【精选】ATP荧光法在乳制品行业的应用研究报告

1、-1 -ATP荧光法在乳制品行业的应用研究报告 II现如今，食品安全问题已经引起社会大众的广泛关注。其中，特别是奶制品的食 品安全现状令人堪忧。纯牛奶中的各种营养物质含量丰富，适合微生物生长，故在 牛奶生产中细菌学检验是确保食品安全的重要环节。在社会节奏越来越快的今天， 对于牛奶制品中的检测效率和要求也有所提升，而传统的平板菌落计数法虽然精确 度较高，但是其存在操作繁琐且耗时较长等缺点，可能导致商品的上架时间延长， 给企业带来一定的经济损失。所以，寻求效率更高和精确度更好的检测方法成了当 务之急。ATP生物荧光法以其操作简便、灵敏度较高等优点从众多的快速检测方法 中脱颖而出。ATP生物荧光法是

2、以活细胞中的 ATP总含量和活细胞数能成较好线性关系为原理进行的检测方法。ATP荧光计数检测并绘ATP荧光法适用于不同ATP生物荧光检测仪测本课题以ATP生物荧光检测仪对含菌量不同的奶样品进行 制相应曲线，由于荧光值大小和活菌总数成线性关系，说明 含菌量的检测。采用稀释等方法对液态牛奶进行预处理，用 出预处理后的样品不同稀释度的发光值，不同稀释度对应的样品用传统的平板菌落计数法做2-3个平行计数。然后，作出菌数和荧光值的对应曲线作为牛奶样品微生物菌数检测的曲线，观察二者之间的相关性。当相关系数达到0.98以上的时候，证明ATP荧光计数检测法可以代替传统平板菌落计数法，应用于液态牛奶微生物活性

3、快速检测切实可行，在工业上可直接应用，缩短牛奶制品的微生物检测周期。关键词：ATP生物发光法快速检测平板菌落计数法相关性摘要IAbstract II绪论5研究思路6研究方案6 TOC o 1-5 h z 2.1牛奶原液总菌数的检测6 2.1.1牛奶原液总菌数检测的目的62.1.2牛奶原液总菌数检测的步骤62.1.3结果分析82.2牛奶原液加菌后总菌数的测定82.2.1牛奶原液加菌后总菌数测定的目的82.2.2牛奶原液加菌后总菌数测定的步骤8-2.2.3结果分析9ATP荧光法预处理方法的选择10ATP荧光法预处理方法选择的目的10ATP荧光法预处理方法选择的步骤102.3.3结果分析11ATP荧

4、光法稀释液的选择142.4.1 ATP荧光法稀释液选择的目的14 -iii242 ATP荧光法稀释液选择的步骤14243结果分析15ATP荧光法和平板菌落计数法之间的对应关系182.5.1得到ATP荧光法和平板菌落计数法对应关系的目的192.5.2得到ATP荧光法和平板菌落计数法对应关系的步骤192.5.3结果分析25结论21关于ATP荧光法在乳制品行业的应用展望22致谢22参考文献25附录一27附录二27附录三27IV- -绪论细菌总数作为判定食品被细菌污染程度的标记，具有重要的卫生学意义。液态生物 制品如液态牛奶、低酒精度饮料酒等出厂前都需要经过食品卫生微生物学检验，达 到相应的国标要求才

5、能进入市场。食品细菌学检验通常采用琼脂平板菌落计数法， 该方法是根据每个活菌都可生长为一个菌落的原理设计，这种方法精度高，但是操 作过程一般需要2-3的时间甚至更长，检验结果往往滞后。众所周知，许多食品在 生产当天就必须出售，因此急需即时性的细菌学检验方法。近年来，国外普遍采用 HACCP （食品制造过程中卫生管理认证）制度，更迫切需要在食品制造过程中能快 速、简便检测食品生产环境清洁度和食品是否达到卫生标准的方法。ATP生物荧光法作为一种简便、快速的微生物检验方法，近年来在国外备受瞩目，并得以广泛应 用。ATP作为生物代谢的能量来源，是微生物不可缺少的物质。如果捡样中污染了微 生物，用有机溶

6、剂等专用试剂破菌后，ATP就被释放出，利用ATP生物荧光法即可 测出ATP的含量。由于活的微生物体内的 ATP浓度基本稳定，使得ATP浓度与活 的微生物之间存在线性关系，故 ATP含量可以成为活的微生物的检测指标。本课题以巴氏灭菌奶为检测对象，进行琼脂平板计数和ATP荧光法两种微生物检测方法，然后将两种方法的结果进行比较，得到二者之间的相关性，探索如何对 牛奶进行预处理才可以使得 ATP生物荧光法代替传统的平板菌落计数法进行牛奶中 总菌数的测定。由于捡样中游离ATP的存在，所以我们应该探索最优的预处理方法， 尽量减少游离ATP以及其他杂质对检测结果的干扰，然后得到传统平板菌落计数法和ATP生物

7、荧光法的较高相关性，绘制标准曲线，可直接将ATP生物荧光法应用于 牛奶中微生物活性的快速检测，缩短微生物的检测周期研究思路将现有的牛奶样品浓度梯度稀释后采用传统的平板菌落计数法进行计数，并用ATP生物荧光检测仪测出不同浓度的牛奶样液的荧光值，即可做出活菌总数和荧光 值的对应曲线，并将其作为 ATP生物荧光检测仪检测牛奶中总菌数的标准曲线。我们在实验中使用的样品是光明优倍鲜牛奶（市面销售的巴氏灭菌奶），能在市面上出售的巴氏灭菌奶应为合格产品，那么，可能出现总菌数过少导致有传统法测出的菌落总数不准或者根本无法测出。为了避免这种情况的出现，我们在实验过程 中，人为添加大肠杆菌，提高牛奶样液中的含菌量

8、，再进行实验。纯牛奶中各类营养物质含量丰富，则有可能会影响 ATP生物荧光检测仪的检测结果，需要我们对牛奶样液进行一定的预处理；但是，我们还不清楚牛奶中的营养物 质会对检测造成何种影响。所以，我们先暂定两种预处理方法：过滤和稀释。若牛奶中的营养物质对荧光仪的检测影响较大，过滤可以除去牛奶中的大分子蛋白质, 降低营养物质对检测的影响；若牛奶中的营养物质对荧光仪的检测影响不大，那么， 采用稀释的方法，不需要复杂的预处理，简便省时。确定了预处理方案后，稀释液 的选择也需要谨慎的选择，实验室条件有限，我们暂定稀释液为无菌水和缓冲液。 在得到最优的预处理方案后，做出荧光值和菌数的对应曲线，得到相关系数。

9、研究方案2.1牛奶原液总菌数的检测2.1.1牛奶原液总菌数检测的目的为了确定市面上销售的巴氏灭菌奶的灭菌效果和之后的实验是否要采用加菌的 办法得到较好的实验结果，我们首先采用平板菌落计数法检测牛奶原液中的总菌数， 以便确定之后的实验方案。2.1.2牛奶原液总菌数检测的步骤（1）设备SPX-250型恒温培养箱；YX-4502高压灭菌锅；SW-CJ-ID型单人超净工作 台；250ml锥形瓶（2个）；玻璃试管（6只）；试管架；培养皿（18个）；小烧杯; 10 ml移液管；微量移液枪及一盒吸头；酒精灯；（2）试剂营养琼脂粉；盒装牛奶；（3）步骤培养基的配制；（详细方法见附录一）；将六只试管中均用10m

10、l移液管加入9ml的蒸馏水，用盖子盖好；18个培养皿装盒，一盒吸头用报纸包好，然后把两瓶培养基、 6只试管、2盒培养皿、一盒吸头放入高压蒸汽灭菌内灭菌（121 C, 20min）;样品的稀释待所有灭菌过的器具冷却后，用移液枪吸取吸牛奶原液1ml加入有9ml无菌水的无菌试管内，盖好盖子后将其震荡至混匀（大约 5min左右），制成1:10的样品 匀液；用1 ml微量移液枪吸取1:10样品匀液1 ml，沿管壁缓慢注于盛有9 ml稀 释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管使其混合 均匀，制成1:100的样品匀液；重复上述步骤，制备 10倍系列稀释样品匀液。每 递增稀释一次，换

11、用1次吸头；倾注法到平皿选择2个3个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），吸取1 ml样品匀 液于无菌平皿内，每个稀释度做三个平皿。同时，分别吸取 1 ml空白稀释液加入三 个无菌平皿内作空白对照；及时将15 ml20 ml冷却至46 C的平板计数琼脂培养 基倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀；培养等到培养皿内的琼脂凝固后，将平板倒置，在 37 C1 C培养箱中培养48 h 3h ；菌落计数要求用肉眼观察，必要时可以用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位（colony-forming units， CFU）表示。选取菌落数在30 CFU300 CFU之间

12、、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU的平板记录具体菌落数，大于 300 CFU的可记录为多不可计。每个 稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平 板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又 很均匀，即可计算半个平板后乘以 2,代表一个平板菌落数。当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，将每条单链作为一个菌落计数；2.1.3结果分析平板上的菌落生长状况并不理想，甚至有些平皿中并未长出菌落。具体情况见下表稀释倍数10100100010000CFU24/16/285/1/70/1/00

13、/0/0计算得，总菌数=2.2 102CFU /ml ；结论：部分平皿并未长出菌落，并且长出菌落的平皿都未达到计数要求，这证明巴氏灭菌奶中总菌数过少，为了之后的实验结果尽可能的准确，我们需要向牛奶中 添加大肠杆菌。2.2牛奶原液加菌后总菌数的测定2.2.1牛奶原液加菌后总菌数的测定的目的为了保证样液可以用传统平板菌落计数法计数，并达到有效计数范围；这样才能 使ATP生物荧光法的计数和传统平板菌落计数法更好的对应起来。222牛奶原液加菌后总菌数的测定的步骤设备基本同2.1.2 (1)，并且在2.1.2的基础上多准备一只试管；试剂同 2.1.2( 2)；步骤按照2.1.2(3)中的方法将培养基配制

14、好，并且在五只试管中用10ml移液管加入9ml蒸馏水，并用盖子盖好；在另一只试管中用同一只10ml移液管加入10ml的蒸馏水，放入4个玻璃珠，用盖子盖好后做上标记，灭菌后用以配制菌悬液。 在最后一只试管中用10ml移液管加入8ml蒸馏水，盖上盖子后做好标记；将培养 基、装有无菌水的试管、培养皿放入高压蒸汽灭菌锅中灭菌(121 C, 20min );样品的稀释及加菌待所有火菌过的器具冷却后，将做有 10ml无菌水标记的试管取出，在保存菌种 的斜面中用接种环挑取适量的大肠杆菌置于盛有10ml无菌水的试管中，将试管放入摇床中震荡20min，使菌悬液混匀；用移液枪吸取1ml菌悬液加入做有8ml无菌水

15、标记的试管内；换一次吸头后，吸取1ml牛奶原液加入做有8ml无菌水标记的试管 内，将盖子盖好，混匀。然后将加菌的牛奶原液 10倍浓度梯度稀释，具体操作方法 参照2.1.2 (3)；倾注法到平皿选择2个3个适宜稀释度的加菌后的样品匀液，吸取 1 ml样品匀液于无菌平皿 内，每个稀释度做三个平皿。同时，分别吸取 1 ml空白稀释液加入三个无菌平皿内作空白对照；及时将15 ml20 ml冷却至46 C的平板计数琼脂培养基倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀；培养等到培养皿内的琼脂凝固后，将平板倒置，在 37 C1 C培养箱中培养48 h 3h ；菌落计数要求具体要求同2.1.2 (3)；2.2.3结果分

16、析具体结果详见表二；表二稀释倍数10100100010000100000CFU无法计数无法计数无法计数143/138/1820/34/172稀释10000倍的计数均在计数要求内，故计算得：总菌数=1.54 106CFU/ml ；结论：利用传统的方法对牛奶进行总菌数的检测耗时较长而且也不准确；传统的平板菌落计数法适合菌数较多的样液的检测；无法得知较为准确的总菌数，只能得 到平均值。2.3 ATP荧光法的预处理方法的选择2.3.1 ATP荧光法的预处理方法选择目的对牛奶进行预处理的目的是为了减少牛奶中各类营养物质对快速检测的干扰，现有两种预处理方法：过滤和稀释。过滤后需要无菌水清洗滤膜；而稀释不需

17、要特别的操作步骤，比较省时省力；我们需要找出简便同时容易操作的语出方法。232 ATP荧光法的预处理方法选择的步骤（1）设备BacTiter- Gio微生物细胞活性检测仪；YX-4502高压灭菌锅；SW-CJ-ID型单 人超净工作台；酶标仪多孔板；微量移液枪及吸头若干；玻璃试管（ 7支）；试管架; 10ml移液管；滤膜若干（0.22呵）；小烧杯；酒精灯；（2）试剂BacTiter- Glo缓冲液；BacTiter-Glo底物；盒装牛奶；（3）步骤配制好BacTiter- Glo试剂，具体方法详见附录二；取出一支试管，用10ml移液管加入10ml蒸馏水，加入4个玻璃珠，做好标记； 另取出一支试管

18、用10ml移液管加入8ml蒸馏水，加入4个玻璃珠，做好标记；剩下的 5支试管均用10ml移液管加入9ml蒸馏水；将所有盛有无菌水的试管和装有枪头的盒 子（盒子需用报纸包好）放入高压蒸汽灭菌锅中灭菌（121 C, 20min ）；将酶标仪 多孔板放入SW-CJ-ID型单人超净工作台开紫外灯灭菌20min ；待火菌完的所有物品冷却后，将做有10ml无菌水标记的试管取出，在保存菌种的斜面中用接种环挑取适量的大肠杆菌置于盛有10ml无菌水的试管中，将试管放入摇床中震荡20min，使菌悬液混匀；用移液枪吸取1ml菌悬液加入做有8ml无菌水 标记的试管内；换一次吸头后，吸取1ml牛奶原液加入做有8ml无菌

19、水标记的试管内， 将盖子盖好，混匀。然后将加菌的牛奶原液和菌悬液均进行10倍浓度梯度稀释，具体操作方法参照2.1.2 （3，做8个梯度稀释；用移液器吸取配制的10倍梯度系列稀释样液各0.1 ml，置于酶标仪多空板 内，加入混合好的BacTiter-Glo 试剂0.1 ml，室温下放置5 min促进酶促反应，在 酶促反应进行的过程中放在桌面上轻微晃动，使试剂与样液混合均匀，然后进行检测；将检测完的样液超净工作台中，进行过滤，用无菌独立包装的0.22 的滤膜过滤，取出一支装有样液的试管用滤膜过滤后用多余的无菌水将滤膜洗净，从稀释倍数高到低依次过滤。将过滤后的样液再测一次荧光值；2.3.3结果分析(

20、1 )预处理选择稀释的方法牛奶原液加菌后，直接检测的结果如表三；表三稀释倍数的对数12345678第一次检测的荧光值915502883901082732632560144940261841第二次检测的荧光值906014874121065731852530148840511798平均值910758790110742322425451468.54038.51819.58后面两个数值明显不成梯度，舍去，取前六点作图，得到图一;图一y = -0.5456x+6.0789 RA2 = 0.891134稀释倍数的对数5676O数对的值光荧从上图中，可以得知，后两点的斜率与前四面明显不一致，应舍去，故取前四

21、点作图，得到图二；图二数对的值光荧稀释倍数的对数76543210- -3- -(2 )预处理选择过滤的方法将(1)中的样液过滤，发现稀释倍数为10-1000的样液可能由于牛奶里面的营养物质含量过多，将滤膜堵死，导致样液溢出或者根本无法滤过，所以只得到了几组稀释倍数较高的样液荧光值，检测的结果详见表四；表四稀释倍数的对数45678第一次检测的荧光值31743069253816553176第二次检测的荧光值30133006247217212980平均值3093.53037.5250516883078最后一个数值明显反常，舍去，取前四点作图，得到图三;图三数对的值光荧y = -0.0873X+3.8

22、799RA2 = 0.84833 012345678稀释倍数的对数从上图中得知，后两点的斜率与前三点相差较大，可以将最后一点舍去作图，得 到图四;图四数对的值光荧y = -0.0455X+3.6845RA2 = 0.81543.301234567稀释倍数的对数结论：过滤的方法操作复杂且在浓度较高的时候由于蛋白质等营养物质含量较 高，样液会溢出，也有可能在过滤后用无菌水清洗滤膜的时候存在未洗净的现象， 从而影响检测结果；而稀释的方法操作起来较为简单，省时且易上手，推广起来较 为方便；进而对比上面的图一到图四 ，不难发现，采用稀释的预处理方法后检测得 到的荧光值梯度明显，且数据相关性高，可信度高；

23、但是采用过滤的预处理方法后 检测得到的荧光值存在梯度，但是摆动幅度较大且相关性低，可信度有待验证。所 以，综上所述，预处理的方法选择稀释优于过滤。2.4 ATP荧光法稀释液的选择2.4.1选择ATP荧光法稀释液的目的翻阅相关文献可知，磷酸二氢钾缓冲液有稳定溶液中 ATP的作用，可以在检测的 时候有效抑制ATP荧光值的衰减，但同时磷酸二氢钾也会抑制反应中的荧光作用；无 菌水仅仅作为稀释介质，没有稳定ATP的作用，也不会抑制荧光作用，对比二者，选 择最优的稀释介质。242 ATP荧光法稀释液的选择步骤（1）设备BacTiter- Gio微生物细胞活性检测仪；YX-4502高压灭菌锅；SW-CJ-I

24、D型单 人超净工作台；酶标仪多孔板；微量移液枪及吸头若干；玻璃试管（ 18支）；试管 架；10ml移液管（2支）；小烧杯；酒精灯；（2）试剂BacTiter- Glo缓冲液；BacTiter-Glo底物；盒装牛奶；磷酸二氢钾缓冲液；（3）步骤配制好BacTiter- Glo试剂，具体方法详见附录二；配置好磷酸二氢钾缓冲液，具体方法详见附录三；取出一支试管，用10ml移液管加入10ml蒸馏水，加入4个玻璃珠，做好标记；另取出一支试管用新的移液管加入磷酸二氢钾缓冲液10ml ;然后另取出两支试管分别用不同的10ml移液管加入8ml蒸馏水和8ml磷酸二氢钾缓冲液，往两只试管中分 别加入4个玻璃珠，分

25、开做好标记；取剩下的7支试管均用10ml移液管加入9ml蒸馏 水；最后7支试管用10ml移液管加入9ml磷酸二氢钾缓冲液；将所有盛有无菌水的试 管和盛有枪头的盒子（盒子需用报纸包好）放入高压蒸汽灭菌锅中灭菌（121 C，20min ）；将酶标仪多孔板放入SW-CJ-ID型单人超净工作台开紫外灯灭菌20min ；待灭菌完的所有物品冷却后，将做有10ml无菌水标记和10ml缓冲液标记的两支试管取出，在保存菌种的斜面中用接种环挑取适量的大肠杆菌分别置于盛有10ml无菌水的试管和10ml缓冲液的试管中，将两支试管均放入摇床中震荡20min ,使菌悬液混匀；用移液枪吸取1ml无菌水稀释的菌悬液加入做有

26、8ml无菌水标记的试管 内；换一次吸头后，吸取1ml牛奶原液加入做有8ml无菌水标记的试管内，将盖子盖 好，混匀。然后将加菌的牛奶原液用无菌水进行10倍浓度梯度稀释，具体操作方法参照2.1.2（ 3，做8个梯度稀释；用移液枪吸取1ml由缓冲液稀释的菌悬液加入 做有8ml缓冲液标记的试管内；换一次吸头后，吸取 1ml牛奶原液加入做有8ml缓冲 液标记的试管内，将盖子盖好，震荡混匀。然后将加菌的牛奶原液用缓冲液进行10倍浓度梯度稀释，具体操作方法与用无菌水进行的浓度梯度稀释的操作一样；用移液器吸取配制的10倍梯度系列稀释样液各0.1 ml，置于酶标仪多空板 内，加入混合好的BacTiter-Glo

27、 试剂0.1 ml，室温下放置5 min促进酶促反应，在 酶促反应进行的过程中放在桌面上轻微晃动，使试剂与样液混合均匀，然后进行检 测；2.4.3结果分析（1）稀释介质选择缓冲液稀释介质若选择缓冲液，牛奶原液加菌稀释后，用 ATP荧光仪检测的具体结果如 下，详见表五；表五稀释倍数的对12345678数第一次535611923305179304246289252检测的荧光值第二次检测的荧光值537991984331170318263270274平均值536801953.5318174.5311254.5279.5263取表五中的数值作图，得到图五;冬五RA2 = 0.508411115 4 3

28、2 1 数对的值光荧123456789稀释倍数的对数由图上得知，前四点与后四点的斜率明显不一致，故取前四点作图，得到图六;图六12345稀释倍数的对数5 4 3 2 1 数对的值光荧稀释介质选择无困水牛奶原液加菌用无菌水稀释后，直接检测的结果如表六;表六稀释倍数的对数12345678第一次检测的荧光值301422203720663178491768416156108248502第二次检测的荧光值311782431419973179621698015973102217963平均值306602317520318179051733216064105228232取平均值作图，得到图七;图七23456稀

29、释倍数的对数G.54.3.2H4 4 4 4 4 4 数对的值光荧从上图中，可以得知，后两点的斜率与前四面明显不一致，应舍去，故取前四点作图，得到图八；图八数对的值光荧RA2 = 0.95622345稀释倍数的对数结论：对比上面的图表可知，磷酸二氢钾的缓冲液虽然有稳定溶液中 ATP的作用,但是检测出来的效果不及无菌水；磷酸二氢钾缓冲液作为稀释液检测得到的结果数据波动较大，前四点成一定梯度，而后四点基本在一条直线上，可能由于总菌数过 少且磷酸缓冲液可抑制荧光作用才会出现这样的结果；为保证浓度梯度完整，总菌 数过少的时候仍然可以检测得到有效结果，故选择无菌水作为预处理的稀释液。2.5 ATP荧光法

30、和平板菌落计数法之间的对应关系2.5.1得到ATP荧光法和平板菌落计数法对应关系的目的得到ATP荧光法和平板菌落计数法之间对应关系的目的是为了确定标准曲线，能 在进行快速检测后得到与荧光值对应的总菌数，从而真正缩短检测所需的时间。2.5.2得到ATP荧光法和平板菌落计数法对应关系的步骤（1）设备BacTiter- Gio微生物细胞活性检测仪；YX-4502高压灭菌锅；SW-CJ-ID型单 人超净工作台；酶标仪多孔板；玻璃试管（9支）；试管架；10ml移液管；小烧杯； 酒精灯；SPX-250型恒温培养箱；250ml锥形瓶（2个）；培养皿（18个）；微量 移液枪及吸头若干；（2）试剂BacTite

31、r- Glo缓冲液；BacTiter-Glo底物；盒装牛奶；营养琼脂粉；（3）步骤配制好BacTiter- Glo试剂，具体方法详见附录二；配置好培养基，具体方法详见附录一；取出一支试管，用10ml移液管加入10ml蒸馏水，加入4个玻璃珠，做好标记； 然后另取出一支试管用10ml移液管加入8ml蒸馏水，加入4个玻璃珠，做好标记；取 剩下的7支试管均用10ml移液管加入9ml蒸馏水；将所有盛有无菌水的试管和盛有枪 头的盒子（盒子需用报纸包好）以及装有培养基的锥形瓶放入高压蒸汽灭菌锅中灭菌(121 C, 20min );将酶标仪多孔板放入SW-CJ-ID型单人超净工作台开紫外灯灭菌20min ；待

32、火菌完的所有物品冷却后，将做有10ml无菌水标记的试管取出，在保存菌种的斜面中用接种环挑取适量的大肠杆菌置于盛有10ml无菌水的试管中，将试管放入摇床中震荡20min，使菌悬液混匀；用移液枪吸取1ml菌悬液加入做有8ml无菌水 标记的试管内；换一次吸头后，吸取1ml牛奶原液加入做有8ml无菌水标记的试管内， 将盖子盖好，混匀。然后将加菌的牛奶原液和菌悬液均进行10倍浓度梯度稀释，具体操作方法参照2.1.2 (3，做8个梯度稀释；用移液器吸取配制的10倍梯度系列稀释样液各0.1 ml，置于酶标仪多空板 内，加入混合好的BacTiter-Glo 试剂0.1 ml，室温下放置5 min促进酶促反应，

33、在 酶促反应进行的过程中放在桌面上轻微晃动，使试剂与样液混合均匀，然后进行检测；检测完样液的荧光值后，选择2个3个适宜稀释度的加菌后的样品匀液，吸取1 ml样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做三个平皿。同时，分别吸取 1 ml空白 稀释液加入三个无菌平皿内作空白对照；及时将 15 ml20 ml冷却至46 C的平板 计数琼脂培养基倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀；等到培养皿内的琼脂凝固后，将平板倒置，在 37 C1 C培养箱中培养48 h3 h ；2.5.3结果分析样品匀液经过ATP荧光法，检测得到荧光值，具体结果如表七；表七稀释倍数的对数12345678第一次检测的荧光值91550288390

34、1082732632560144940261841第二次检测的荧光值906014874121065731852530148840511798平均值9107588790110742322425451468.54038.51819.5选取稀释倍数为1000-1000000用做平板菌落计数法的检测，具体结果详见表八;表八稀释倍数的对数3456平皿一无法计数无法计数34943平皿二无法计数无法计数33830平皿三无法计数无法计数35236平均值346.336.356346.3 1036.3 10计算得，总菌数3.55 10 CFU /ml ；2通过以上的计算结果可以推出得到国标法检测得到的总菌数，具体

35、结果详见表九;表九稀释倍数的对1234567数CFU355000035500035500355035535.53.55表七中最后两点明显反常，舍去后，综合表七和表九，可以得到ATP荧光法和平板菌落计数法的对应曲线，详见图九；7 6 5 4 3 2 1 数对的值光荧图九001234567总菌落数的对数结论：当预处理方法选择稀释，稀释液选择无菌水时，用ATP荧光法可以对牛奶进行快速检测，并且能和国标法得到较好的线性关系，可信度高。但是，各种牛奶中的营养物质并不尽相同，我们现有的曲线可能只适用于对光明优倍纯牛奶的检测。2.6结论ATP生物荧光法可用于纯牛奶牛奶中微生物活性的快速检测，以BacTite

36、rTM微细胞活性检测仪探索该方法的应用情况，ATP生物荧光法用于液态牛奶微生物活性的快 速检测时，对牛奶中菌含量的范围没有严格要求，能够检测出的菌体数量的上下限 范围宽泛。由于纯牛奶中的营养物质含量丰富，当选择过滤的预处理方法时，浓度较大的样 品匀液无法完全过滤，部分样品匀液会溢出，影响实验结果，而当预处理的方法选 择稀释时，能较好的解决上述问题，且数据的相关性良好。通过阅读文献得知，磷酸二氢钾缓冲液有稳定ATP的作用，但是在检测荧光值的过 程中会抑制发光作用，影响检测结果。当稀释介质选择磷酸二氢钾缓冲液的时候， ATP生物荧光法在检测菌数较少的样品匀液的时候会出现上下波动的情况，可能跟磷酸二

37、氢钾缓冲液会抑制荧光作用有关；但是当选择无菌水作为稀释介质的时候，就 不存在数据波动的情况出现。当选择无菌水作为稀释介质时，因无菌水没有稳定ATP 荧光值的作用，在加完 BacTiter- Gio缓冲液反应五分钟之后需要马上检测，否则荧 光值将会大幅度衰减，使得检测结果准确度降低。通过实验，我们可以绘制出牛奶样品的荧光值对应总菌数的标准曲线，可以作为 使其它同类型样品的微生物活性检测的标准参考曲线，使ATP荧光计数检测法用于纯牛奶中的微生物活性快速检测切实可行，在工业上可直接应用，缩短牛奶制品的 微生物检测周期。本课题绘制的标准曲线详见图十；图十0 1234总菌数的对数5677 6 5 4 3

38、 2 1 数对的值光荧3.关于ATP荧光法在乳制品行业的应用展望ATP是化学物质三磷酸腺苷的简称，存在于所有的生物体中（从微生物到高等生 物），ATP在细胞体内主要作用是提供能量。鉴于 ATP存在所有生物体中，所以通 过检测ATP可以间接的证明生物体的存在。ATP生物荧光法的基本原理是通过荧光 素酶进行ATP含量的测定，由于每个微生物体内含ATP的量是一定的，所以微生物 的个数能和ATP的总量呈现一定的线性关系。ATP荧光法的主要特征是操作简便， 灵敏度高，速度快等；这些优点使得ATP荧光法在应用和推广上较国标法更有优势。 其实，ATP生物荧光法不仅可以像课题中应用于食品安全的检测，也可以应用于食 品设备清洁度的检测，可以从源头上主动控制食品安全问题的发生，同样还可以应 用于卫生监督员工作中的应急处理等等。参考文献周均、尹建军、侯玉柱等，食品中细菌总数快速检测技术的研究进展J.食品研究与开发，2010.曹泽虹 李勇，ATP生物荧光法在食品微生物检验上的应用J.彭城职业大学学 报，2003.4