实验十呼吸运动调节与实验性急性呼吸衰竭【实验目的】1.本实验通过

实验十呼吸运动调节与实验性急性呼吸衰竭【实验目的】气胸、肺水肿、药物等影响外呼吸功能。的相应改变。【实验原理】本实验通过家兔气管狭窄，复制通气障碍所致的急性外呼吸功能障碍；通过吸入氮气或CO2/血流比例失调是引起呼吸衰竭发生的主要机制。【实验动物】家兔，体重1.5～2.0kg。【药品与器材】25％乌拉坦溶液，0.7％肝素溶液，0.l％肾上腺素，N2、CO2、3%乳酸生理盐水。兔手术台，PowerLab10T械一套，胸腔套管、动脉夹，气管插管（两侧套有橡皮管30cm长胶管，听诊器1个，天平，小软木塞4个，注射器lm1410ml20ml50ml1只，6912号针头，头皮针。【实验步骤】麻醉与固定动物家兔称重后，从耳缘静脉缓慢注入2％乌拉坦溶液5ml/k肢无阻力时，表示麻醉药量已足，仰卧位固定。气管插管颈部剪毛，正中切口，切口长约5～7cm“”过压力换能器与PowerLab10T型生物信号处理系统连接。全身肝素化耳缘静脉注射0.7％肝素溶液2ml/kg。4．颈总动脉插管在颈前部细心分离家兔两侧颈总动脉，用丝线结扎远心端血管，近心端用动脉夹夹闭。1/3的斜口，插入充满0.1%通过三通开关连接压力换能器与PowerLab10T血压（具体操作方法，可参考P66。右侧动脉插管备采血用。病理模型复制前指标的测定记录呼吸、血压曲线：观察并记录一段正常时呼吸、血压曲线。血气分析：打开颈总动脉的动脉夹，缓慢打开三通开关，弃去最先流出的2、3盖，插入i-STAT血气分析仪，进行血气分析（具体操作方法，可参考P64用生理盐水少许冲洗动脉插管，以免塑料管内血液凝固（具体操作方法，可参考P61。病理模型复制在气管插管上接一根50cm的橡皮管呼吸，观察和记录刺激前后各通道的波形变化。2/3-并观察呼吸、血压的变化。待呼吸出现明显改变和口唇黏膜发绀后，松开止血钳，等待约20min，使家兔呼吸恢复正常。通过插管灌入高浓度CO2复正常。通过插管灌入高浓度N2正常。3%1ml，观察和记录刺激前后各通道的波形变化。4－5间肌，一直到胸膜处。将胸腔套管插入胸膜腔后，加以固定。开放性气胸：当胸腔套管刺入胸膜腔后，胸膜腔与外界大气通过胸腔套管相通造成右侧开放性气胸。开放性气胸持续10～15min50ml注射器通过胸腔套管，将胸膜腔内的空气抽尽，等待约20min，待家兔呼吸恢复正常。100ml100ml造成右侧张力性气胸。观察家兔呼吸、血压的变化。当动物呼吸与血压出现明显变化肺水肿：观察并记录一段正常时呼吸、血压曲线后，以7～9ml/min速度由耳缘静脉注入生理盐水100ml/k，输完后将0.％肾上腺素1ml/k）缓慢静脉推注（操作过程见P51仍以生理盐水维持静脉通路，以便必要时重复给药。静脉给药时，要密切观察：①是否出现呼吸困难、急促，呼吸曲线有否变化。②气管内是否有粉红色泡沫样液体溢出。③肺部是否出现湿性罗音。如果，肺水肿表现不明显时，可重复使用肾上腺素，方法同上，直至出现肺水肿表现。症时，可立即从一侧颈动脉取血进行血气分析（“6（2）”方法取血样。积、颜色的改变，并切开肺观察有无泡沫样液体流出。。【注意事项】取血做血气分析时，切忌接触空气，否则影响血气分析结果。造病气胸时，应注意防止针尖对肺组织损伤。取肺时不要损伤肺组织，以免肺水肿液流出，影响肺系数的准确性。【思考题】