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基因治疗产品生产工艺验证批次要求演讲人01引言:基因治疗产品工艺验证的核心地位与验证批次的战略意义02法规框架与基本原则:验证批次设计的“指南针”03验证批次的设计与规划:从“概念”到“方案”的落地04验证批次执行中的关键技术要点:从“计划”到“数据”的转化05验证批次数据的评估与报告:从“数据”到“结论”的升华06案例分享:CAR-T细胞治疗产品验证批次的实践与挑战07总结与展望:验证批次——基因治疗产品质量的“生命线”目录基因治疗产品生产工艺验证批次要求01引言:基因治疗产品工艺验证的核心地位与验证批次的战略意义引言:基因治疗产品工艺验证的核心地位与验证批次的战略意义在基因治疗领域,从实验室研究到商业化生产,生产工艺的稳健性与可靠性是保障产品安全、有效和质量可控的基石。与化药或传统生物制品不同,基因治疗产品(如病毒载体、基因编辑细胞治疗产品等)具有结构复杂、生产步骤多、活体属性强、工艺参数敏感度高等特点,其生产工艺验证(ProcessValidation,PV)的复杂性和风险性显著增加。而验证批次(ValidationBatches)作为工艺验证的核心载体,不仅是证明工艺能够持续稳定生产出符合预定质量标准产品的关键证据,更是满足监管机构要求、推动产品临床转化和商业化上市的核心环节。作为一名长期深耕基因治疗生产工艺开发与验证的从业者,我深刻体会到验证批次的设计、执行与评估绝非简单的“重复生产”,而是一个基于科学、数据与风险的系统性工程。它需要整合工艺开发数据、质量研究信息、法规要求及生产实际,通过精心规划的批次方案,引言:基因治疗产品工艺验证的核心地位与验证批次的战略意义覆盖工艺的关键参数与关键质量属性(CQAs),最终形成完整的证据链。本文将结合国内外法规指南、行业实践及个人经验,从法规框架、设计原则、关键技术要点、偏差管理及持续改进等维度,系统阐述基因治疗产品生产工艺验证批次的核心要求,为行业同仁提供参考与借鉴。02法规框架与基本原则:验证批次设计的“指南针”法规框架与基本原则:验证批次设计的“指南针”基因治疗产品工艺验证的批次要求,首先必须建立在充分理解并遵循国内外法规框架的基础上。监管机构对验证批次的核心诉求可概括为“科学性、完整性、可追溯性”,即通过验证批次证明工艺的稳健性,并确保所有数据真实、完整、可追溯。国际法规指南的核心要求1.FDA《人用治疗性病毒疫苗生产工艺指南》与《生物制品工艺验证指南》FDA强调工艺验证应采用“生命周期法”(LifecycleApproach),将验证分为工艺设计(Stage1)、工艺确认(Stage2)和持续工艺确认(Stage3)三个阶段。其中,Stage2的工艺确认(即传统意义上的“工艺验证”)需通过连续至少三批成功的商业化规模生产(或经论证的代表性规模)来完成,以证明工艺的稳定性和一致性。对于基因治疗产品,FDA特别关注病毒载体的遗传稳定性、感染滴度、纯度及杂质(如宿主细胞蛋白、DNA)等关键质量属性,要求验证批次必须覆盖这些属性的全面检测。国际法规指南的核心要求EMA《基因治疗药物指南》与《生物工艺验证指南》EMA同样采用“三阶段”模型,但更强调“基于风险的验证”(Risk-BasedValidation)。在验证批次设计中,需通过风险评估工具(如FMEA、HACCP)识别工艺中的高风险步骤(如病毒转导、细胞培养、层析纯化等),并确保验证批次对这些步骤的参数进行充分考察。此外,EMA要求验证批次的生产条件(如设备、环境、人员)应与商业化生产一致,避免因规模或条件变化引入新的风险。国际法规指南的核心要求PICMA《生物工艺验证指南》作为国际制药工程协会,PICMA提出了“工艺知识”(ProcessKnowledge)的概念,强调验证批次的设计应基于前期工艺开发积累的深度理解(如DoE实验结果、参数范围研究),通过验证批次进一步巩固和扩展工艺知识,形成“设计空间”(DesignSpace)的边界确认。国内法规的接轨与特色要求国家药品监督管理局(NMPA)发布的《生物制品生产工艺及产品注册审批技术指南》《基因治疗产品非临床研究与评价技术指导原则》等文件,在借鉴国际经验的同时,结合国内基因治疗产业特点,提出了具体要求:-验证批次需涵盖工艺开发、临床样品生产至商业化生产的全链条数据,确保工艺的“一致性”;-对于创新性基因治疗产品(如CRISPR/Cas9基因编辑疗法),需提供更充分的验证批次数据,证明工艺的稳健性能够应对复杂的工艺挑战;-验证批次的规模需根据产品特性(如病毒载体产量、细胞治疗扩增倍数)科学论证,原则上应与商业化生产规模一致,若采用“缩小规模”需提供充分的相似性支持数据。验证批次设计的基本原则基于上述法规要求,基因治疗产品验证批次设计需遵循以下核心原则:011.科学性原则:基于前期工艺开发数据和风险评估结果,明确验证批次的范围、规模和关键参数,避免“为验证而验证”。022.代表性原则:验证批次的生产条件(设备、场地、人员、物料)需与商业化生产高度一致,确保数据能够反映实际生产场景。033.风险导向原则:优先关注高风险工艺步骤和关键质量属性,通过验证批次数据证明工艺对这些风险的有效控制。044.完整性原则:验证批次需涵盖从起始物料放行到成品放行的全流程数据,包括中间体控制、过程检验、成品检验及稳定性考察。0503验证批次的设计与规划:从“概念”到“方案”的落地验证批次的设计与规划:从“概念”到“方案”的落地验证批次的设计是工艺验证的“蓝图”,其质量直接决定验证结果的可靠性和监管接受度。这一阶段需整合工艺开发、生产、质量、注册等多部门资源,通过系统性的规划,明确验证批次的目标、范围、规模、数量及关键考察指标。验证批次的分类与目标定位根据工艺验证的阶段和目的,验证批次可分为三类,每类批次的目标和侧重点存在显著差异:|批次类型|阶段定位|核心目标|典型规模||--------------------|-----------------------------|-----------------------------------------------------------------------------|----------------------------||工艺确认批(PV-Batch)|工艺确认阶段(Stage2)|证明工艺在商业化规模下能够持续稳定生产出符合质量标准的产品|与商业化生产规模一致(如100L、200L生物反应器)|验证批次的分类与目标定位|商业化模拟批(Sim-Batch)|工艺开发后期/申报前|验证工艺在“准商业化”条件下的稳健性,为申报提供关键数据支持|较商业化规模缩小(如50%),需论证相似性||持续工艺确认批(CPV-Batch)|商业化生产阶段(Stage3)|持续监控工艺性能,及时发现趋势性偏差,确保工艺长期稳定|商业化规模,频率根据工艺稳定性确定(如每季度1批)|验证批次规模的科学确定验证批次的规模是设计中的核心争议点之一:规模过小无法反映商业化生产的工艺风险(如混合不均、传热效率差异);规模过大则可能导致成本过高、资源浪费。确定规模需综合考虑以下因素:1.工艺放大依据:基于前期工艺放大研究数据(如从3L、10L、50L到100L的逐级放大实验),证明关键工艺参数(如搅拌速率、通气量、传质系数)在缩小规模与商业化规模间的相似性。例如,在AAV病毒生产中,需验证不同规模生物反应器中的细胞密度、病毒滴度及代谢产物(如乳酸、氨)的动态变化一致性。2.产品特性:对于高价值、低产量的基因治疗产品(如某些罕见病基因疗法),若商业化规模产量较低(如<1×10¹⁴vg/批),验证批次规模可与商业化规模一致;对于高产量的产品(如CAR-T细胞治疗),可先通过50-100L规模的模拟批验证,再结合商业化首批数据确认工艺稳健性。验证批次规模的科学确定3.监管要求:NMPA和FDA均明确要求,若验证批次规模小于商业化规模,需提供充分的“规模缩小合理性”(Scale-DownRationale)数据,包括关键工艺参数的相似性评估、产品质量属性的对比分析等。例如,在细胞治疗产品的验证批次中,需证明不同规模培养袋中的细胞活率、表型分布(如CD4+/CD8+比例)无显著差异。验证批次数量的统计学依据传统上,监管机构要求至少连续三批成功的验证批次,这一要求主要基于统计学“3批原则”——通过连续3批合格产品,初步证明工艺的稳定性(概率>95%)。但对于基因治疗产品,仅满足“3批”可能不足,需结合产品风险和工艺复杂性增加批次数量:-高风险产品:如整合性病毒载体(如慢病毒)、基因编辑治疗产品,因存在插入突变、基因脱靶等潜在风险,建议至少5-6批验证批次,以更全面评估工艺变异。-复杂工艺:包含多步骤纯化(如亲和层析、离子交换、体积排阻层析)、多步骤病毒转导的工艺,建议每步关键参数均通过2-3批次数据验证,确保工艺各环节的稳健性。-统计学设计:可采用“工艺能力指数”(Cpk)评估工艺的变异程度,要求关键质量属性的Cpk≥1.33(即99.99%的产品符合质量标准)。若前期数据显示变异较大,需增加批次数量以获得更可靠的Cpk评估。验证批次方案的制定与审批验证批次方案(ValidationProtocol)是指导验证批次执行的技术文件,需包含以下核心内容:1.验证目的与范围:明确验证批次的目标(如证明AAV纯化工艺的收率稳定性)、覆盖的工艺步骤(从细胞库复苏到成品灌装)及关键质量属性(如病毒滴度、纯度、无菌性)。2.工艺描述与流程图:详细列出验证批次的生产工艺步骤、关键设备、物料清单及操作参数范围,附带工艺流程图及控制策略。3.关键工艺参数(CPPs)与关键质量属性(CQAs)列表:基于工艺开发和风险评估结果,明确需验证的CPPs(如细胞培养温度、pH、病毒感染复数MOI)和CQAs(如宿主细胞DNA残留、细菌内毒素、产品活性)。验证批次方案的制定与审批4.可接受标准(AcceptanceCriteria):为每个CQA和关键中间体指标设定科学、合理的可接受标准,标准需基于临床前研究、临床样品数据及产品质量概况(QTPP)制定。例如,AAV产品的总收率可接受标准可为“≥60%”,纯度(HPLC面积归一化法)≥95%。5.检测方法与验证状态:明确所有检验方法的来源、验证状态(需已完成分析方法验证)及检测频率。例如,病毒滴度检测需采用qPCR方法(已验证特异性、线性、准确度、精密度),每批样品需进行双份检测。6.偏差处理与应急方案:规定验证批次中偏差的分级(重大、主要、次要)、处理流程及应急措施(如某批次中间体超标时的返工或报废方案)。7.数据记录与报告要求:明确批记录的格式、数据完整性要求(符合ALCOA+原则验证批次方案的制定与审批)及验证报告(ValidationReport)的编制内容。方案制定后需组织跨部门评审(生产、质量、研发、注册),最终由质量负责人批准后方可执行。在我参与的一个CAR-T产品验证批次项目中,我们曾因对“细胞冻融存活率”的可接受标准存在争议(研发部门建议≥80%,质量部门建议≥85%),通过回顾临床样品数据(冻融后平均存活率88%)和工艺风险评估(冻融步骤影响细胞体内活性),最终将标准确定为≥85%,确保了标准的科学性和风险可控性。04验证批次执行中的关键技术要点:从“计划”到“数据”的转化验证批次执行中的关键技术要点:从“计划”到“数据”的转化验证批次的执行是将方案落地的关键阶段,需严格按照批准的方案操作,确保数据的真实性、完整性和可追溯性。基因治疗产品因工艺复杂,执行中需重点关注以下技术环节:物料与设备:验证批次的基础保障1.物料的合规性与一致性:验证批次所用的起始物料(如质粒DNA、细胞库、培养基、层析介质)需与商业化生产物料来源一致,且需提供完整的资质文件(COA、检验报告、稳定性数据)。例如,用于AAV生产的HEK293细胞库,需完成细胞库characterization(STR分型、支原体检测、外源病毒检测),并确保细胞代次不超过规定范围(如“主细胞库≤20代,工作细胞库≤30代”)。2.设备的确认与校准:验证批次所用设备(生物反应器、层析系统、灌装线)需完成安装确认(IQ)、运行确认(OQ)和性能确认(PQ),确保设备性能符合工艺要求。例如,生物反应器的pH、溶氧(DO)、温度传感器需在验证批次前校准,确保测量误差≤±0.1pH、±5%DO、±0.5℃;层析系统的流速、压力、紫外检测器需通过PQ验证,确保重现性变异系数(RSD)≤2%。工艺参数的实时监控与记录基因治疗工艺的参数敏感性高,微小的偏差可能导致产品质量显著变化。因此,验证批次中需对关键工艺参数(CPPs)进行实时监控和记录,确保参数在规定范围内:1.细胞培养阶段:对于悬浮细胞培养(如HEK293生产AAV),需监控细胞密度(CD)、活率(Viability)、葡萄糖、乳酸、谷氨酰胺等代谢指标,以及pH、DO、温度、搅拌速率等物理参数。例如,某AAV生产工艺要求细胞培养结束时CD≥2×10⁶cells/mL,活率≥90%,葡萄糖残留≥1g/L(避免过度代谢导致酸中毒)。我们曾在验证批次中发现,因搅拌速率设置偏差(±10rpm),导致细胞活率降至85%,立即启动偏差调查,确认是设备参数校准误差导致,调整后后续批次活率均≥90%,该案例也让我们深刻认识到实时监控的重要性。工艺参数的实时监控与记录2.病毒转导/转染阶段:对于病毒载体生产,转染效率(TransfectionEfficiency)是关键CPP,需通过流式细胞术(如GFP标记)或qPCR检测质粒DNA摄入率。例如,慢病毒生产工艺要求转染效率≥70%,若低于此值,需调查质粒质量、转染试剂比例、细胞状态等因素。3.纯化阶段:层析纯化是病毒载体和细胞治疗产品去除杂质(如宿主细胞蛋白、DNA)的核心步骤,需监控上样流速、洗脱缓冲液pH/电导率、收集组分时间等参数。例如,亲和层析(如ProteinAAAV纯化)需控制上样流速≤5柱体积/小时,确保病毒与填料的充分结合;阴离子交换层析(AEX)需监测洗脱峰UV值,收集目标峰(通常为A280吸收峰),确保纯度≥95%。中间体与成品的全面检测验证批次的中间体和成品需进行全面的质量检测,覆盖所有关键质量属性(CQAs),数据需完整记录并用于评估工艺稳健性:1.中间体控制:关键中间体(如澄清收获液、层析纯化液、超滤浓缩液)需设定放行标准,确保后续工艺步骤的质量。例如,澄清收获液的需检测浊度(≤50NTU)、宿主细胞DNA残留(≤10ng/dose)、总蛋白(≤5%oftotalprotein),若超标则需进行返工(如增加过滤步骤)或报废。2.成品检测:成品需按照《中国药典》及《人基因治疗产品质控技术指导原则》进行全中间体与成品的全面检测面检验,主要包括:-理化性质:外观(应为澄清或微乳白液体,无可见异物)、渗透压摩尔浓度(260-320mOsm/kg)、pH(6.8-7.8);-生物学活性:对于病毒载体,需检测感染滴度(如vg/mL,通过qPCR或TCID₅₀法);对于细胞治疗产品,需检测细胞活率(台盼蓝染色≥90%)、表型(如CAR-T的CD3+/CAR+比例≥80%)、体外杀伤活性(对靶细胞的杀伤率≥70%);-纯度与杂质:宿主细胞蛋白残留(ELISA法≤100ng/dose)、宿主细胞DNA残留(qPCR法≤10ng/dose)、细菌内毒素(≤5EU/kg)、工艺相关杂质(如质粒DNA、抗生素残留);中间体与成品的全面检测-安全性:无菌检查(需通过14天培养,无细菌、真菌、支原体生长)、异常毒性(需通过小鼠实验,无不良反应)、遗传毒性(如整合性病毒载体的整合位点分析)。3.数据完整性保障:验证批次的所有数据需符合ALCOA+原则(可归因、清晰、同步、原始、准确、完整、一致、持久、可用)。我们采用电子批记录(EBR)系统,实现操作步骤的电子签名、参数自动采集、审计追踪(AuditTrail)功能,避免纸质记录的涂改和丢失。例如,在生物反应器数据记录中,系统自动每5分钟记录一次pH、DO、温度数据,操作人员无法手动修改,确保数据的原始性和真实性。偏差与变更的规范管理验证批次执行中难免出现偏差(如设备故障、参数超出范围、检测结果超标),规范管理偏差是保证验证结果可靠性的关键:1.偏差的分级与处理:根据偏差对产品质量和工艺验证的影响程度,分为重大偏差(可能影响产品安全性或有效性)、主要偏差(可能影响产品质量但无安全风险)、次要偏差(对产品质量无影响)。例如,验证批次中生物反应器温度短时(<1小时)超出范围(32℃insteadof37℃),经评估对细胞生长无影响,可判定为次要偏差,仅需记录原因(如温控系统波动)和纠正措施(加强监控);若层析纯化收率低于可接受标准(如75%vs85%),则需判定为主要偏差,需启动根本原因调查(如层析柱老化、上样量过大),并评估对产品质量的影响(如纯度是否达标)。偏差与变更的规范管理2.变更的控制:若验证批次执行中需对方案进行变更(如调整检测方法、修改可接受标准),需履行变更控制流程,评估变更对验证结果的影响,并获得质量负责人批准。例如,我们曾计划将AAV病毒滴度的检测方法从qPCR(基于标准曲线)改为ddPCR(绝对定量),需先完成分析方法验证(证明ddPCR的特异性、精密度、准确度),并通过对比实验证明两种方法结果无显著差异(相对偏差≤10%),方可变更验证批次方案。05验证批次数据的评估与报告:从“数据”到“结论”的升华验证批次数据的评估与报告:从“数据”到“结论”的升华验证批次执行完成后,需对收集的数据进行系统评估,形成验证报告,作为工艺验证完成和产品注册申报的核心支持文件。数据评估需基于科学统计和风险分析,确保结论的客观性和可靠性。数据评估的核心内容1.工艺稳健性评估:通过连续批次的关键工艺参数(CPPs)和关键质量属性(CQAs)数据,评估工艺的变异程度。常用工具包括:-趋势分析:绘制批次数据的趋势图(如细胞活率、病毒滴度随批次变化),观察是否存在上升/下降趋势。例如,若连续5批验证批次的AAV滴度呈下降趋势(从1×10¹⁴vg/mL降至5×10¹³vg/mL),需调查是否因细胞代次增加、质粒质量下降或设备老化导致。-统计过程控制(SPC):计算关键参数的标准差(SD)和变异系数(RSD),判断工艺是否处于“受控状态”。例如,纯化收率的RSD应≤5%,若某批次收率RSD为8%,说明工艺变异较大,需优化工艺参数。数据评估的核心内容-工艺能力指数(Cpk):评估工艺满足可接受标准的能力,要求Cpk≥1.33。例如,若某CQA的可接受标准为“90-110%”,实际批次数据平均值为100%,SD=3%,则Cpk=(110-100)/(3×3)≈1.11,不满足要求,需通过工艺优化(如改进层析条件)降低变异。2.产品质量一致性评估:对比验证批次与临床样品、商业化模拟批次的关键质量属性数据,证明产品质量的一致性。例如,CAR-T产品的细胞表型(CD4+/CD8+比例)在临床样品(平均1.2)、验证批次(平均1.25)和商业化模拟批次(平均1.18)间无显著差异(P>0.05),说明工艺能够稳定生产出符合临床质量要求的产品。数据评估的核心内容3.风险控制有效性评估:回顾验证批次中的偏差和变更,评估风险控制措施的有效性。例如,针对“细胞培养活率低”的风险,我们在验证批次中采取了“优化培养基配方”和“增加DO实时反馈控制”的措施,结果显示验证批次活率均≥90%(临床样品平均85%),证明风险控制措施有效。验证报告的编制与审核验证报告(ValidationReport)是验证批次执行结果的总结性文件,需客观、清晰地呈现数据、分析和结论,主要内容应包括:1.验证概述:验证批次的名称、编号、生产日期、规模、目的及范围;2.工艺描述:简要概述验证批次的生产工艺流程和关键参数;3.数据汇总:以表格和图表形式展示所有关键中间体和成品检测数据,包括每个批次的检测结果、平均值、SD、RSD及可接受标准;4.偏差与变更记录:详细列出验证批次中发生的所有偏差、变更及处理结果;5.数据分析与结论:基于稳健性、一致性、风险控制有效性评估,给出验证批次是否“通过”的结论(如“连续3批验证批次均符合可接受标准,工艺验证完成”);6.建议与后续措施:提出工艺优化建议(如调整某参数范围)或持续工艺确认计划(如验证报告的编制与审核CPV批次的检测频率)。验证报告需由质量负责人审核批准,并作为产品注册申报资料的重要组成部分。在我参与的一个AAV产品验证项目中,我们曾因某批次“宿主细胞DNA残留”检测结果(12ng/dose)略超可接受标准(10ng/dose),通过增加检测批次(补充1批)和进行方法学补充验证(证明检测方法的回收率),最终确认是方法误差导致,验证报告如实记录了该过程及风险评估结论,获得了NMPA的认可。六、持续工艺确认与验证批次的动态管理:从“静态”到“动态”的延伸工艺验证并非“一劳永逸”,随着生产经验的积累、工艺的优化和监管要求的更新,验证批次需进行动态管理,确保工艺长期稳定可控。持续工艺确认(CPV)是连接工艺验证与商业化生产的关键环节,其核心是通过定期的验证批次数据,监控工艺性能趋势。持续工艺确认的批次要求CPV阶段的批次数量和频率需基于工艺稳定性确定,通常建议:-工艺稳定初期(商业化生产后6个月内):每月1批CPV批次,重点监控关键工艺参数和质量属性的变异;-工艺稳定期(商业化生产6个月后):每季度1批CPV批次,若连续12批数据无异常趋势,可调整为每半年1批;-工艺变更后:若工艺发生重大变更(如更换设备、调整关键参数),需重新进行工艺验证(至少3批验证批次),变更后前3批产品需作为CPV批次监控。CPV批次的生产条件、检测项目与可接受标准应与工艺验证批次一致,重点关注“趋势性偏差”(如连续3批病毒滴度下降10%),即使单个批次数据在可接受标准内,趋势偏差也需启动调查。验证批次的再验证与生命周期管理当以下情况发生时,需启动验证批次的再验证(Re-validation):1.法规要求更新:如NMPA发布新的基因治疗产品质控指导原则,要求增加新的检测项目(如病毒载体的衣壳蛋白分布);2.工艺重大变更:如更换病毒载体生产细胞系、改变纯化工艺路线(如增加新的层析步骤);3.产品质量回顾发现异常:如商业化生产中出现多批次产品纯度下降,需通过再验证批次确认工艺优化效果。再验证的批次要求可参照初始工艺验证,但需基于变更的风险程度适当调整批次数量和规模。例如,若仅更换层析介质(同品牌、同型号,仅批号不同),可通过1批次100%规模的再验证批次确认工艺稳健性;若更换细胞系,则需至少3批次验证批次。06案例分享:CAR-T细胞治疗产品验证批次的实践与挑战案例分享:CAR-T细胞治疗产品验证批次的实践与挑战为更直观地展示基因治疗产品验证批次的要求与实践,以下结合我参与的一个抗CD19CAR-T细胞治疗产品验证批次项目,分享关键经验与挑战。项目背景该产品用于治疗复发/难治性B细胞非霍奇金淋巴瘤,生产工艺包括:T细胞分离→激活→慢病毒转导→扩增→收获→洗涤→冻存。工艺开发阶段已确定关键工艺参数(CPPs):T细胞激活时间(24h)、慢病毒MOI(5)、扩增培养时间(7d)、培养温度(37℃);关键质量属性(CQAs):CAR-T细胞比例(≥80%)、细胞活率(≥90%)、无菌性、细菌内毒素(≤5EU/kg)。验证批次设计1.批次类型与数量:工艺确认批(PV-Batch),连续3批,规模为50L生物反应器(商业化规模为100L,已通过相似性研究证明50L与100L在细胞扩增倍数、活率等方面无显著差异)。2.可接受标准:基于临床样品数据(CAR-T比例85±5%,活率92±3%),设定可接受标准:CAR-T比例≥80%,活率≥90%,无菌性合格,细菌内毒素≤5EU/kg。执行中的挑战与解决方案

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