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文档简介

GB/T40170—2021国家市场监督管理总局国家标准化管理委员会IGB/T40170—20211GB/T40170—2021质粒抽提及检测通则及废弃物处理。本文件适用于质粒的抽提及检测。2规范性引用文件GB4789.3食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群计数GB/T19495.1转基因产品检测通用要求和定义GB/T19495.2转基因产品检测实验室技术要求GB/T27403实验室质量控制规范食品分子生物学检测GB/T34265Sanger法测序技术指南GB/T34796水溶液中核酸的浓度和纯度检测紫外分光光度法3.1细菌、酵母菌和放线菌等生物中染色体(或拟核)以外的一个或多个闭合环状的双链DNA分子。3.2核糖核酸酶ARNaseA一种催化水解核糖核酸的核糖部分3'和5'磷酸二酯键,形成具有2',3'-环一磷酸衍生物寡聚核苷3.3由亲水性的杂多糖和一个共价结合的类脂A组成的复合物。4缩略语下列缩略语适用于本文件。DNA:脱氧核糖核酸(DeoxyribonucleicAcid)2GB/T40170—2021DNase:脱氧核糖核酸酶(Deoxyribonuclease)HPLC:高效液相色谱(HighPerformanceLiquidChromatography)RNA:核糖核酸(RibonucleicAcid)5一般性原则6抽提原理因组DNA等杂质,经异丙醇或乙醇沉淀DNA,最终得到纯化质粒。7抽提方法但不限于以下因素:——小分子质量质粒可以选用相对较剧烈的方法来分离;——具有限制性核酸内切酶A的菌株建议采用酚-氯仿进行抽提;——在细菌繁殖的对数生长期中期加入氯霉素可以增加质粒的拷贝数。原理及特点见表1。表1几种质粒抽提原理及特点方法原理特点硅胶柱法高盐条件下,硅胶与DNA分子有高亲和力,低盐或双蒸水洗脱DNA适用于高通量质粒小量抽提磁珠法采用一种纳米磁珠微珠材料,该磁珠经硅羟基修饰后,DNA分子可与之发生特异性结合适用于微量样品的提取,效率高,便于自动化操作酚-氯仿法酚使蛋白质变性并抑制DNase活性,氯仿去除过量酚、利于有机相与液相分层,异丙醇具有强疏水作用,用于质粒三级结构完整,适用于高质量质粒抽提3表1(续)方法原理特点离子交换法低盐低pH条件下,DNA与离子交换剂结合,高盐高pH条件下洗脱DNA适用于大规模质粒抽提,超螺旋比例高硅胶柱法抽提操作步骤按照商业吸附柱抽提试剂盒说明书进行。磁珠吸附法抽提操作步骤按照商业磁珠法抽提试剂盒说明书进行。酚-氯仿法抽提操作步骤按照附录A进行。离子交换法抽提操作步骤按照附录B进行。8检测8.1检测项目方法。8.3检测方法按照GB/T34796执行,参考结果见附录C。4GB/T40170—2021按照GB/T34796执行,OD₂₆o/ODs0在1.8至2.0之间,OD₂so/OD₂₃0在2.0至2.5之间,琼脂糖凝采用高效液相色谱法检测质粒超螺旋比例,利用超螺旋质粒和RNA,基因组DNA碎片的疏水性质的差异,将待测样超螺旋质粒和其余DNA、RNA分离。方法、设备运行参数按照附录D执行,根据检测结果计算目标峰面积占所有峰面积的比值。参考结果见附录C。不消失。参考结果见附录C。采用鲎试剂检测法检测细菌内毒素,检测方法见中华人民共和国药典:2020年版.四部,细菌内毒素检查法。参考结果见附录C。按照GB4789.3中的大肠菌群计数-平板计数法进行,同时以涂布生理盐水平板为对照,无菌落生长。参考结果见附录C。9质量控制涉及质粒抽提及检测的技术人员应该完全了解菌种培养的相关工作,应掌握质粒检测等相关理论知识和相关试验基础。——掌握质粒分子生物学特性;——定期进行人员的测量能力考核。检测仪器应符合预期要求的性能参数和规格。仪器设备的使用应严格按照标准操作程序进行操作。主要分析设备的操作规程应制定得详细、清楚。定期对仪器设备进行检测或校准。5GB/T40170—2021检测试剂应严格按照使用方法正确使用。检测试剂的使用应具有严格的文件记录制度,包括试剂的标识、使用时间等信息。9.4实验室通用要求实验室DNA污染一般来源于气溶胶。因此,质粒抽提和检测以及实验室工作区域的组织及良好的试验操作应基于:质粒贮存于—20℃冰箱,避免反复冻融。长期保存建议放置一80℃超低温冰箱。b)总量;f)OD₂₆/OD230;i)基因组DNA残留;j)细菌检测;12废弃物处理废弃物处理按照GB/T27403和GB/T19495.2中的规定执行。6GB/T40170—2021(规范性)A.1试验试剂A.1.1葡萄糖(Glucose,C₆H₁2O₆)。A.1.2三羟甲基氨基甲烷[Tris(hydroxymethyl)methylaminomethaneTHAM,Tris,C₄H₁₁NO₃]。A.1.3盐酸(Hydrochloricacid,HCl)。A.1.5核糖核酸酶A(RNaseA)。A.1.6氢氧化钠(Sodiumhydroxide,NaOH)。A.1.7十二烷基硫酸钠(Sodiumdodecylsulfate,SDS,C2H₂5SO₄Na)。A.1.9冰醋酸(AceticAcid,CH₂COOH)。A.1.11乙醇(Ethanol,C₂H₆O)。A.1.12异丙醇(Isopropanol,C₃H₈O)。A.1.13苯酚(Phenol,C₆H₅OH)。A.1.16磁珠悬浮液(内含特异性吸附质粒的磁珠)。A.1.17溶液1(pH8.0):50mmol/L葡萄糖,25mmol/LTris-Cl,10mmol/LEDTA,100μg/mLRNaseA。A.1.18溶液2:200mmol/LNaOH,1%SDSA.1.20BufferW2:20mmol/LTris-Cl,75%乙醇。A.1.2275%乙醇溶液(C₂H₅OH)。A.2操作步骤A.2.1分步收集2mL~4mL菌液到2mL离心管中,12000r/min,离心1min,弃上清。A.2.2向离心管中加入250μL溶液1(已加入RNaseA),涡旋振荡使细胞重悬。A.2.4向离心管中加入350μL溶液3,温和翻转离心管6次~10次,此时可观察到管内出现白色絮状物,12000r/min室温离心10min。7GB/T40170—2021A.2.9小心弃去上清。8GB/T40170—2021(规范性)离子交换法B.1试验试剂B.1.1葡萄糖(Glucose,C₆H2O₆)。B.1.2三羟甲基氨基甲烷[Tris(hydroxymethyl)methylaminomethaneTHAM,Tris,C₄HNO₃]。B.1.3盐酸(Hydrochloricacid,HCl)。B.1.5核糖核酸酶A(RNaseA)。B.1.6氢氧化钠(Sodiumhydroxide,NaOH)。B.1.7十二烷基硫酸钠(Sodiumdodecylsulfate,SDS,C₁₂H₂₅SO₄Na)。B.1.8醋酸钾(Potassiumacetate,CH₃COOK)。B.1.9冰醋酸(AceticAcid,CH₃COOH)。B.1.10盐酸胍(GuanidineHydrochloride,Gu-HCI,CH₆ClN₂)。B.1.11乙醇(Ethanol,C₂H₆O)。B.1.12氯化钠(Sodiumchloride,NaCl)。B.1.133-(N-吗啉基)丙磺酸(MOPS,C₇H₁₅NO₄S)。B.1.14聚乙二醇辛基苯基醚[TritonX-100,C₁₄H₂₂O(C₂H₄O)n]。B.1.15异丙醇(Isopropanol,C₃H₈O)。B.1.16BufferP1(pH8.0):50mmol/LTris-Cl,10mmol/LEDTA,100μg/mLRNaseA。B.1.17BufferP2:200mmol/LNaOH,1%SDS。B.1.18BufferP3(pH5.5):3mol/L醋酸钾。B.1.19BufferQBT(pH7.0):750mmol/LNaCl,50mmol/LMOPS,0.15%TritonX-100。B.1.20BufferQC(pH7.0):1.0mol/LNaCl,50mmol/LMOPS,15%异丙醇。B.1.21BufferQF(pH8.5):1.25mol/LNaCl,50mmol/LMOPS,15%异丙醇。B.1.22TE溶液(pH8.0):10mmol/LTris-Cl,1mmol/LEDTA。B.2.3收集B.2.2中菌液于500mL离心B.2.4弃上清,并倒扣在吸水纸上,加入30mL,4℃预冷的BufferP1(已加入RNaseA),反复吹打沉淀直至完全混匀。B.2.5加入30mL细胞裂解液BufferP2,轻柔地上下颠倒混匀4次~6次,在室温下孵育时间不要超过5min。B.2.6加入30mL预冷的BufferP3,立即颠倒混匀6次~8次(动作要轻柔),在冰上孵育10min,4℃,8000g离心20min。B.2.7在层析柱的顶端加滤纸,沿滤纸边缘缓慢加入20mL的BufferQBT(平衡层析柱)。B.2.8将B.2.6中的上清小心移到层析柱中(不可将沉淀绕动),让液体自由流下。9B.2.9加入20mLBufferQC清洗层析柱一次。B.2.10加入20mLBufferQF洗脱DNA,准备对应的50mL的离心管分别收集洗脱液。B.2.15重复B.2.14。GB/T40170—2021(资料性)质粒检测参数及参考结果质粒检测参数及参考结果见表C.1。表C.1质粒检测参数及参考结果一览表检测项目参考结果液体外观肉眼观察清澈、透明序列验证与目标序列一致,100%正确浓度检测纯度检测OD₂60/OD₂302.0~2.5有无其他杂带无超螺旋比例大于或等于80%琼脂糖凝胶电泳不可见残余基因组DNA琼脂糖凝胶电泳不

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