2023铁死亡与肝脏疾病

2023铁死亡与肝脏疾病(完整版)细胞死亡是生命活动过程中一项重要的生理或病理现象。铁死亡(ferroptosis)是新近发现的一种程序性死亡方式，在形态、生物化学、遗传学水平上，与其他类型的死亡方式如凋亡、坏死、自噬等明显不同［1］。铁死亡在多种疾病的发生发展过程中起重要作用，如帕金森病、缺血再灌注损伤、肿瘤等。近期研究［2-5］显示，在多种肝脏疾病中均发现不同程度的铁代谢紊乱和脂质过氧化物集聚等铁死亡特征，而调控铁死亡可以影响肝脏疾病进程。本文旨在总结和评价铁死亡的发生机制及在肝脏疾病中的作用与进展，为未来肝脏疾病诊疗水平的提升提供新思路。1概述1.1 铁死亡概念的提出及特征使用高通量筛选技术发现了最早的铁死亡诱导剂，erastin和ras选择性致死化合物(RSL3)。研究发现，凋亡、坏死和自噬抑制剂均不能抑制二者诱导的细胞死亡，相反，抗氧化剂和铁螯合剂可以抑制这一过程。随后证实这种细胞死亡方式与细胞内铁和自由基(ROS)有关［6-7］。2012年，Dixon等［1］将这种铁依赖性、脂质过氧化物集聚为特征的死亡方式命名为铁死亡。线粒体的变化是铁死亡的主要形态学特点，包括线粒体体积变小、膜密度增加以及线粒体减少或消失。在生化特征上，铁死亡表现为谷胱甘肽(GSH)亡发生，可以清除肝期疟疾感染［40］。3展望铁死亡是一个复杂的细胞死亡过程，其发生机制涉及多种调控因素。近年来的研究进展为铁死亡的分子机制提供了新的认识，特别是铁死亡与细胞代谢的关系，但仍存在许多关键问题尚待解决，例如，最终诱发铁死亡的分子是什么？脂质过氧化物集聚是如何引发铁死亡的？调控铁死亡的主要代谢过程如铁、氨基酸、脂质代谢是如何相互联系，最终决定细胞是生存还是铁死亡？此外，铁死亡与多种人类疾病尤其是肝脏疾病的相关性也已得到很好的证实，铁死亡的提出为解决各类肝脏疾病尤其是HCC、HCC索拉菲尼耐药等问题提供了新的研究方向和思路，但是铁死亡在多大程度上影响肝脏疾病的发生发展仍不清楚，而铁死亡在各类肝脏疾病中的作用也不尽相同，需要更加深入地了解铁死亡的分子机制及在肝脏疾病中的作用，为各类肝脏疾病提供新的治疗策略。参考文献：[1]DIXONSJ,LEMBERGKM,LAMPRECHTMR,etal.Ferroptosis:Aniron-dependentformofnonapoptoticcelldeath[J].Cell,2012,149(5):1060-1072.DOI:10.1016/j.celL2012.03.042.protectsmicefromethanol-inducedliverinjurybymitigatingferroptosis[J].AmJPathol,2020,190⑴：82-92.DOI:10.1016/j.ajpath.2O19.09.012.LIX,WANGTX,HUANGX,etal.Targetingferroptosisalleviatesmethionine-cholinedeficient(MCD)-dietinducedNASHbysuppressingliverlipotoxicity[J].LiverInt,2020,40(6):1378-1394.DOI:10.1111/liv.14428.LORINCZT,JEMNITZK,KARDONT,etal.Ferroptosisisinvolvedinacetaminopheninducedcelldeath[J].PatholOncolRes,2015,21(4):1115-1121.DOI:10.1007/s12253-015-9946-3.LOUANDREC,EZZOUKHRY乙GODINC,etal.Iron-dependentcelldeathofhepatocellularcarcinomacellsexposedtosorafenib[J].IntJCancer,2013,133(7):1732-1742.DOI:10.1002/ijc.28159.YANGWS,STOCKWELLBR.Syntheticlethalscreeningidentifiescompoundsactivatingiron-dependent,nonapoptoticcelldeathinoncogenic-RAS-harboringcancercells[J].ChemBiol,2008,15(3):234-245.DOI:10.1016/j.chembiol.2008.02.010.DOLMASzLESSNICKSL,HAHNWCZetal.Identificationofgenotype-selectiveantitumoragentsusingsyntheticlethalchemicalscreeninginengineeredhumantumorcells[J].CancerCell,2003,3(3):285-296.DOI:10.1016/s1535-6108(03)00050-3.YANGWS,SRIRAMARATNAMR,WELSCHME,etal.RegulationofferroptoticcancercelldeathbyGPX4[J].Cell,2014,156(1-2):317-331.DOI:10.1016/j.cell.2O13.12.010.JIANGL,KONN,LIT,etal.Ferroptosisasap53-mediatedactivityduringtumoursuppressiony].Nature,2015,520(7545):57-62.DOI:10.1038/nature14344.SATOM,KUSUMIRzHAMASHIMAS,etal.Theferroptosisinducererastinirreversiblyinhibitssystemxc-andsynergizeswithcisplatintoincreasecisplatin'scytotoxicityincancercells[J].SciRep,2018,8(1):968.DOI:10.1038/s41598-018-19213-4.MANCIASJD,WANGX,GYGISRetal.QuantitativeproteomicsidentifiesNCOA4asthecargoreceptormediatingferritinophagy[J],Nature,2014,509(7498):105-109.DOI:10.1038/nature13148.KAGANYE,MAOG,QUFzetaLOxidizedarachidonicandadrenicPEsnavigatecellstoferroptosis[J].NatChernBiol,2017,13(1):81-90.DOI:10.1038/nchembio.2238.BRUNIA,PEPPERAR,PAWLICKRL,etal.Ferroptosis-inducingagentscompromiseinvitrohumanisletviabilityandfunction[J].CellDeathDis,2018,9(6):595.DOI:10.1038/S41419-018-0506-0.SUNX,OUZ,CHENRzetal.Activationofthep62-Keap1-NRF2pathwayprotectsagainstferroptosisinhepatocellularcarcinomacells[J].Hepatology,2016,63(1):173-184.DOI:10.1002/hep.28251.SUNX,OU乙XIEM,etal.HSPB1asanovelregulatorofferroptoticcancercelldeath[J].Oncogene,2015,34(45):5617-5625.DOI:10.1038/onc.2015.32.DOLLS,PRONETHB,TYURINAYY,etal.ACSL4dictatesferroptosissensitivitybyshapingcellularlipidcomposition^].NatChernBiol,2017,13(1):91-98.DOI:10.1038/nchembio.2239.DIXONSJ,WINTERGE,MUSAVILS,etal.Humanhaploidcellgeneticsrevealsrolesforlipidmetabolismgenesinnonapoptoticcelldeath[J].ACSChemBiol,2015,10(7):1604-1609.DOI:10.1021/acschembio.5b00245.SHINTOKUR,TAKIGAWAY,YAMADAK,etal.Lipoxygenase-mediatedgenerationoflipidperoxidesenhancesferroptosisinducedbyerastinandRSL3[J].CancerSci,2017,108(11):2187-2194.DOI:10.1111/cas.13380.WANGH,ANBXIEE,etaLCharacterizationofferroptosisinmurinemodelsofhemochromatosis[J].Hepatology,2017,66(2):449-465.DOI:10.1002/hep.29117.DOSTALIKOVA-CIMBUROVAM,BALUSIKOVAK,KRATKAK,etaLRoleofduodenalirontransportersandhepcidininpatientswithalcoholicliverdisease[J].JCellMolMed,2014,18(9):1840-1850.DOI:10.1111/jcmm.12310.YINH,HUM,LIANGX,etal.DeletionofSIRT1fromhepatocytesinmicedisruptslipin-1signalingandaggravatesalcoholicfattyliver[J].Gastroenterology,2014,146⑶：801-811.DOI:10.1053/j.gastro.2013.11.008.ESLAMMzNEWSOMEPN,SARINSK,etal.Anewdefinitionformetabolicdysfunction-associatedfattyliverdisease:Aninternationalexpertconsensusstatement^].JHepatol,2020,73(1):202-209.DOI:10.1016/j.jhep.2020.03.039.TSURUSAKIS,TSUCHIYAY,KOUMURAT,etal.Hepaticferroptosisplaysanimportantroleasthetriggerforinitiatinginflammationinnonalcoholicsteatohepatitis[J].CellDeathDis,2019,10(6):449.DOI:10.1038/s41419-019-1678-y.ZHANGZ,YAOZ,WANGL,etal.ActivationofferritinophagyisrequiredfortheRNA-bindingproteinELAVL1/HuRtoregulateferroptosisinhepaticstellatecells[J].Autophagy,2018,14(12):2083-2103.DOI:10.1080/15548627.2018.1503146.SUIM,JIANGX,CHENJ,etal.Magnesiumisoglycyrrhizinateamelioratesliverfibrosisandhepaticstellatecellactivationbyregulatingferroptosissignalingpathway[J].BiomedPharmacother,2018,106:125-133.DOI:10.1016/j.biopha.2018.06.060.ZHANGX,SUIS,WANGL,etal.Inhibitionoftumorpropellantglutathioneperoxidase4indu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27⑴：44-54.DOI:10.1038/S41418-019-0338-1.耗竭、谷胱甘肽过氧化物酶4(GXP4)失活，脂质过氧化物集聚等。1.2铁死亡发生机制与目前已知的四种细胞死亡方式不同，铁死亡发生机制主要与铁代谢紊乱、氨基酸抗氧化系统失衡和脂质过氧化物集聚有关。当铁代谢紊乱引起细胞内游离铁增多时，铁通过芬顿反应催化产生ROS,ROS进一步促进脂质过氧化，引起脂质过氧化物集聚，诱发铁死亡。位于细胞膜的胱氨酸/谷氨酸逆转运体(systemXC-惨与GSH的合成，GPX4利用GSH为底物将脂质过氧化物还原为正常的脂质，防止脂质过氧化物集聚，抑制铁死亡发生［8］o因此，铁死亡是由GPX4清除过氧化物能力不足和/或脂质过氧化反应过强造成脂质过氧化物集聚，最终诱发细胞死亡。氨基酸抗氧化系统失衡氨基酸在铁死亡中扮演了重要角色。生理条件下，systemXC-由溶质转运家族7Ali(SLC7A11)和SLC3A2组成，将胱氨酸运输至细胞内并被还原为半胱氨酸，用于合成细胞内主要的抗氧化剂GSHOGSH是GPX4的一个必要辅因子，可将还原型GSH转化为氧化型GSH,同时还原脂质过氧化物，从而减轻氧化应激损伤［8］。Erastin、p53、索拉非尼通过抑制systemXC-和/或GSH合成间接抑制GPX4活性［9-10］而RSL3能直接抑制GPX4活性［8］,无论是间接或直接抑制GPX4，均会导致清除脂质过氧化物能力不足，细胞内脂质过氧化物集聚，诱发铁死亡。因而,systemXC-和GPX4是铁死亡氨基酸代谢中的重要调控靶点。铁代谢紊乱血液循环中的Fe3+与转铁蛋白结合并运输，通过转铁蛋白受体1进入细胞后被还原并释放到胞质的不稳定铁池(LIP)中，而多余的铁贮存在铁蛋白中。胞内LIP,主要以Fe2+的形式存在，由于Fe2+的不稳定性和高反应活性，铁通过芬顿反应产生羟自由基，可直接与细胞膜、质膜中的多不饱和脂肪酸反应，产生大量脂质ROS,导致细胞死亡。核受体辅助激活因子4作为货物受体将铁蛋白靶向运至溶酶体并进行自噬性降解，进而释放游离铁，该过程被称为铁自噬，主要负责铁的释放和回收［11］。研究⑹12］显示，增加铁蛋白降解或抑制铁蛋白表达，会增加胞内LIP,提高细胞对铁死亡的敏感性，相反，铁抑素及其衍生物、铁螯合剂通过减少细胞内铁离子含量或抑制多种催化脂质过氧化反应的含铁金属酶活性增加铁死亡抗性［13］。此外,核因子E2相关因子2(NRF2)、热休克蛋白B1等基因通过抑制转铁蛋白受体1表达，影响铁代谢进而调节细胞对铁死亡的敏感性［14-15］。总之，铁吸收增加或铁储存减少均会影响细胞对铁死亡的敏感性。脂质过氧化物集聚脂质过氧化物集聚是铁死亡的核心，脂质代谢组学显示铁死亡过程中多不饱和脂肪酸如花生四烯酸(AA)或肾上腺酸(AdA)是最容易发生氧化反应的脂质，且受三种合成酶调控。乙酰辅酶A合成酶长链家族4(ACSL4)将AA或AdA催化为花生四烯酰-辅酶A和肾上腺酰-辅酶A,然后溶血卵磷脂酰基转移酶3(LPCAT3)将其酯化为磷脂酰乙醇胺(PEs)形成AA-PE和AdA-PE,最后经脂肪氧合酶氧化为脂质过氧化物。研究［16-18］显示，敲除或抑制上述三种合成酶均可抑制铁死亡的发生发展。脂质过氧化物分解代谢生成毒性的醛类物质如4-羟基-2-壬烯醛或丙二醛，联合细胞膜、质膜上持续的氧化反应，最终造成细胞膜、质膜结构和功能不可逆破坏，导致细胞死亡［12］。2铁死亡与肝脏疾病的关系肝损伤的类型取决于损伤的性质及严重程度，尽管不同性质的肝脏疾病可以由不同原因引起，但是肝脏病变由肝炎、肝纤维化、肝硬化甚至原发性肝癌演变的病理机制是相似的。研究显示，在肝脏疾病的不同发展阶段中,均发现铁代谢紊乱、氨基酸抗氧化系统失衡和脂质过氧化物集聚等铁死亡特征，而调控铁死亡可以影响肝脏疾病进程。因此，探究铁死亡在肝脏疾病中的作用，有助于为治疗肝脏疾病提供新策略。铁死亡在肝脏炎症及纤维化中的作用遗传性血色素沉着病(HH)是遗传性系统性铁过载，铁沉积在各个器官中,通过芬顿反应产生ROS,引起氧化损伤,最终导致严重的慢性并发症，包括肝硬化、糖尿病和心脏病。HH病理特点表现为铁调素-铁转运蛋白稳态失衡，由此导致铁过载。临床前研究［19］显示，HH小鼠模型肝内铁过载可以诱发肝细胞和巨噬细胞铁死亡。酒精性肝病(ALD)是由于长期大量饮酒导致的肝脏疾病。研究［20］显示，ALD患者血清铁调素降低，而二价金属离子转运体在肠道中表达增加，导致血清中铁及铁蛋白水平增加。乙醇会破坏沉默调节蛋白1(SIRT1)的活性,Yin等［21］在比较乙醇喂养的敲除SIRT1小鼠与野生型小鼠研究中发现,敲除SIRT1会加重脂质代谢异常，促进肝脏脂质过氧化。这些特点提示ALD患者存在铁死亡的关键特征。然而，最近有研究［2］认为，肠道SIRT1失活能改善乙醇诱导的肝脏铁稳态失调，进而改善酒精性肝损伤，其认为，肠道SIRT1失活的这种肝脏保护作用与抑制铁死亡有一定关系。这与Yin等的发现相左,有关ALD肠道SIRT1与铁死亡的关系仍需进一步研究。非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)是一种与胰岛素抵抗和遗传易感密切相关的代谢应激性肝损伤。非酒精性脂肪性肝炎(NASH)是单纯性脂肪肝进展至肝硬化的中间阶段，目前尚不清楚单纯性脂肪肝向脂肪性肝炎转变的潜在机制。2020年初，由22个国家30位专家组成的国际专家小组发布的有关代谢相关脂肪性肝病(MAFLD)新定义的国际专家共识［22］,建议用"MAFLD"取代"NAFLD"。基于既往大量文献中使用NAFLD,在本文中仍然沿用此称谓。在NASH的发病机制中，脂质过氧化物集聚引起的氧化应激被认为是重要的起始因子，而代谢紊乱所致的铁沉积也被认为是NASH加重因素。因此，在NASH发病机制中可能存在铁死亡。Tsurusaki等［23］研究发现，在缺乏胆碱富含乙硫氨酸饮食小鼠模型中，应用铁死亡抑制剂可以抑制ALT、AST等肝损伤标志物和TNFaIL-6等炎症细胞因子升高,其认为铁死亡是导致单纯性脂肪肝发展为NASH的诱因。随后，Li等［3］在蛋氨酸胆碱缺乏饮食小鼠模型中发现，铁死亡特征表现包括ROS集聚、线粒体形态改变和铁死亡相关基因上调等，抑制铁死亡能减轻小鼠肝损伤、炎症反应甚至纤维化程度。肝纤维化是肝硬化的早期可逆阶段，是各种病因引起慢性肝损伤后的疤痕修复反应。其发生的中心环节是肝星状细胞(HSC)激活后导致的细胞外基质大量积累。靶向活化的HSC死亡是治疗肝纤维化的重要目标之一。Zhang等［24］研究发现，索拉非尼和erastin能靶向诱导HSC铁死亡，且这一过程与RNA结合蛋白胚胎致死性异常视觉基因1水平升高有关，进步研究发现，其能稳定自噬相关蛋白Beclin-1的表达，促进整体自噬水平，诱导核受体辅助激活因子4与铁蛋白重链结合降解铁蛋白增加LIP,诱导HSC铁死亡。血红素加氧酶1(H0-1)是细胞铁死亡的关键调控因子。异甘草酸镁可上调H0-1表达，进而促进转铁蛋白、转铁蛋白受体、铁蛋白重链过表达，铁外排泵一膜铁转运蛋白低表达，导致细胞内铁沉积，脂质过氧化物集聚，诱发HSC铁死亡，抑制肝纤维化形成［25］。因此，靶向激活铁自噬及H0-1诱导HSC铁死亡或是治疗肝纤维化的新途径。铁死亡在肝癌及索拉非尼耐药中的作用肝细胞癌(HCC)是造成全球严重疾病负担的恶性肿瘤之一，在最常见的癌症中占第六位，在癌症相关死亡中占第二位。Louandre等［5］在研究HCC索拉非尼作用机理时发现HCC与铁死亡存在密切联系。近年来，有许多关于HCC与铁死亡的相关研究，已知的铁死亡在肝癌中的调控途径有:(1)铁死亡主要受systemXC-和GPX4调控，影响systemXC-或GPX4活性能诱导肝癌细胞铁死亡［26］。常见的铁死亡诱导剂erastin及索拉非尼均能通过抑制systemXC-诱导铁死亡。Tang等［27］将索拉非尼装载到镒硅纳米颗粒中，通过双重耗竭GSH，诱发铁死亡。(2)p53是肿瘤抑制基因，通过调控铁死亡影响HCC发生发展。1)Jiang等［9］研究发现，p53下调SLC7A11转录，影响systemXC-活性，进而诱导肝癌细胞铁死亡。2)p53上调精胺/精眯-N1-乙酰基转移酶1表达，使花生四烯酸15脂氧合酶水平升高，促进脂质过氧化物集聚,诱发铁死亡［28］。3)Gao等［29］发现铁死亡的发生需要谷氨酰胺和谷氨酰胺酶2。谷氨酰胺酶2是谷氨酰胺转化为谷氨酸的关键酶，调节GSH合成。p53上调谷氨酰胺酶2转录,其过表达抑制肿瘤细胞生长和集落形成。(3)其他的调控途径：CDGSH铁硫结构域1,一种线粒体铁输出蛋白，靶向抑制CDGSH铁硫结构域1,可以促进线粒体铁沉积和ROS生成，诱发铁死亡［30］;miRNA-214通过抑制激动转录因子4表达，抑制GSH合成，诱导肝癌细胞铁死亡［31］;抑癌基因BRCA1相关蛋白1通过抑制SLC7A11表达，诱发铁死亡［32］。总之，这些铁死亡在HCC中的分子机制均提示铁死亡在HCC的发生发展中扮演着重要角色。索拉非尼，一种多激酶抑制剂，是首个获批用于晚期H