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文档简介
免疫学规范操作规程一、概述
免疫学规范操作规程旨在确保实验室免疫学检测的准确性、可靠性和安全性。本规程涵盖了免疫学实验的各个环节,包括样本采集、处理、试剂准备、实验操作、结果分析及废弃物处理等。通过遵循本规程,可以有效降低实验误差,保障实验人员安全,并提高实验效率。
二、样本采集与处理
(一)样本采集
1.血液样本:采用真空采血管,根据检测项目选择合适的抗凝剂(如EDTA、肝素或柠檬酸钠)。采集量需满足实验要求,一般成年人为3-5ml。
2.组织样本:无菌条件下取材,根据需要选择冷冻或固定保存方式。冷冻样本需立即置于-80℃保存,固定样本使用4%多聚甲醛溶液。
3.体液样本:如尿液、脑脊液等,使用无菌容器采集,避免污染。
(二)样本处理
1.血液样本:室温静置30分钟后离心(3000rpm,5分钟),取上清液或血浆部分备用。
2.组织样本:冷冻样本需在冰浴中解冻,固定样本需梯度脱水后包埋。
3.体液样本:直接使用或根据实验需求进行离心或过滤处理。
三、试剂准备与校准
(一)试剂准备
1.严格按说明书配制试剂,使用蒸馏水或去离子水。
2.保存条件需符合要求,如酶标抗体需4℃避光保存。
3.定期检查试剂有效期,过期试剂禁止使用。
(二)仪器校准
1.微量移液器:定期使用校准液校准,确保吸量准确。
2.酶标仪:使用标准品定期校准,确保读数偏差在±2%以内。
3.离心机:检查转子平衡,确保转速稳定。
四、实验操作步骤
(一)ELISA实验
1.微孔板处理:用洗涤液洗涤3次,每次3分钟。
2.加入标准品/样本:100μl/孔,设空白孔、阴性对照孔和阳性对照孔。
3.加入酶标抗体:37℃孵育60分钟。
4.洗涤:洗涤液洗涤5次,每次3分钟。
5.加入底物:100μl/孔,避光孵育15-30分钟。
6.终止反应:加入终止液50μl/孔,混匀后酶标仪读数。
(二)流式细胞术实验
1.细胞制备:PBS缓冲液重悬细胞,计数后调整浓度至1×10^6cells/mL。
2.加入抗体:冰浴孵育30分钟,避光保存。
3.上机检测:设置检测参数,收集数据。
4.数据分析:使用流式软件进行细胞亚群分析。
五、结果分析与报告
(一)结果分析
1.ELISA结果:根据标准曲线计算样本浓度,重复实验确保RSD<10%。
2.流式细胞术结果:比较不同组间细胞比例差异,P<0.05视为显著。
(二)报告撰写
1.记录实验条件、样本信息及原始数据。
2.使用图表展示结果,附统计方法说明。
3.提出实验结论及改进建议。
六、安全与废弃物处理
(一)安全操作
1.佩戴实验服、手套,必要时佩戴护目镜。
2.使用生物安全柜操作高风险样本。
3.定期进行消毒,避免交叉污染。
(二)废弃物处理
1.化学废弃物:分类收集,按规范进行中和或焚烧处理。
2.生物样本:高压灭菌后统一销毁。
3.废弃试剂:按危险品规定处理,禁止随意丢弃。
**一、概述**
免疫学规范操作规程旨在确保实验室免疫学检测的准确性、可靠性和安全性。本规程涵盖了免疫学实验的各个环节,包括样本采集、处理、试剂准备、实验操作、结果分析及废弃物处理等。通过遵循本规程,可以有效降低实验误差,保障实验人员安全,并提高实验效率。本规程适用于所有涉及免疫学检测的技术人员,是实验室日常工作的基本准则。
**二、样本采集与处理**
(一)样本采集
1.**血液样本**:
(1)**采集工具**:使用无菌、干燥的真空采血管,根据检测项目选择合适的抗凝剂。例如,用于细胞因子检测建议使用含有肝素锂的抗凝管,用于免疫印迹或流式细胞术建议使用含有EDTA的抗凝管。采血管规格需符合实验要求,常见规格有1ml、2ml、5ml等。
(2)**采集方法**:遵循标准采血流程,选择肘正中静脉或桡动脉进行穿刺。采血量需满足实验要求,一般成年人为3-5ml,具体量根据检测项目和方法确定。采血过程中避免剧烈运动和按压针眼,防止样本溶血或污染。
(3)**标识与保存**:样本采集后立即标识样本信息,包括姓名、性别、出生日期、采集日期和时间、样本类型等。血液样本需在室温下静置15-30分钟,待血液完全凝固后,以3000rpm离心5分钟,分离血浆或血清。血浆样本需在4℃条件下保存,并尽快进行检测,原则上不超过2小时,若需长期保存,建议在-80℃冻存。血清样本则在室温下保存,并尽快进行检测,原则上不超过4小时,若需长期保存,建议在-20℃冻存。
2.**组织样本**:
(1)**采集工具**:使用无菌手术刀、剪刀、组织钳等器械。
(2)**采集方法**:在无菌条件下进行组织取材,根据实验需求选择合适的组织块大小,一般直径为1-2mm,体积不超过10mm³。避免损伤血管,减少出血。
(3)**保存方式**:
-**冷冻样本**:立即将组织放入预冷的RNAlater溶液或生理盐水中,用无菌纱布包裹,置于干冰上快速运输至实验室。在-80℃冻存前,需在-20℃预冻2小时,然后转移至-80℃冰箱保存。冷冻样本需在解冻前使用,避免反复冻融。
-**固定样本**:使用4%多聚甲醛溶液进行固定,固定时间一般为24小时,可根据组织类型调整固定时间。固定过程中需定期更换固定液,避免组织自溶。固定后的组织需梯度脱水(30%、50%、70%、90%、95%乙醇各1小时,无水乙醇两次各1小时),然后进行透明、浸蜡、包埋。
(4)**标识与保存**:样本采集后立即标识样本信息,包括姓名、性别、出生日期、采集日期和时间、组织类型、病理诊断等。冷冻样本需标注冻存管号,固定样本需标注固定液种类和固定时间。
3.**体液样本**:
(1)**采集工具**:使用无菌、无菌密封的容器,如离心管、采血管等。
(2)**采集方法**:根据不同体液选择合适的采集方法。例如,尿液样本采集需在晨起第一次尿中留取,脑脊液样本采集需在无菌条件下进行腰椎穿刺。采集过程中需避免污染,防止细菌滋生。
(3)**保存方式**:采集后的体液样本需立即盖紧容器盖,避免挥发和污染。根据实验需求选择合适的保存条件,例如,尿液样本可在室温下保存2小时,脑脊液样本需在4℃条件下保存,并尽快进行检测。
(4)**标识与保存**:样本采集后立即标识样本信息,包括姓名、性别、出生日期、采集日期和时间、体液类型等。
(二)样本处理
1.**血液样本**:
(1)**血浆分离**:血液样本采集后,室温静置30分钟后,以3000rpm离心5分钟,分离血浆。上清液即为血浆,小心吸取,避免吸到管底的组织细胞沉淀。
(2)**血清分离**:血液样本采集后,室温静置30分钟后,以3500rpm离心10分钟,分离血清。上清液即为血清,小心吸取,避免吸到管底的组织细胞沉淀。
(3)**样本稀释**:根据实验要求,对血浆或血清进行适当稀释,例如,使用生理盐水或无血清细胞培养基进行稀释。稀释比例需记录在实验记录本中。
2.**组织样本**:
(1)**冷冻样本**:在-20℃冰箱中解冻组织样本,解冻过程中需避免剧烈摇晃,防止组织碎片脱落。解冻后的组织需立即进行切片或研磨。
(2)**固定样本**:固定后的组织需进行梯度脱水、透明、浸蜡、包埋。脱水过程需逐级更换乙醇,每次更换时间1小时。透明过程使用二甲苯,透明时间2小时。浸蜡过程使用石蜡,浸蜡时间12小时。包埋过程使用融化的石蜡,将组织块包埋在模具中,待石蜡冷却后即可进行切片。
3.**体液样本**:
(1)**尿液化验**:如需进行尿液化验,需对尿液样本进行离心(3000rpm,5分钟),取上清液进行检测。
(2)**脑脊液化验**:如需进行脑脊液化验,需对脑脊液样本进行过滤,去除可能的细胞碎片。
三、试剂准备与校准
(一)试剂准备
1.**ELISA试剂盒**:
(1)**试剂种类**:ELISA试剂盒通常包含酶标抗体、生物素标记的抗体、辣根过氧化物酶(HRP)底物、终止液等。
(2)**试剂配制**:严格按照试剂盒说明书进行试剂配制,使用蒸馏水或去离子水,避免使用自来水。配制过程中需注意无菌操作,防止污染。
(3)**试剂保存**:配制的试剂需根据说明书要求进行保存,例如,酶标抗体需4℃避光保存,HRP底物需-20℃保存。
2.**流式细胞术试剂**:
(1)**试剂种类**:流式细胞术试剂盒通常包含荧光标记的抗体、固定液、permeabilizationbuffer(通透性溶液)、细胞染色液等。
(2)**试剂配制**:严格按照试剂盒说明书进行试剂配制,使用PBS缓冲液或细胞培养基,避免使用其他缓冲液。配制过程中需注意无菌操作,防止污染。
(3)**试剂保存**:配制的试剂需根据说明书要求进行保存,例如,荧光标记的抗体需4℃避光保存,固定液需-20℃保存。
3.**其他试剂**:
(1)**洗涤液**:使用PBS缓冲液或Tris缓冲液,pH值调至7.4。洗涤液需使用无菌滤膜过滤除菌,过滤后的洗涤液需4℃保存。
(2)**PBS缓冲液**:使用无菌蒸馏水配制,pH值调至7.4。PBS缓冲液需使用无菌滤膜过滤除菌,过滤后的PBS缓冲液需4℃保存。
(3)**细胞培养基**:使用无菌细胞培养基,根据实验需求选择合适的培养基,例如,RPMI1640培养基、DMEM培养基等。细胞培养基需使用无菌滤膜过滤除菌,过滤后的细胞培养基需4℃保存。
(二)仪器校准
1.**微量移液器**:
(1)**校准频率**:微量移液器需每月校准一次,使用校准液进行校准。
(2)**校准方法**:使用校准液进行校准,校准液浓度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的微量移液器吸量偏差需在±2%以内,若超出范围需进行维修或更换。
2.**酶标仪**:
(1)**校准频率**:酶标仪需每月校准一次,使用标准品进行校准。
(2)**校准方法**:使用标准品进行校准,标准品浓度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的酶标仪读数偏差需在±2%以内,若超出范围需进行维修或校准。
3.**离心机**:
(1)**校准频率**:离心机需每季度校准一次,使用校准液进行校准。
(2)**校准方法**:使用校准液进行校准,校准液密度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的离心机转速偏差需在±1%以内,若超出范围需进行维修或校准。
4.**流式细胞仪**:
(1)**校准频率**:流式细胞仪需每月校准一次,使用标准品进行校准。
(2)**校准方法**:使用标准品进行校准,标准品浓度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的流式细胞仪荧光强度偏差需在±5%以内,若超出范围需进行维修或校准。
四、实验操作步骤
(一)ELISA实验
1.**微孔板处理**:
(1)取出微孔板,使用洗涤液洗涤3次,每次3分钟,洗涤后倒掉液体,拍干。
(2)加入标准品/样本:100μl/孔,设空白孔、阴性对照孔和阳性对照孔。空白孔加入100μl洗涤液。
(3)轻轻混匀,37℃孵育60分钟。
2.**洗涤**:
(1)小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(2)向每个孔加入洗涤液100μl,轻轻晃动微孔板,使洗涤液充满孔内。
(3)静置3分钟,小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(4)重复洗涤3次。
3.**加入酶标抗体**:
(1)向每个孔加入酶标抗体100μl,轻轻混匀,37℃孵育60分钟。
4.**再次洗涤**:
(1)小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(2)向每个孔加入洗涤液100μl,轻轻晃动微孔板,使洗涤液充满孔内。
(3)静置3分钟,小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(4)重复洗涤5次。
5.**加入底物**:
(1)向每个孔加入HRP底物100μl,避光孵育15-30分钟。
6.**终止反应**:
(1)向每个孔加入终止液50μl,混匀后酶标仪读数。
(二)流式细胞术实验
1.**细胞制备**:
(1)PBS缓冲液重悬细胞,使用细胞计数板计数细胞,调整细胞浓度至1×10^6cells/mL。
2.**加入抗体**:
(1)冰浴孵育30分钟,避光保存。
3.**上机检测**:
(1)设置检测参数,收集数据。
4.**数据分析**:
(1)使用流式软件进行细胞亚群分析。
五、结果分析与报告
(一)结果分析
1.**ELISA结果**:
(1)根据标准曲线计算样本浓度,重复实验确保RSD<10%。
(2)使用Excel或其他统计软件进行数据分析,计算平均值和标准差。
2.**流式细胞术结果**:
(1)比较不同组间细胞比例差异,P<0.05视为显著。
(2)使用Excel或其他统计软件进行数据分析,计算平均值和标准差。
(二)报告撰写
1.**记录实验条件**:记录实验日期、时间、实验人员、实验设备、试剂种类、试剂批号等信息。
2.**记录样本信息**:记录样本编号、样本类型、样本量等信息。
3.**记录原始数据**:记录实验过程中的原始数据,例如,标准曲线数据、样本OD值、细胞比例数据等。
4.**使用图表展示结果**:使用柱状图、折线图等图表展示实验结果,并进行必要的注释和说明。
5.**附统计方法说明**:说明所使用的统计方法,例如,t检验、方差分析等。
6.**提出实验结论及改进建议**:根据实验结果,提出实验结论,并提出改进实验的建议。
六、安全与废弃物处理
(一)安全操作
1.**个人防护**:
(1)实验过程中需佩戴实验服、手套,必要时佩戴护目镜。
(2)操作危险化学品时,需佩戴防毒面具或口罩。
2.**生物安全**:
(1)使用生物安全柜操作高风险样本,防止气溶胶传播。
(2)实验结束后,需对生物安全柜进行消毒。
3.**实验室消毒**:
(1)实验过程中,需定期对实验室进行消毒,防止交叉污染。
(2)使用75%酒精或含氯消毒剂进行消毒。
4.**高压灭菌**:
(1)所有接触样本的器械,如移液器吸头、离心管等,需高压灭菌。
(2)高压灭菌参数为121℃,15分钟。
(二)废弃物处理
1.**化学废弃物**:
(1)分类收集,按规范进行中和或焚烧处理。
(2)废液需使用专用容器收集,禁止倒入下水道。
2.**生物样本**:
(1)高压灭菌后统一销毁。
(2)样本容器需使用专用容器收集,禁止随意丢弃。
3.**废弃试剂**:
(1)按危险品规定处理,禁止随意丢弃。
(2)废弃试剂需使用专用容器收集,禁止倒入下水道。
4.**实验室垃圾**:
(1)实验结束后,需对实验室垃圾进行分类处理。
(2)生活垃圾需使用普通垃圾袋收集,危险垃圾需使用专用垃圾袋收集。
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一、概述
免疫学规范操作规程旨在确保实验室免疫学检测的准确性、可靠性和安全性。本规程涵盖了免疫学实验的各个环节,包括样本采集、处理、试剂准备、实验操作、结果分析及废弃物处理等。通过遵循本规程,可以有效降低实验误差,保障实验人员安全,并提高实验效率。
二、样本采集与处理
(一)样本采集
1.血液样本:采用真空采血管,根据检测项目选择合适的抗凝剂(如EDTA、肝素或柠檬酸钠)。采集量需满足实验要求,一般成年人为3-5ml。
2.组织样本:无菌条件下取材,根据需要选择冷冻或固定保存方式。冷冻样本需立即置于-80℃保存,固定样本使用4%多聚甲醛溶液。
3.体液样本:如尿液、脑脊液等,使用无菌容器采集,避免污染。
(二)样本处理
1.血液样本:室温静置30分钟后离心(3000rpm,5分钟),取上清液或血浆部分备用。
2.组织样本:冷冻样本需在冰浴中解冻,固定样本需梯度脱水后包埋。
3.体液样本:直接使用或根据实验需求进行离心或过滤处理。
三、试剂准备与校准
(一)试剂准备
1.严格按说明书配制试剂,使用蒸馏水或去离子水。
2.保存条件需符合要求,如酶标抗体需4℃避光保存。
3.定期检查试剂有效期,过期试剂禁止使用。
(二)仪器校准
1.微量移液器:定期使用校准液校准,确保吸量准确。
2.酶标仪:使用标准品定期校准,确保读数偏差在±2%以内。
3.离心机:检查转子平衡,确保转速稳定。
四、实验操作步骤
(一)ELISA实验
1.微孔板处理:用洗涤液洗涤3次,每次3分钟。
2.加入标准品/样本:100μl/孔,设空白孔、阴性对照孔和阳性对照孔。
3.加入酶标抗体:37℃孵育60分钟。
4.洗涤:洗涤液洗涤5次,每次3分钟。
5.加入底物:100μl/孔,避光孵育15-30分钟。
6.终止反应:加入终止液50μl/孔,混匀后酶标仪读数。
(二)流式细胞术实验
1.细胞制备:PBS缓冲液重悬细胞,计数后调整浓度至1×10^6cells/mL。
2.加入抗体:冰浴孵育30分钟,避光保存。
3.上机检测:设置检测参数,收集数据。
4.数据分析:使用流式软件进行细胞亚群分析。
五、结果分析与报告
(一)结果分析
1.ELISA结果:根据标准曲线计算样本浓度,重复实验确保RSD<10%。
2.流式细胞术结果:比较不同组间细胞比例差异,P<0.05视为显著。
(二)报告撰写
1.记录实验条件、样本信息及原始数据。
2.使用图表展示结果,附统计方法说明。
3.提出实验结论及改进建议。
六、安全与废弃物处理
(一)安全操作
1.佩戴实验服、手套,必要时佩戴护目镜。
2.使用生物安全柜操作高风险样本。
3.定期进行消毒,避免交叉污染。
(二)废弃物处理
1.化学废弃物:分类收集,按规范进行中和或焚烧处理。
2.生物样本:高压灭菌后统一销毁。
3.废弃试剂:按危险品规定处理,禁止随意丢弃。
**一、概述**
免疫学规范操作规程旨在确保实验室免疫学检测的准确性、可靠性和安全性。本规程涵盖了免疫学实验的各个环节,包括样本采集、处理、试剂准备、实验操作、结果分析及废弃物处理等。通过遵循本规程,可以有效降低实验误差,保障实验人员安全,并提高实验效率。本规程适用于所有涉及免疫学检测的技术人员,是实验室日常工作的基本准则。
**二、样本采集与处理**
(一)样本采集
1.**血液样本**:
(1)**采集工具**:使用无菌、干燥的真空采血管,根据检测项目选择合适的抗凝剂。例如,用于细胞因子检测建议使用含有肝素锂的抗凝管,用于免疫印迹或流式细胞术建议使用含有EDTA的抗凝管。采血管规格需符合实验要求,常见规格有1ml、2ml、5ml等。
(2)**采集方法**:遵循标准采血流程,选择肘正中静脉或桡动脉进行穿刺。采血量需满足实验要求,一般成年人为3-5ml,具体量根据检测项目和方法确定。采血过程中避免剧烈运动和按压针眼,防止样本溶血或污染。
(3)**标识与保存**:样本采集后立即标识样本信息,包括姓名、性别、出生日期、采集日期和时间、样本类型等。血液样本需在室温下静置15-30分钟,待血液完全凝固后,以3000rpm离心5分钟,分离血浆或血清。血浆样本需在4℃条件下保存,并尽快进行检测,原则上不超过2小时,若需长期保存,建议在-80℃冻存。血清样本则在室温下保存,并尽快进行检测,原则上不超过4小时,若需长期保存,建议在-20℃冻存。
2.**组织样本**:
(1)**采集工具**:使用无菌手术刀、剪刀、组织钳等器械。
(2)**采集方法**:在无菌条件下进行组织取材,根据实验需求选择合适的组织块大小,一般直径为1-2mm,体积不超过10mm³。避免损伤血管,减少出血。
(3)**保存方式**:
-**冷冻样本**:立即将组织放入预冷的RNAlater溶液或生理盐水中,用无菌纱布包裹,置于干冰上快速运输至实验室。在-80℃冻存前,需在-20℃预冻2小时,然后转移至-80℃冰箱保存。冷冻样本需在解冻前使用,避免反复冻融。
-**固定样本**:使用4%多聚甲醛溶液进行固定,固定时间一般为24小时,可根据组织类型调整固定时间。固定过程中需定期更换固定液,避免组织自溶。固定后的组织需梯度脱水(30%、50%、70%、90%、95%乙醇各1小时,无水乙醇两次各1小时),然后进行透明、浸蜡、包埋。
(4)**标识与保存**:样本采集后立即标识样本信息,包括姓名、性别、出生日期、采集日期和时间、组织类型、病理诊断等。冷冻样本需标注冻存管号,固定样本需标注固定液种类和固定时间。
3.**体液样本**:
(1)**采集工具**:使用无菌、无菌密封的容器,如离心管、采血管等。
(2)**采集方法**:根据不同体液选择合适的采集方法。例如,尿液样本采集需在晨起第一次尿中留取,脑脊液样本采集需在无菌条件下进行腰椎穿刺。采集过程中需避免污染,防止细菌滋生。
(3)**保存方式**:采集后的体液样本需立即盖紧容器盖,避免挥发和污染。根据实验需求选择合适的保存条件,例如,尿液样本可在室温下保存2小时,脑脊液样本需在4℃条件下保存,并尽快进行检测。
(4)**标识与保存**:样本采集后立即标识样本信息,包括姓名、性别、出生日期、采集日期和时间、体液类型等。
(二)样本处理
1.**血液样本**:
(1)**血浆分离**:血液样本采集后,室温静置30分钟后,以3000rpm离心5分钟,分离血浆。上清液即为血浆,小心吸取,避免吸到管底的组织细胞沉淀。
(2)**血清分离**:血液样本采集后,室温静置30分钟后,以3500rpm离心10分钟,分离血清。上清液即为血清,小心吸取,避免吸到管底的组织细胞沉淀。
(3)**样本稀释**:根据实验要求,对血浆或血清进行适当稀释,例如,使用生理盐水或无血清细胞培养基进行稀释。稀释比例需记录在实验记录本中。
2.**组织样本**:
(1)**冷冻样本**:在-20℃冰箱中解冻组织样本,解冻过程中需避免剧烈摇晃,防止组织碎片脱落。解冻后的组织需立即进行切片或研磨。
(2)**固定样本**:固定后的组织需进行梯度脱水、透明、浸蜡、包埋。脱水过程需逐级更换乙醇,每次更换时间1小时。透明过程使用二甲苯,透明时间2小时。浸蜡过程使用石蜡,浸蜡时间12小时。包埋过程使用融化的石蜡,将组织块包埋在模具中,待石蜡冷却后即可进行切片。
3.**体液样本**:
(1)**尿液化验**:如需进行尿液化验,需对尿液样本进行离心(3000rpm,5分钟),取上清液进行检测。
(2)**脑脊液化验**:如需进行脑脊液化验,需对脑脊液样本进行过滤,去除可能的细胞碎片。
三、试剂准备与校准
(一)试剂准备
1.**ELISA试剂盒**:
(1)**试剂种类**:ELISA试剂盒通常包含酶标抗体、生物素标记的抗体、辣根过氧化物酶(HRP)底物、终止液等。
(2)**试剂配制**:严格按照试剂盒说明书进行试剂配制,使用蒸馏水或去离子水,避免使用自来水。配制过程中需注意无菌操作,防止污染。
(3)**试剂保存**:配制的试剂需根据说明书要求进行保存,例如,酶标抗体需4℃避光保存,HRP底物需-20℃保存。
2.**流式细胞术试剂**:
(1)**试剂种类**:流式细胞术试剂盒通常包含荧光标记的抗体、固定液、permeabilizationbuffer(通透性溶液)、细胞染色液等。
(2)**试剂配制**:严格按照试剂盒说明书进行试剂配制,使用PBS缓冲液或细胞培养基,避免使用其他缓冲液。配制过程中需注意无菌操作,防止污染。
(3)**试剂保存**:配制的试剂需根据说明书要求进行保存,例如,荧光标记的抗体需4℃避光保存,固定液需-20℃保存。
3.**其他试剂**:
(1)**洗涤液**:使用PBS缓冲液或Tris缓冲液,pH值调至7.4。洗涤液需使用无菌滤膜过滤除菌,过滤后的洗涤液需4℃保存。
(2)**PBS缓冲液**:使用无菌蒸馏水配制,pH值调至7.4。PBS缓冲液需使用无菌滤膜过滤除菌,过滤后的PBS缓冲液需4℃保存。
(3)**细胞培养基**:使用无菌细胞培养基,根据实验需求选择合适的培养基,例如,RPMI1640培养基、DMEM培养基等。细胞培养基需使用无菌滤膜过滤除菌,过滤后的细胞培养基需4℃保存。
(二)仪器校准
1.**微量移液器**:
(1)**校准频率**:微量移液器需每月校准一次,使用校准液进行校准。
(2)**校准方法**:使用校准液进行校准,校准液浓度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的微量移液器吸量偏差需在±2%以内,若超出范围需进行维修或更换。
2.**酶标仪**:
(1)**校准频率**:酶标仪需每月校准一次,使用标准品进行校准。
(2)**校准方法**:使用标准品进行校准,标准品浓度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的酶标仪读数偏差需在±2%以内,若超出范围需进行维修或校准。
3.**离心机**:
(1)**校准频率**:离心机需每季度校准一次,使用校准液进行校准。
(2)**校准方法**:使用校准液进行校准,校准液密度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的离心机转速偏差需在±1%以内,若超出范围需进行维修或校准。
4.**流式细胞仪**:
(1)**校准频率**:流式细胞仪需每月校准一次,使用标准品进行校准。
(2)**校准方法**:使用标准品进行校准,标准品浓度需已知,校准过程需重复三次,取平均值。校准结果需记录在实验记录本中。
(3)**校准标准**:校准后的流式细胞仪荧光强度偏差需在±5%以内,若超出范围需进行维修或校准。
四、实验操作步骤
(一)ELISA实验
1.**微孔板处理**:
(1)取出微孔板,使用洗涤液洗涤3次,每次3分钟,洗涤后倒掉液体,拍干。
(2)加入标准品/样本:100μl/孔,设空白孔、阴性对照孔和阳性对照孔。空白孔加入100μl洗涤液。
(3)轻轻混匀,37℃孵育60分钟。
2.**洗涤**:
(1)小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(2)向每个孔加入洗涤液100μl,轻轻晃动微孔板,使洗涤液充满孔内。
(3)静置3分钟,小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(4)重复洗涤3次。
3.**加入酶标抗体**:
(1)向每个孔加入酶标抗体100μl,轻轻混匀,37℃孵育60分钟。
4.**再次洗涤**:
(1)小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(2)向每个孔加入洗涤液100μl,轻轻晃动微孔板,使洗涤液充满孔内。
(3)静置3分钟,小心吸弃孔内液体,不要搅动孔内液体。
(4)重复洗涤5次。
5.**加入底物**:
(1)向每个孔加入HRP底物100μl,避光孵育15-3
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