sp.NC/HCM/AT(376Bacillus pu mil usNC/HCM/AT377.

45、378Bacillus substilisNC/HCM/T(379)Bacillus agaradhaerens JAM-KU023NC/HCT/A380Brevibocillus sp. strain JXLNC/HCT381Cellulomonas flavigenaNC/HCT/AT|382Cellulomonas fimiNC/HCM273.383Geobadllus thermoleovoransNC/HCT/AT384Paenibacillus campinasensis BL11NC/HCT(385Paenibocillus strain B39NCT【386)Streptomy

46、ces sp.NC/HCM/TThermcactinomyces sp.NC/HCT388Thermcmonospora curvataNC/HCT(389Thermc monospora fuscaNC/HCT390Bacteria (anaerobic)Acetivibrio cellulolyticusCellulosome/NCM(391Bactercides cellulosolvensCellulosomeM267Clostridium acetobutylicumCellulosomeM(392Clostrium cellulolyticumCellulosome/NCM(393

47、Clostrium cellulovoransCellulosome/NCM【394Clostrium josuiCellulosomeM(395Clostrium papyrosolvensCellulosomeM3%)Clostrium thermocellumCellulosome/NCT246RuminccoccusalbusCellulosomeM1397)Ruminccoccus flavefadensCellulosomeM398Filamentous fungi (aerobic)Acremanium cellulolyticusNC/HCM(399Acrophialophor

48、a nainianaHC/HCM1400Aspergillus acculeatusNC/HCM(401.402)Aspergillus fumigatusNC/HCM/T403Aspergillus nigerNC/HCM404Aspergillus oryzaeNC/HCM1405Fusarium solaniNC/HCM【406Humicda grisea var. thermoideaNC/HCT407lrpexla:teusNC/HC/LNM408Penicillium funmiculosumNC/HCM409Penicilltum atrovenetumNC/HCT(410Penicillium citrinumNC/HCM【411Phanerochaete chrysosporiumNC