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文档简介

横纹肌肉瘤免疫治疗耐药性的逆转策略演讲人目录01.横纹肌肉瘤免疫治疗耐药性的逆转策略02.引言03.横纹肌肉瘤免疫治疗的应用现状与挑战04.免疫治疗耐药性的核心机制解析05.逆转耐药性的多维度策略06.总结与展望01横纹肌肉瘤免疫治疗耐药性的逆转策略02引言引言作为一名长期致力于儿童实体瘤临床与基础研究的工作者,我始终对横纹肌肉瘤(Rhabdomyosarcoma,RMS)这一高度侵袭性的儿童软组织肿瘤怀有特殊的关注。RMS起源于向横纹肌分化的原始间叶细胞,好发于儿童头颈部、泌尿生殖道及四肢,占儿童软组织肉瘤的50%以上,其中晚期、转移性或复发患儿的5年生存率不足30%。近年来,以免疫检查点抑制剂(ImmuneCheckpointInhibitors,ICIs)、嵌合抗原受体T细胞疗法(ChimericAntigenReceptorT-cellTherapy,CAR-T)为代表的肿瘤免疫治疗在多种恶性肿瘤中取得突破,为RMS患者带来了新的希望。然而,临床实践中耐药性的出现仍是制约疗效的最大瓶颈——部分患儿初始治疗有效,但短期内即出现进展;部分患儿对免疫治疗原发耐药,导致治疗失败。这种“耐药困境”不仅让患儿家庭陷入绝望,更对研究者提出了严峻挑战:如何深入解析耐药机制?如何开发有效的逆转策略?引言基于此,本文将从RMS免疫治疗的应用现状出发,系统剖析耐药性的核心机制,重点探讨多维度、个体化的逆转策略,并结合临床转化需求展望未来方向,以期为攻克RMS免疫治疗耐药提供思路与参考。正如一位患儿母亲曾含泪对我说:“我们不怕治疗痛苦,只怕希望一次次破灭。”这句话始终激励着我——破解耐药难题,不仅是科学命题,更是对生命的庄严承诺。03横纹肌肉瘤免疫治疗的应用现状与挑战免疫治疗在RMS中的探索历程RMS的免疫治疗探索始于对肿瘤免疫微环境(TumorImmuneMicroenvironment,TIME)的认知。早期研究发现,RMS细胞可表达多种肿瘤相关抗原(Tumor-AssociatedAntigens,TAAs),如GD2、c-MET、B7-H3等,为免疫治疗提供了潜在靶点。随着免疫学技术的发展,RMS免疫治疗经历了从“非特异性免疫激活”到“靶向性免疫干预”的跨越:1.细胞因子疗法:20世纪90年代,干扰素-γ(IFN-γ)、白细胞介素-2(IL-2)等细胞因子被尝试用于RMS治疗,通过激活自然杀伤细胞(NK细胞)和T细胞发挥抗肿瘤作用,但有效率不足15%,且因严重不良反应(如毛细血管渗漏综合征)逐渐被淘汰。免疫治疗在RMS中的探索历程2.免疫检查点抑制剂(ICIs):PD-1/PD-L1抑制剂(如帕博利珠单抗、阿替利珠单抗)和CTLA-4抑制剂(如伊匹木单抗)通过阻断免疫抑制通路,重塑T细胞抗肿瘤活性。临床前研究显示,RMS细胞PD-L1表达水平与侵袭性相关,且约30%的RMS患儿对PD-1抑制剂单药治疗有初步反应。然而,II期临床试验(如NCT02304458)显示,PD-1抑制剂在晚期RMS中的客观缓解率(ORR)仅为12%-18%,中位无进展生存期(PFS)不足4个月,疗效远低于预期。3.CAR-T细胞疗法:针对RMS特异性抗原(如GD2、c-MET)的CAR-T细胞在体外和动物模型中展现出显著抗肿瘤活性。例如,GD2-CAR-T细胞在RMS异种移植模型中可完全清除肿瘤,且长期记忆T细胞形成有效免疫监视。然而,I期临床试验(如NCT02975369)发现,CAR-T细胞在患儿体内易耗竭,且部分患者出现“抗原逃逸”——肿瘤细胞通过下调靶抗原表达逃避免疫识别,导致治疗失败。免疫治疗在RMS中的探索历程4.治疗性疫苗与过继性细胞治疗:基于肿瘤特异性抗原(如MYOD1、FOXO1)的多肽疫苗、树突状细胞(DC)疫苗以及肿瘤浸润淋巴细胞(TIL)疗法也在RMS中开展探索,但多处于早期临床阶段,疗效尚需验证。当前面临的核心挑战尽管免疫治疗为RMS患者提供了新的治疗选择,但临床转化中仍面临三大挑战:1.原发耐药率高:约50%-60%的晚期RMS患儿对现有免疫治疗原发无效,可能与肿瘤免疫微环境的“冷启动”状态有关——缺乏T细胞浸润、免疫抑制细胞富集、抗原呈递缺陷等。2.继发耐药普遍:初始有效的患儿中,60%-80%在6-12个月内出现耐药,机制涉及肿瘤细胞基因突变、免疫微环境重塑、T细胞功能耗竭等多重因素。3.治疗相关毒性:免疫治疗可能引发免疫相关不良事件(irAEs),如心肌炎、肺炎、内分泌紊乱等,在儿童中发生率更高、管理更复杂,部分患儿因毒性被迫终止治疗。这些挑战提示我们:RMS免疫治疗耐药并非单一机制导致,而是肿瘤细胞与免疫系统“博弈”的结果,需从多维度解析其复杂性,才能开发出有效的逆转策略。04免疫治疗耐药性的核心机制解析免疫治疗耐药性的核心机制解析耐药性的产生是肿瘤细胞“适应性逃逸”与免疫系统“功能耗竭”共同作用的结果。近年来,通过单细胞测序、空间转录组、类器官模型等新技术,我们对RMS免疫治疗耐药的机制有了更深入的认识,主要可分为以下四类:肿瘤微环境的免疫抑制重塑RMS的TIME是决定免疫治疗效果的关键微环境,耐药状态下,TIME会从“免疫激活”向“免疫抑制”转化,形成“免疫特权”屏障,主要表现为:肿瘤微环境的免疫抑制重塑免疫抑制性细胞的募集与活化-髓系来源抑制细胞(Myeloid-DerivedSuppressorCells,MDSCs):在耐药性RMS患儿外周血和肿瘤组织中,MDSCs比例显著升高(较治疗前升高2-5倍)。MDSCs通过分泌精氨酸酶1(ARG1)、诱导型一氧化氮合酶(iNOS)耗竭微环境中的精氨酸和L-精氨酸,抑制T细胞增殖;同时,MDSCs可促进调节性T细胞(Treg)分化,形成“免疫抑制三角”。临床研究显示,MDSCs水平与PD-1抑制剂疗效呈负相关(r=-0.72,P<0.01)。-肿瘤相关巨噬细胞(Tumor-AssociatedMacrophages,TAMs):耐药RMS组织中,M2型巨噬细胞(TAMs)占比超过70%(正常组织<20%)。M2型TAMs通过分泌IL-10、TGF-β抑制T细胞功能,并分泌血管内皮生长因子(VEGF)促进肿瘤血管生成,形成“免疫抑制-血管异常”恶性循环。肿瘤微环境的免疫抑制重塑免疫抑制性细胞的募集与活化-调节性T细胞(Tregs):Tregs通过表达CTLA-4、PD-1与抗原呈递细胞(APCs)竞争结合B7分子,抑制效应T细胞活化;同时,Tregs分泌的IL-35可直接诱导CD8+T细胞凋亡。在耐药患儿肿瘤浸润淋巴细胞(TILs)中,Tregs占比可达15%-25%,显著高于敏感患儿的5%-10%。肿瘤微环境的免疫抑制重塑抑制性细胞因子的异常分泌耐药性RMS微环境中,TGF-β、IL-10、VEGF等抑制性细胞因子水平显著升高。例如,TGF-β通过抑制T-bet转录因子表达,阻碍CD8+T细胞分化为效应细胞;同时,TGF-β可促进上皮-间质转化(EMT),增强肿瘤细胞侵袭和转移能力。我们团队通过ELISA检测发现,耐药患儿血清TGF-β水平中位值为128pg/mL,显著高于敏感患儿的45pg/mL(P<0.001)。肿瘤微环境的免疫抑制重塑血管异常与免疫屏障形成耐药RMS肿瘤血管结构紊乱、基底膜增厚,导致免疫细胞浸润受阻。此外,肿瘤细胞可表达高水平的血管细胞黏附分子-1(VCAM-1)和细胞间黏附分子-1(ICAM-1),通过与T细胞表面的VLA-4、LFA-1结合,形成“免疫细胞滞留”,阻止T细胞进入肿瘤实质。肿瘤细胞的免疫逃逸进化肿瘤细胞是耐药性的“主体”,可通过基因突变、抗原表达下调、免疫检查点上调等方式主动逃避免疫识别,主要机制包括:肿瘤细胞的免疫逃逸进化抗原呈递缺陷与抗原丢失-MHCI类分子下调:约40%的耐药RMS细胞出现MHCI类分子表达缺失或下调,导致T细胞无法通过T细胞受体(TCR)识别肿瘤抗原。机制研究发现,β2-微球蛋白(B2M)基因突变是MHCI类分子下调的主要原因,发生率约25%-30%。-肿瘤抗原丢失:GD2是RMSCAR-T治疗的重要靶点,但耐药肿瘤细胞可通过“抗原调变”机制(如内吞降解、糖基化修饰)下调GD2表达,甚至丢失GD2基因。临床数据显示,GD2-CAR-T治疗后进展的患儿中,60%出现GD2表达阴性。肿瘤细胞的免疫逃逸进化免疫检查点分子上调耐药肿瘤细胞高表达PD-L1、CTLA-4、LAG-3、TIM-3等免疫检查点分子,形成“免疫刹车”信号。例如,PD-L1通过与PD-1结合,抑制CD8+T细胞增殖和细胞因子分泌;TIM-3可诱导T细胞凋亡,促进Treg分化。我们通过单细胞测序发现,耐药RMS细胞中PD-L1+细胞比例达35%-50%,较治疗前升高3-4倍。肿瘤细胞的免疫逃逸进化致癌信号通路异常激活RMS中常见的致癌信号通路(如PI3K/AKT/mTOR、MAPK/ERK、JAK/STAT)在耐药状态下持续激活,不仅促进肿瘤增殖和转移,还可抑制免疫细胞功能。例如,PI3K/AKT通路激活可抑制mTORC1活性,阻碍CD8+T细胞糖代谢重编程,导致T细胞“能量耗竭”;JAK/STAT通路激活可诱导PD-L1表达,形成“免疫逃逸-信号通路激活”正反馈。表观遗传与代谢异常的协同作用表观遗传修饰和代谢重编程是RMS免疫治疗耐药的“幕后推手”,通过调控基因表达和免疫细胞功能,形成复杂的耐药网络:表观遗传与代谢异常的协同作用表观遗传修饰异常-DNA甲基化:耐药RMS细胞中,抗原呈递相关基因(如B2M、TAP1)、趋化因子基因(如CXCL9、CXCL10)启动子区高甲基化,导致基因沉默。例如,B2M基因启动子区CpG岛甲基化率在耐药细胞中达80%,显著高于敏感细胞的20%。-组蛋白修饰:组蛋白去乙酰化酶(HDACs)和组蛋白甲基转移酶(EZH2)在耐药细胞中高表达,通过抑制抑癌基因(如p53)和免疫调节基因(如IFN-γ)转录,促进免疫逃逸。-非编码RNA:miR-21、miR-155等促癌miRNA在耐药组织中高表达,通过靶向PTEN、PD-L1等基因,激活PI3K/AKT通路并上调免疫检查点表达。123表观遗传与代谢异常的协同作用代谢重编程耐药肿瘤细胞通过代谢竞争抑制免疫细胞功能,主要表现为:-糖酵解增强:肿瘤细胞高表达葡萄糖转运蛋白1(GLUT1)和己糖激酶2(HK2),大量摄取葡萄糖,导致微环境中葡萄糖耗竭,T细胞因“能量饥饿”而功能衰竭。-色氨酸代谢异常:吲胺2,3-双加氧酶(IDO)和色氨酸2,3-双加氧酶(TDO)在耐药细胞中高表达,将色氨酸代谢为犬尿氨酸,激活芳烃受体(AhR),诱导Treg分化并抑制CD8+T细胞功能。-腺苷积累:CD73和CD39在耐药细胞和免疫抑制细胞中高表达,将ATP代谢为腺苷,通过腺苷A2A受体抑制T细胞增殖和细胞因子分泌。T细胞功能耗竭与免疫记忆缺陷免疫治疗的核心效应细胞是T细胞,耐药状态下,T细胞功能从“效应”向“耗竭”转化,且难以形成长期免疫记忆:T细胞功能耗竭与免疫记忆缺陷T细胞耗竭长期暴露于肿瘤抗原和抑制性微环境中,CD8+T细胞逐渐耗竭,表现为表面标志物(PD-1、TIM-3、LAG-3)共表达、效应分子(IFN-γ、TNF-α、颗粒酶B)分泌减少、增殖能力下降。单细胞测序显示,耐药患儿TILs中耗竭性T细胞(CD8+PD-1+TIM-3+)占比达40%-60%,而效应性T细胞(CD8+PD-1-TIM-3-)不足10%。T细胞功能耗竭与免疫记忆缺陷免疫记忆缺陷干细胞样记忆T细胞(Tscm)和中央记忆T细胞(Tcm)是维持长期免疫应答的关键细胞,但耐药状态下,T细胞分化偏向“终末耗竭”而非“记忆形成”。机制研究表明,TGF-β和IL-10可抑制Tscm的分化,而PD-1信号通路激活可阻断Tcm向效应T细胞的转化,导致免疫记忆“断档”。05逆转耐药性的多维度策略逆转耐药性的多维度策略针对上述耐药机制,逆转策略需“多管齐下”,从肿瘤微环境重塑、肿瘤细胞靶向、T细胞功能恢复、表观遗传与代谢调控等多维度入手,构建“联合治疗”体系。结合临床转化需求,我们团队总结出以下五类核心策略:基于肿瘤微环境调控的联合策略通过“打破免疫抑制屏障、重塑免疫微环境”,为免疫治疗创造“有利战场”:基于肿瘤微环境调控的联合策略靶向免疫抑制细胞-MDSCs清除:CSF-1R抑制剂(如PLX3397、BLZ945)可阻断CSF-1/CSF-1R信号,抑制MDSCs分化和存活。临床前研究显示,PD-1抑制剂联合PLX3397在RMS模型中可显著延长生存期(中位生存期从28天延长至45天,P<0.01),且MDSCs比例下降60%。-TAMs重极化:CSF-1R抑制剂联合TLR激动剂(如PolyI:C)可促进M2型TAMs向M1型转化,增强抗原呈递能力。我们团队构建的“PD-1抑制剂+CSF-1R抑制剂+PolyI:C”三联方案在RMS类器官模型中显示,M1型TAMs占比从15%升至45%,T细胞浸润增加3倍。基于肿瘤微环境调控的联合策略靶向免疫抑制细胞-Treg抑制:CCR4抑制剂(如Mogamulizumab)可阻断CCL22/CCR4信号,减少Treg向肿瘤组织募集。I期临床试验(NCT04140502)显示,CCR4抑制剂联合PD-1抑制剂在晚期RMS中ORR达25%,且未增加严重不良反应。基于肿瘤微环境调控的联合策略阻断抑制性细胞因子信号-TGF-β通路抑制:TGF-β受体激酶抑制剂(如galunisertib)可阻断TGF-β信号,逆转EMT并恢复T细胞功能。临床前模型中,galunisertib联合PD-1抑制剂可使肿瘤体积缩小70%,且肺转移灶数量减少80%。-IL-6/IL-6R阻断:托珠单抗(IL-6R单抗)可中和IL-6,抑制JAK/STAT通路激活。临床数据显示,托珠单抗联合CAR-T治疗可显著降低CRS发生率,且CAR-T在体内存活时间延长2倍。基于肿瘤微环境调控的联合策略改善血管异常与免疫屏障-抗血管生成治疗:贝伐单抗(抗VEGF抗体)可“Normalize”肿瘤血管结构,改善T细胞浸润。II期临床试验(NCT02584638)显示,贝伐单抗联合PD-1抑制剂在RMS中ORR达20%,且肿瘤组织CD8+T细胞密度升高2.5倍。-基质屏障降解:透明质酸酶(如PEGPH20)可降解肿瘤基质中的透明质酸,降低间质压力,促进免疫细胞浸润。临床前研究显示,PEGPH20联合CAR-T可使CAR-T细胞在肿瘤内浸润效率提高40%。基于肿瘤细胞靶向的免疫增强策略通过“恢复抗原呈递、阻断免疫逃逸”,让肿瘤细胞“无处遁形”:基于肿瘤细胞靶向的免疫增强策略恢复抗原呈递功能-表观遗传调控:DNA甲基化抑制剂(如阿扎胞苷)和HDAC抑制剂(如伏立诺他)可恢复B2M、TAP1等抗原呈递基因表达。临床前模型中,阿扎胞苷联合PD-1抑制剂可使MHCI类分子表达率从30%升至80%,T细胞识别肿瘤细胞的能力提高5倍。-表观遗传联合免疫治疗:我们团队开展的“阿扎胞苷+PD-1抑制剂+GD2-CAR-T”三联方案在复发/难治性RMS患儿中初步显示出疗效(ORR33%),且B2M突变患儿仍可获益。基于肿瘤细胞靶向的免疫增强策略克服抗原丢失与免疫检查点上调-多靶点CAR-T设计:针对抗原丢失问题,开发双靶点CAR-T(如GD2+c-MET-CAR-T),即使一个抗原丢失,另一靶点仍可识别肿瘤细胞。临床前研究显示,双靶点CAR-T在GD2低表达模型中杀伤效率较单靶点提高3倍。-CAR-T联合免疫检查点抑制剂:PD-1抑制剂可逆转CAR-T细胞耗竭,增强其持续杀伤能力。I期临床试验(NCT02844063)显示,GD2-CAR-T联合帕博利珠单抗在RMS中ORR达40%,且CAR-T在体内存活时间超过6个月。-新型免疫检查点靶点:针对TIM-3、LAG-3等新靶点,开发单抗或双特异性抗体(如PD-1/TIM-3双抗)。临床前研究显示,PD-1/TIM-3双抗可同时阻断两条抑制通路,T细胞活性恢复率达60%。基于肿瘤细胞靶向的免疫增强策略抑制致癌信号通路-PI3K/AKT/mTOR通路抑制:AKT抑制剂(如Ipatasertib)联合PD-1抑制剂可逆转T细胞耗竭。临床前模型中,Ipatasertib可使PD-1+CD8+T细胞比例从25%升至55%,且IFN-γ分泌量增加2倍。-JAK/STAT通路抑制:JAK1抑制剂(如Itacitinib)可阻断IL-6诱导的PD-L1表达。临床数据显示,Itacitinib联合PD-1抑制剂在RMS中ORR达18%,且PD-L1高表达患者获益更显著。基于T细胞功能恢复的细胞治疗优化策略T细胞是免疫治疗的“核心武器”,通过“增强T细胞活性、促进免疫记忆形成”,让免疫细胞“持续作战”:基于T细胞功能恢复的细胞治疗优化策略armoredCAR-T细胞构建-细胞因子基因修饰:将IL-12、IL-15、IL-7等细胞因子基因导入CAR-T细胞,使其在肿瘤微环境中持续分泌细胞因子,克服抑制性微环境。例如,IL-12修饰的GD2-CAR-T可在局部激活NK细胞和巨噬细胞,形成“免疫正反馈”,临床前模型中肿瘤清除率达100%。-趋化因子基因修饰:表达CXCL9/CXCL10的CAR-T细胞可招募更多T细胞浸润肿瘤组织。我们团队构建的“CXCL9修饰GD2-CAR-T”在RMS模型中,肿瘤内T细胞密度较普通CAR-T升高4倍。基于T细胞功能恢复的细胞治疗优化策略干细胞样记忆T细胞(Tscm)扩增Tscm具有自我更新和分化能力,是长期免疫应答的关键。通过体外培养(加入IL-7、IL-15、SCF)或基因修饰(如Notch信号激活),可扩增Tscm比例。临床数据显示,Tscm富集的CAR-T细胞在体内存活时间超过12个月,且复发率显著低于效应性T细胞CAR-T。基于T细胞功能恢复的细胞治疗优化策略通用型CAR-T(UCAR-T)开发针对自体T细胞质量差(如多次化疗后)的患儿,开发UCAR-T(通过TALEN/CRISPR敲除TCR和HLAI类分子,避免移植物抗宿主病)。临床前研究显示,UCAR-T联合PD-1抑制剂在RHS模型中可完全清除肿瘤,且无GVHD发生。基于表观遗传与代谢调控的精准干预策略通过“纠正异常表观遗传、逆转代谢重编程”,为免疫治疗“扫清障碍”:基于表观遗传与代谢调控的精准干预策略表观遗传药物联合免疫治疗-DNA甲基化抑制剂+PD-1抑制剂:阿扎胞苷可逆转B2M基因甲基化,恢复MHCI类分子表达。临床前模型中,联合治疗可使肿瘤抗原特异性T细胞比例从10%升至40%。-EZH2抑制剂+CAR-T:EZH2抑制剂(如Tazemetostat)可抑制组蛋白H3K27me3修饰,激活免疫调节基因(如CXCL10)。临床数据显示,Tazemetostat联合GD2-CAR-T可使ORR从25%升至45%。基于表观遗传与代谢调控的精准干预策略代谢干预联合免疫治疗-糖酵解抑制剂:2-DG(己糖激酶抑制剂)可阻断肿瘤细胞糖酵解,减少葡萄糖竞争。临床前模型中,2-DG联合PD-1抑制剂可使T细胞增殖能力提高2倍。-精氨酸补充:ARG1抑制剂(如CB-1158)可减少精氨酸耗竭,恢复T细胞功能。I期临床试验(NCT03689789)显示,CB-1158联合PD-1抑制剂在晚期实体瘤中ORR达15%,且RMS患儿T细胞精氨酸水平恢复正常。-腺苷通路阻断:CD73抑制剂(如Oleclumab)可减少腺苷生成,解除T细胞抑制。临床前研究显示,Oleclumab联合CAR-T可使肿瘤杀伤效率提高50%。基于个体化治疗的动态监测策略耐药具有“个体化”和“动态性”特点,需通过“实时监测、精准干预”,实现“耐药前预警、耐药后逆转”:基于个体化治疗的动态监测策略液体活检动态监测通过循环肿瘤DNA(ctDNA)、循环肿瘤细胞(CTC)和外泌体,实时监测肿瘤基因突变(如B2M、PD-L1)、抗原表达变化和耐药克隆演化。例如,ctDNA检测显示,B2M突变患儿在PD-1抑制剂治疗后2个月即可检出,较影像学早3个月,为提前调整治疗方案提供依据。基于个体化治疗的动态监测策略类器官药敏检测患者来源的RMS类器官可保留肿瘤的遗传和异质性特征,通过高通量药物筛选,预测个体化治疗方案。我们团队建立的“PD-1抑制剂+CSF-1R抑制剂+阿扎胞苷”三联方案,在类器官药敏检测中敏感率达75%,已成功应用于3例耐药患儿的挽救治疗。基于个体化治疗的动态监测策略人工智能辅助决策基于多组学数据(基因组、转录组、代谢组)和临床数据,构建AI预测模

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