核酸分离和纯化课件

核酸的分离和纯化

1找答案？核酸分离纯化的原则是什么？为防止核酸降解需要注意什么？核酸制备基本步骤？如何鉴定核酸浓度和纯度？核酸的保存方法有哪些？2前言核酸（nucleicacid）是以核苷酸为基本组成单位的生物信息大分子。是遗传信息的携带者，是基因表达的物质基础。3主要内容1.核酸分离与纯化的原则及要求2.核酸制备的基本步骤3.核酸的鉴定和保存4.核酸提取方法简介51.核酸分离与纯化的原则及要求1.1核酸分离与纯化的一般原则(1)保持核酸分子一级结构的完整性，是核酸结构和功能研究的最基本要求。

(2)排除其他分子的污染，保证核酸的纯度。61.2核酸分离与纯化的要求(1)为保证核酸的完整性，（防止降解），在实验中应注意：尽量简化步骤，缩短提取时间，减少各种有害因素对核酸的破坏。减少化学因素对核酸的降解，pH5-9。化学因素？生物因素？物理因素？7减少物理因素对核酸的降解，主要是机械剪切力，其次是高温。机械剪切力包括强力高速的振荡、突然暴露于低渗液、样品反复冻融等。高温，如长时间的煮沸。9(2)核酸纯度的要求：非核酸生物大分子的污染降低到最低程度，如蛋白质、多糖和脂类分子；排除其它核酸分子的污染，如制备RNA时，DNA分子是污染物；去除对后续实验有影响的物质，如有机溶剂和过高浓度的金属离子。102.核酸制备的基本步骤破碎细胞提取纯化I.材料准备II.破碎细胞或包膜－内容物释放III.核酸分离IV.沉淀或吸附核酸，纯化并去除杂质

V.核酸溶解在适量缓冲液或水中11(3)高速组织捣碎机捣碎(4)超声波处理法(5)化学处理法(SDS、吐温80（油酸酯）等）(6)生化法（溶菌酶、纤维素酶等）132.2核酸分离，去除蛋白核酸与蛋白质的结合力主要是正负静电吸力(核酸与碱性蛋白的结合)、氢键和非极性的范德华力。

分离核酸最困难的是将与核酸紧密结合的蛋白质分开，同时避免核酸降解。14（1）加入SDSSDS除有破膜和抑制核酸酶的作用外，还具有使核酸从蛋白质上游离出来的功能；（2）加入浓盐溶液（如NaCl）

核酸-蛋白质加入NaCl后，破坏静电吸力，使氢键破坏，核蛋白解聚；15

(1）使用注意酚通常是透明无色的结晶，如果酚结晶呈现粉红色或黄色，表明其中含有酚的氧化产物，例如醌、二酸等。变色的酚不能用于核酸抽提实验，因为氧化物可破坏核酸的磷酸二酯键。(2）安全操作

酚腐蚀性很强，并可引起严重的灼伤，操作时应戴手套。使用酚时应注意172.3沉淀核酸重新调整核酸的浓度，起到浓缩核酸的作用；去除溶液中某些盐离子与杂质；改变核酸的溶解缓冲液。DNA纯化柱核酸提取（离心柱型）利用硅胶膜特异吸附核酸18Na+Mg2+Li+2.3.1核酸的有机溶液沉淀法当核酸溶液的pH值大于4时，核酸分子呈多聚阴离子状态。

钾、钠、镁、锂及铵根等阳离子形成的盐，通过屏蔽带负电的磷酸基团使DNA分子聚结在一起而不溶于许多有机溶剂。启示什么？19乙醇优点：对盐类沉淀少，沉淀中所含迹量乙醇易挥发除去，不影响以后实验。缺点：需要量大，一般要求低温操作。常用的有机沉淀剂21异丙醇优点：

需体积小，速度快，适于浓度低、体积大的DNA样品沉淀。一般不需低温长时间放置。缺点：易使盐类、蔗糖与DNA共沉淀．异丙醇难以挥发除去。所以，最后用70％乙醇漂洗数次。22聚乙二醇（PEG）优点：可用不同浓度的PEG选择沉淀不同相对分子质量的DNA片段。应用6000相对分子质量的PEG进行DNA沉淀时，使用浓度与DNA片段的大小成反比。注意：PEG沉淀一般需加0.5mol/L的NaCl或10mmol/L的MgCl2。232.3.2核酸沉淀的温度和时间

一般强调，核酸沉淀在低温长时间下进行。但时间过长，易导致盐与DNA共沉淀，影响以后的实验。一般使用0℃冰水，10-15min，DNA样品足可达到实验要求。253.核酸的浓度和纯度的测定3.1紫外分光光度法鉴定核酸3.2荧光光度法鉴定核酸26c．测定待测样品在230nm、260nm和280nm的OD值d．计算浓度。双链DNA样品浓度(μg/μl)=OD260×核酸稀释倍数×50/1000；RNA样品浓度(μg/μl)=OD260×核酸稀释倍数×40/1000。e．分析纯度。核酸定量仪可直接获得浓度，不用计算。小分子杂质核酸蛋白质29核酸的紫外吸收光谱超微量核酸定量仪更加方便30A：测DNA：

纯的DNA样品OD260/OD280=1.8（1.7~1.9）OD260/OD230>2.01)OD260/OD280>1.9,RNA污染。2)OD260/OD280<1.6，存在蛋白质或酚污染；3)OD260/OD230<2.0，溶液中有残存的盐和小分子杂质，如核苷酸、氨基酸等。注：可能出现既含蛋白质又含RNA的DNA溶液比值为1.8的情况。

3.1.2紫外分光光度法分析纯度31B：测RNA纯的RNA样品OD260／OD280=2.0(1.7~2.0)

OD260/OD230>2.01）OD260/OD280比值太小，蛋白质或酚的污染；2）OD260/OD280>2.0，可能被异硫氰酸胍等污染；3）OD260/OD230<2.0，表明有小分子及盐存在。323.2荧光光度法鉴定核酸

3.2.1

测定核酸含量：原理：DNA、RNA在荧光染料溴乙锭(EB)嵌入碱基平面之间后，DNA、RNA样品在紫外光激发下，可发出红色荧光，荧光强度与核酸含量成正比。使用一系列已知的不同浓度DNA溶液作标准对照，可比较出被测DNA溶液浓度。注意：此法的比较主要基于目测，是估计水平。常用的荧光染料还有:goldenview,gelred,sybrgreen…333.2.2荧光光度法鉴定核酸纯度原理：溴化乙锭(EB)等荧光染料示踪的核酸电泳结果。基因组DNARNA34核酸鉴定实际常用操作程序核酸定量仪测定浓度，OD260/OD280及OD260/OD230比值。琼脂糖电泳，UV下观察验证纯度及判断是否降解35(1)对DNA

①DNA样品溶于pH8.0的TE，4℃或-20℃保存；②长期保存样品中可加入1滴氯仿。(2)对RNA

①RNA样品溶于0.3mol/LNaAc(pH5.2)②可以沉淀形式贮于乙醇，可在-20℃中长期保存;③最常用无RNase水或高压后的DEPC水溶解RNA，冻贮于-70~-80℃。3.3核酸的保存TE：Tris-Cl,EDTA364、核酸提取方法简单介绍4.1基因组DNA的提取方法4.2质粒的提取和纯化4.3Trizol法提取总RNA374.1基因组DNA的提取方法4.1.1酚抽提法以含EDTA、SDS及RNase的裂解缓冲液裂解细胞，经蛋白酶K处理后，用pH8.0的Tris饱和酚抽提。（DNA）38原理：在正常情况下，核酸表面覆盖了一层由水分子组成的亲水薄膜，以维持其水溶性。高浓度盐离子的加入破坏了核酸表面亲水薄膜的相对有序排列，形成了疏水环境。在此环境中，核酸与硅胶膜能有效结合，而蛋白质、代谢产物和其他污染物则不能结合。特点：

不需要使用有毒的苯酚等试剂，也不需要乙醇沉淀等步骤。快速，简捷。4.1.2基因组DNA提取试剂盒（离心柱型）常用的试剂盒：Qiagen39甲酰胺解聚法：细胞裂解步骤与酚抽提法一致，但以高浓度甲酰胺裂解液裂解DNA与蛋白质复合体，再以透析除去杂质玻璃棒缠绕法：将基因组DNA沉淀缠绕于带钩玻璃棒上带出，溶于pH8.0的TE异丙醇沉淀法玻璃珠吸附法4.1.3其他的基因组DNA提取方法40裂解液+蛋白酶K裂解细胞缓冲液GB+乙醇DNA柱子吸附缓冲液GD去除蛋白漂洗液漂洗DNA两次洗脱液TE洗脱DNA离心柱型基因组DNA提取步骤41透析，沉淀，电泳，选择性沉淀4.1.4DNA样品的进一步纯化4.1.5DNA片段的回收原则：提高回收率，去除杂质污染从琼脂糖凝胶中回收：

DEAE纤维素膜插片电泳法，电泳洗脱法冷冻挤压法从聚丙烯酰胺凝胶中回收：压碎与浸泡424.2质粒的提取和纯化质粒的结构：超螺旋，半开环，线性DNA理化性质：与一般核酸相似，但抗切割和抗变性能力更强所有分离质粒DNA的方法都包括3个基本步骤：

培养细菌使质粒扩增；收集和裂解细菌；分离质粒DNA(有时还要求纯化质粒DNA，根据实验所需)。

选择哪一种方法主要取决于以下几个因素：质粒的大小、大肠杆菌菌株、裂解后用于纯化的技术和实验要求。434.2.1质粒提取原理444.2.2质粒DNA的纯化与回收纯化CsCl-EB法聚乙二醇沉淀法柱层析法回收：与基因组DNA类似454.3RNA的分离和纯化RNA易被RNase水解，RNase除细胞内还广泛存在于人的皮肤、唾液、汗液及周围的环境中RNase分子结构中的二硫键使其生物学活性非常稳定排除RNase的污染是RNA制备成功与否的关键464.3.1RNA制备的条件与环境洁净的实验室操作人员带口罩，勤换手套玻璃器皿（如匀浆器）、镊子180℃干烤8h或更长时间枪头、EP管0.1%DEPC水浸泡过夜，再高压；或直接购买无RNase的枪头和EP管冰上匀浆，4℃离心47Trizol的主要成分是苯酚。苯酚的主要作用是裂解细胞，使细胞中的蛋白，核酸物质解聚得到释放。苯酚虽可有效地变性蛋白质，但不能完全抑制RNA酶活性。Trizol中还加入了8－羟基喹啉、异硫氰酸胍、β-巯基乙醇等来抑制内源和外源RNase（RNA酶）。4.3.2Trizol法提取总RNA48Trizol法提取总RNA步骤Chloroform首选Invitrogen49Trizol法提取RNA步骤1、每50-100mg组织加入1mlTrizol，用匀浆器匀浆处理，室温放置5min，使其充分裂解。12,000rpm离心5min，弃沉淀。2、加入氯仿200微升每管，剧烈振荡15s，室温放置2-3min。12000g,4℃，离心15min3、吸取上层水相(约400微升），至另一离心管中。注：千万不要吸取中间界面；若同时提取DNA和蛋白质，则保留下层酚相存于4℃冰箱,若只提RNA，则弃下层酚相。4、每使用1mlTrizol加入0.5ml异丙醇，室温10min。12000g，4℃，10min,弃上清，RNA沉于管底。5、加入1mL75%乙醇，温和振荡离心管，