蔡司显微镜常见故障分析 显微镜技术指标

第第页蔡司显微镜常见故障分析显微镜技术指标德国蔡司(ZEISS)做为显微镜的鼻祖——国际标准的缔造者160年来一直处于光学领域领导地位，而其它显微镜厂家一直追赶和效仿蔡司，但关键技术没有学到,使得产品不够完善，在使用过程中不可避免地出现一些故障，从而影响用户的正常工作。现就一些常见故障解析如下：1、显微镜使用一段时间图像质量下降，关机一段时间再打开图像质量就会明显好转。诊断：镜头镀膜技术不过关，长时间使用镜头受热后镀膜发散导致。2、手动调焦时图像清晰，松手后图像模糊。诊断：调焦机构老化。3、目镜观察时图像清晰，但采集到的图像却不清晰。把采集到的图像调整清晰时,目镜里观察图像又不清晰了。诊断：系统齐焦性不够，观察和采集不能同步。4、载物台下滑、平移。诊断：载物台锁定机构采用星型齿轮，长时间使用稳定性降低。5、图像中间清晰边缘模糊。诊断：球差校正不完善。

生物显微镜的使用方法与步骤一、取镜和安放1.右手握住镜臂，左手托住镜座。2.把显微镜放在实验台上，略偏左(显微镜放在距实验台边缘7厘米左右处)。安装好目镜和物镜。二、对光3.转动转换器，使低倍物镜对准通光孔(物镜的前端与载物台要保持2厘米的距离)。4.把一个较大的光圈对准通光孔。左眼注视目镜内(右眼睁开，便于以后同时画图)。转动反光镜，使光线通过通光孔反射到镜筒内。通过目镜，可以看到白亮的视野。三、观察5.把所要观察的玻片标本(也可以用印有“6”字的薄纸片制成)放在载物台上，用压片夹压住，标本要正对通光孔的中心。6.转动粗准焦螺旋，使镜筒缓缓下降，直到物镜接近玻片标本为止(眼睛看着物镜，以免物镜碰到玻片标本)。7.左眼向目镜内看，同时反方向转动粗准焦螺旋，使镜筒缓缓上升，直到看清物像为止。再略微转动细准焦螺旋，使看到的物像更加清晰。8.高倍物镜的使用：使用高倍物镜之前，必须先用低倍物镜找到观察的物象，并调到视野的正中央，然后转动转换器再换高倍镜。换用高倍镜后，视野内亮度变暗，因此一般选用较大的光圈并使用反光镜的凹面，然后调节细准焦螺旋。观看的物体数目变少，但是体积变大。四、整理8.实验完毕，把显微镜的外表擦拭干净。转动转换器，把两个物镜偏到两旁，并将镜筒缓缓下降到zui低处，反光镜竖直放置。zui后把显微镜放进镜箱里，送回原处。《注意事项》：1、严忌单手提取显微镜。2、若须移动显微镜，务必将显微镜提起再放至适当位置，严忌推动显微镜(推动时造成的震动可能会导致显微镜内部零件的松动，切记!!)，使用显微镜请务必小心轻放。3、使用显微镜时坐椅的高度应适当，观察时更应习惯两眼同时观察，且光圈及光源亮度皆应适当，否则长时间观察时极易感觉疲劳。4、转动旋转盘时务必将载物台降至zui低点，以免因操作不当而刮伤接目镜之镜头。5、标本染色或其它任何操作皆应将玻片取下，操作完成后再放回载物台观察，切勿在载物台上操作，以免染剂或其它液体流入显微镜内部或伤及镜头。6、观察完一种材料，欲更换另一种材料时，务必将载物台下降至zui低点，换好玻片后再依标准程序重新对焦，切勿直接抽换标本，以免刮伤镜头或玻片标本。7、用毕显微镜应将载物台下降至zui低点，并将低倍镜对准载物台中央圆孔处，将电源线卷好，盖上防尘罩，并收入存放柜中。激光共聚焦显微镜是在荧光显微镜成像基础上加装了激光扫描装置，利用计算机进行图像处理，把光学成像的分辨率提高了30%--40%；使用紫外或可见光激发荧光探针，从而得到细胞或组织内部微细结构的荧光图像，在亚细胞水平上观察诸如Ca2+、PH值，膜电位等生理信号及细胞形态的变化；成为形态学，分子生物学，神经科学，药理学，遗传学等领域中新一代强有力的研究工具。激光共聚焦成像系统能够用于观察各种染色、非染色和荧光标记的组织和细胞等，观察研究组织切片，细胞活体的生长发育特征，研究测定细胞内物质运输和能量转换。能够进行活体细胞中离子和PH值变化研究(RATIO)，神经递质研究，微分干涉及荧光的断层扫描，多重荧光的断层扫描及重叠；荧光光谱分析荧光各项指标定量分析荧光样品的时间延迟扫描及动态构件组织与细胞的三维动态结构构件，荧光共振能量的转移的分析；荧光原位杂交研究(FISH)，细胞骨架研究，基因定位研究，原位实时PCR产物分析，荧光漂白恢复研究(FRAP)；胞间通讯研究，蛋白质间研究，膜电位与膜流动性等研究，完成图像分析和三维重建等分析。基本原理传统的光学显微镜使用的是场光源，标本上每一点的图像都会受到邻近点的衍射或散射光的干扰；激光共聚焦显微镜利用激光束经照明针孔形成点光源对标本内焦平面的每一点扫描，标本上的被照射点；在探测针孔处成像，由探测针孔后的光点倍增管(PMT)或冷电耦器件(cCCD)逐点或逐线接收，迅速在计算机监视器屏幕上形