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肿瘤代谢组学与靶点富集的关联性演讲人CONTENTS肿瘤代谢组学与靶点富集的关联性引言:肿瘤代谢研究的时代背景与核心命题临床转化应用:从“代谢靶点”到“精准治疗”的实践探索挑战与展望:从“单一维度”到“系统整合”的未来方向结论:代谢组学与靶点富集——肿瘤精准治疗的双轮驱动目录01肿瘤代谢组学与靶点富集的关联性02引言:肿瘤代谢研究的时代背景与核心命题引言:肿瘤代谢研究的时代背景与核心命题在肿瘤研究的漫长历程中,代谢重编程(MetabolicReprogramming)作为癌症的十大特征之一,已从传统的“Warburg效应”假说发展为涵盖糖、脂、氨基酸、核苷酸等多维度代谢网络的复杂调控体系。随着高通量组学技术的迭代与系统生物学方法的引入,肿瘤代谢组学(CancerMetabolomics)——即对肿瘤组织及微环境中小分子代谢物(分子量<1000Da)进行系统性表征与功能解析的学科,正成为揭示肿瘤发生发展机制、寻找诊疗靶点的关键突破口。与此同时,靶点富集(TargetEnrichment)作为连接分子机制与临床转化的桥梁,其核心在于从海量分子数据中识别并聚焦具有生物学意义或治疗潜力的关键分子节点(如代谢酶、转运体、信号分子等)。引言:肿瘤代谢研究的时代背景与核心命题然而,肿瘤代谢的异质性与动态性给靶点富集带来了巨大挑战:同一肿瘤类型的不同亚型可能存在截然不同的代谢依赖性,同一肿瘤在不同发展阶段(原发、转移、耐药)的代谢图谱亦会动态演变。在此背景下,深入解析肿瘤代谢组学与靶点富集的内在关联,不仅有助于从代谢网络层面理解肿瘤“代谢-表型”的调控逻辑,更能为精准靶向治疗提供理论依据与策略指导。作为一名长期从事肿瘤代谢机制研究的工作者,我在实验室中曾无数次通过质谱检测到肿瘤组织中异常积累的代谢物,也曾在动物模型中验证过靶向代谢酶对肿瘤生长的显著抑制——这些经历让我深刻体会到:代谢组学描绘的“代谢图谱”是靶点富集的“导航图”,而靶点富集则是将代谢知识转化为临床价值的“解码器”。本文将从肿瘤代谢组学的核心特征、靶点富集的理论基础、两者的关联机制、临床转化应用及未来挑战五个维度,系统阐述这一命题的科学内涵与实践意义。引言:肿瘤代谢研究的时代背景与核心命题二、肿瘤代谢组学的核心特征:从“单一通路”到“网络调控”的认知深化肿瘤代谢组学的本质是对肿瘤细胞“代谢状态”的全面刻画,其技术核心包括样本采集(组织、血液、尿液等)、代谢物分离(色谱法)、检测(质谱、核磁共振)及数据解析(生物信息学)。经过数十年的发展,我们对肿瘤代谢的认知已从“糖酵解增强”的单一维度,拓展为多代谢通路交叉、时空异质动态的复杂网络。糖代谢重编程:供能与合成的双重失衡葡萄糖是肿瘤细胞最主要的碳源和能源,其代谢重编程的核心表现为“有氧糖酵解”(Warburg效应)的显著增强——即使在氧气充足条件下,肿瘤细胞仍优先通过糖酵解将葡萄糖转化为乳酸,而非通过氧化磷酸化(OXPHOS)彻底分解供能。这一现象并非“低效”,而是具有明确的生物学优势:一方面,糖酵解产生的ATP速率更快,可满足肿瘤细胞快速增殖的即时能量需求;另一方面,糖酵解中间产物(如6-磷酸葡萄糖、3-磷酸甘油醛)可进入磷酸戊糖途径(PPP)生成NADPH(还原力)和核糖(核酸合成原料),或通过丝氨酸/甘氨酸分支支持一碳代谢,为生物大分子合成提供前体物质。在代谢组学数据中,Warburg效应的直接体现是肿瘤组织中乳酸、丙酮酸等糖酵解终产物的显著积累,以及葡萄糖-6-磷酸、果糖-6-磷酸等中间代谢物的水平升高。例如,通过液相色谱-质谱(LC-MS)检测肝癌患者肿瘤组织,糖代谢重编程:供能与合成的双重失衡可观察到乳酸含量较癌旁组织升高3-5倍,同时PPP的关键中间产物6-磷酸葡萄糖酸水平亦显著增加。值得注意的是,肿瘤细胞的糖代谢并非孤立存在,而是与脂代谢、氨基酸代谢紧密耦合:糖酵解产生的甘油-3-磷酸是合成甘油磷脂的前体,而丙酮酸羧化酶(PC)可将丙酮酸转化为草酰乙酸,补充三羧酸循环(TCA循环)的中间产物,支持氨基酸合成。脂质代谢异常:膜结构与信号分子的双重需求脂质是细胞膜的基本组成成分,也是重要的信号分子(如前列腺素、脂质介质)和能量储备形式。肿瘤细胞对脂质的需求远超正常细胞,表现为脂质合成、摄取与分解的全面增强。在代谢组学层面,这一特征可通过多种脂质类别的变化体现:1.磷脂:作为细胞膜的主要成分,磷脂的合成速率直接影响肿瘤细胞的增殖与转移。通过电喷雾电离质谱(ESI-MS)检测,乳腺癌组织中磷脂酰胆碱(PC)、磷脂酰乙醇胺(PE)等磷脂含量较正常组织升高20%-40%,且不饱和脂肪酸比例增加(如油酸、亚油酸),以维持细胞膜的流动性与通透性,促进肿瘤细胞迁移。2.胆固醇酯:胆固醇不仅是细胞膜的组成成分,还可作为合成类固醇激素和脂质筏的关键组分。代谢组学研究发现,前列腺癌组织中胆固醇酯水平显著升高,且与肿瘤进展呈正相关——这一现象与胆固醇酯化酶ACAT1的表达上调密切相关,提示胆固醇酯化可能是潜在的治疗靶点。脂质代谢异常:膜结构与信号分子的双重需求3.脂肪酸:肿瘤细胞可通过去饱和酶(如SCD1)将饱和脂肪酸转化为单不饱和脂肪酸,以抵抗氧化应激;也可通过脂肪酸合成酶(FASN)从头合成脂肪酸,满足快速增殖的需求。例如,在黑色素瘤中,FASN抑制剂(如奥利司他)可通过抑制棕榈酸合成,诱导肿瘤细胞凋亡。氨基酸代谢重编程:氮源与碳源的动态平衡氨基酸不仅是蛋白质合成的原料,更是氮源、碳源及能量供应的重要载体。肿瘤细胞对氨基酸的代谢具有显著的“偏好性”,其中谷氨酰胺(Glutamine)、丝氨酸(Serine)、甘氨酸(Glycine)等氨基酸的代谢异常尤为突出。1.谷氨酰胺代谢:作为肿瘤细胞“必需氨基酸”(尽管谷氨酰胺并非必需氨基酸,但在肿瘤中其合成与摄取显著增强),谷氨酰胺可通过转氨基作用生成α-酮戊二酸(α-KG),补充TCA循环的中间产物(“谷氨酰胺解”);也可通过谷氨酰胺酶(GLS)转化为谷氨酸,进一步生成谷胱甘肽(GSH),以清除活性氧(ROS)。代谢组学分析显示,胶质母细胞瘤患者脑脊液中谷氨酰胺水平降低,而谷氨酸、α-KG水平升高,提示谷氨酰胺代谢的活跃程度与肿瘤负荷相关。氨基酸代谢重编程:氮源与碳源的动态平衡2.丝氨酸/甘氨酸代谢:丝氨酸可通过丝氨酸羟甲基转移酶(SHMT)转化为甘氨酸,后者参与一碳代谢,为核苷酸(嘌呤、嘧啶)合成提供甲基和亚甲基。在肺癌中,丝氨酸合成途径(SSP)的关键酶——3-磷酸甘油酸脱氢酶(PHGDH)常被扩增,导致丝氨酸水平升高;抑制PHGDH可显著降低肿瘤细胞内的核苷酸pool,抑制DNA合成与细胞增殖。核苷酸代谢:增殖与复制的物质基础肿瘤细胞的高增殖率依赖大量核苷酸的合成,因此嘌呤与嘧啶代谢通路在肿瘤中常处于激活状态。代谢组学可通过检测核苷酸前体(如磷酸核糖焦磷酸PRPP、氨基咪唑核糖苷酸AICAR)及终产物(ATP、GTP、dCTP等)的变化,反映核苷酸代谢的活跃程度。例如,在慢性粒细胞白血病中,BCR-ABL融合蛋白可通过上调PRPP合成酶(PRPS1)激活嘌呤合成,导致ATP/ADP比值升高;而抑制PRPS1可显著降低ATP水平,诱导肿瘤细胞凋亡。三、靶点富集的理论基础:从“海量数据”到“关键节点”的策略聚焦靶点富集是指在复杂的分子网络中,通过统计学与生物学方法识别并筛选具有特定功能或临床意义的靶点集合的过程。在肿瘤代谢研究中,靶点富集的核心目标是从代谢组学数据中挖掘出“驱动性代谢靶点”——即那些通过调控可显著影响肿瘤恶性表型(增殖、转移、耐药等)的分子节点。靶点富集的生物学前提:代谢网络的“脆弱性”与“依赖性”肿瘤细胞的代谢重编程并非“无序增强”,而是具有明确的“代谢依赖性”(MetabolicAddiction)——即对特定代谢通路或酶的过度依赖,这种依赖性源于肿瘤细胞基因突变(如TP53、KRAS)与微环境压力(缺氧、营养匮乏)共同塑造的“代谢脆弱点”(MetabolicVulnerability)。例如,TP53突变细胞常失去TCA循环的关键调控能力,对谷氨酰胺解的依赖显著增加;KRAS突变细胞则通过上调SLC7A5(氨基酸转运体)增强氨基酸摄取,支持丝氨酸/甘氨酸代谢。代谢组学可通过“代谢通量分析”(MetabolicFluxAnalysis)与“代谢物-基因关联分析”识别这些依赖性:例如,通过13C同位素标记的葡萄糖示踪,可观察到KRAS突变胰腺癌细胞中葡萄糖流向丝氨酸合成的通量显著增加,提示SHMT1可能是潜在靶点;而代谢组学检测到肿瘤组织中2-羟基戊二酸(2-HG)积累,则提示异柠檬酸脱氢酶(IDH1/2)突变可能驱动该代谢异常,IDH1/2抑制剂(如Ivosidenib)已在IDH突变白血病中取得显著疗效。靶点富集的生物学前提:代谢网络的“脆弱性”与“依赖性”(二)靶点富集的统计学方法:从“差异表达”到“通路富集”的层级筛选靶点富集通常遵循“从数据到假设”的逻辑,可分为三个层级:1.差异代谢物筛选:通过非参数检验(如Mann-WhitneyU检验)、倍数变化(FoldChange)等方法,识别肿瘤与正常组织、不同肿瘤亚型或不同治疗响应组间存在显著差异的代谢物(如P<0.05,|log2FC|>1)。例如,通过LC-MS检测结直肠癌组织,可发现色氨酸代谢产物犬尿氨酸(Kynurenine)水平显著升高,且与患者预后不良相关。2.代谢通路富集分析:将差异代谢物映射到KEGG、Reactome等代谢通路数据库,通过超几何检验或Fisher精确检验,识别富集的代谢通路(如P<0.05,FDR<0.1)。例如,差异代谢物富集到“糖酵解/糖异生”通路,提示该通路可能在肿瘤中发挥关键作用。靶点富集的生物学前提:代谢网络的“脆弱性”与“依赖性”3.关键靶点识别:结合代谢通路富集结果与基因表达数据(如RNA-seq)、蛋白质组学数据,识别通路中的关键酶或调控分子。例如,在糖酵解通路中,己糖激酶2(HK2)、磷酸果糖激酶1(PFK1)、乳酸脱氢酶A(LDHA)等酶的表达与活性常与肿瘤进展相关,可作为潜在靶点。靶点富集的验证策略:体外与体内的功能确证代谢组学数据筛选得到的潜在靶点需通过多层级验证以确证其生物学功能:1.体外功能实验:通过基因敲低(siRNA/shRNA)或过表达(质粒转染)调控靶点表达,检测肿瘤细胞增殖、凋亡、迁移等表型变化,以及代谢物谱的改变。例如,敲低肝癌细胞中的LDHA,可显著降低乳酸产生,抑制细胞增殖,并上调促凋亡蛋白CleavedCaspase-3的表达。2.体内动物模型验证:构建裸鼠移植瘤或基因工程小鼠模型(如KPC模型用于胰腺癌研究),通过靶向抑制剂(如2-DG抑制HK2)或基因敲除,观察肿瘤生长、转移及代谢物变化。例如,在GLS抑制剂(如CB-839)治疗的胰腺癌小鼠模型中,肿瘤组织中谷氨酰胺水平显著升高,而α-KG水平降低,同时肿瘤生长抑制率达50%以上。靶点富集的验证策略:体外与体内的功能确证3.临床样本验证:通过免疫组化(IHC)、Westernblot等方法检测靶点在临床肿瘤组织中的表达水平,分析其与患者预后、临床病理特征的相关性。例如,PHGDH在乳腺癌组织中的高表达与淋巴结转移、TNM分期呈正相关,且无病生存期(DFS)显著缩短。四、肿瘤代谢组学与靶点富集的关联机制:从“代谢图谱”到“靶向策略”的转化逻辑肿瘤代谢组学与靶点富集的关联并非简单的“数据-靶点”对应关系,而是基于代谢网络调控逻辑的深度耦合。理解这种关联机制,是实现从基础研究到临床转化的重要前提。(一)代谢重编程驱动靶点富集:代谢物作为信号分子调控靶点表达与活性代谢物不仅是代谢通路的“产物”,更是信号转导的“介质”,可通过多种方式调控靶点的表达与活性:靶点富集的验证策略:体外与体内的功能确证1.代谢物作为转录因子辅因子:某些代谢物可直接与转录因子结合,调控其活性与靶基因表达。例如,琥珀酸(TCA循环中间产物)在缺氧条件下积累,可抑制脯氨酰羟化酶(PHD),从而稳定缺氧诱导因子-1α(HIF-1α);HIF-1α作为“代谢总开关”,可上调GLUT1(葡萄糖转运体)、HK2、LDHA等糖酵解相关基因的表达,驱动靶点富集。又如,α-KG作为表观遗传修饰酶(如TET、JmjC结构域组蛋白去甲基化酶)的辅因子,其水平降低(如IDH突变导致2-HG积累)可抑制组蛋白去甲基化,导致促癌基因异常激活。2.代谢物通过翻译后修饰调控靶点活性:代谢物可作为底物参与蛋白质的翻译后修饰(如乙酰化、泛素化),直接影响靶点的稳定性与活性。例如,乙酰辅酶A(Acetyl-CoA)是蛋白质乙酰化的供体,在肿瘤中Acetyl-CoA水平升高,靶点富集的验证策略:体外与体内的功能确证可激活乙酰转移酶p300,促进糖酵解关键酶PFK1的乙酰化,增强其活性;而Sirtuin家族蛋白(依赖NAD+去乙酰化酶)可通过去乙酰化抑制PFK1活性,其活性受NAD+/NADH比值调控——这一“代谢-修饰-活性”轴揭示了代谢物对靶点的直接调控作用。靶点富集反向调控代谢网络:靶向干预重塑代谢表型一旦关键靶点被富集并验证,靶向干预可通过“阻断依赖通路”或“补偿性通路激活”重塑肿瘤代谢网络,进而抑制肿瘤生长:1.直接阻断代谢通路:通过小分子抑制剂、抗体或RNA干扰等技术,靶向抑制关键代谢酶或转运体,阻断代谢物流向。例如,FASN抑制剂(如TVB-2640)可抑制棕榈酸合成,诱导内质网应激和细胞凋亡,在临床试验中显示出对乳腺癌、前列腺癌的疗效;氨基酸转运体抑制剂(如V-9302,靶向SLC7A5)可减少谷氨氨酸摄取,抑制mTORC1信号通路,阻断肿瘤细胞增殖。2.触发“代谢崩溃”与补偿性通路抑制:单一靶点干预可能导致“代谢瓶颈”,触发补偿性通路激活,需联合靶向多个靶点以增强疗效。例如,抑制糖酵解关键酶HK2可导致ATP生成减少,但同时会激活AMPK信号,促进脂肪酸氧化(FAO)以代偿能量供应;此时联合FAO抑制剂(如Etomoxir),可显著增强HK2抑制剂的抗肿瘤效果。靶点富集反向调控代谢网络:靶向干预重塑代谢表型(三)时空异质性对关联性的影响:肿瘤进展与微环境动态调控靶点富集肿瘤代谢具有显著的时空异质性,这种异质性直接影响靶点富集的结果与策略:1.原发灶与转移灶的代谢差异:转移灶的代谢表型常与原发灶不同,导致靶点富集结果存在差异。例如,乳腺癌原发灶依赖糖酵解,而骨转移灶常通过“骨-肿瘤代谢偶联”增强谷氨酰胺解,此时靶向GLS可能对转移灶更有效。2.肿瘤微环境(TME)的代谢相互作用:肿瘤相关成纤维细胞(CAFs)、肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)等基质细胞可通过代谢物交换(如CAFs分泌乳酸供肿瘤细胞氧化磷酸化)影响肿瘤代谢靶点富集。例如,在胰腺癌中,CAFs通过分泌丙氨酸支持TCA循环,靶向丙氨酸转运体(SLC1A4)可破坏这一代谢偶联,抑制肿瘤生长。靶点富集反向调控代谢网络:靶向干预重塑代谢表型3.治疗诱导的代谢适应性:化疗、放疗、靶向治疗等治疗手段可重塑肿瘤代谢,导致靶点富集动态变化。例如,吉西他滨(核苷类似物化疗药)治疗后的胰腺癌细胞会上调嘧啶合成通路关键酶DHFR,此时联合DHFR抑制剂(如甲氨蝶呤)可增强疗效。03临床转化应用:从“代谢靶点”到“精准治疗”的实践探索临床转化应用:从“代谢靶点”到“精准治疗”的实践探索肿瘤代谢组学与靶点富集的关联研究已逐步从实验室走向临床,在肿瘤诊断、预后判断、治疗靶点发现及药物研发等方面展现出巨大潜力。基于代谢组学的肿瘤诊断与预后标志物代谢组学检测的“无创性”与“高敏感性”使其成为肿瘤诊断标志物的理想来源。例如:-肺癌:通过气相色谱-质谱(GC-MS)检测呼出气冷凝液(EBC),发现醛类化合物(如己醛、庚醛)水平显著升高,对肺癌诊断的敏感性和特异性分别达85%和78%;-结直肠癌:液相色谱-质谱(LC-MS)检测粪便代谢物,发现胆汁酸(如脱氧胆酸)与次级胆汁酸的比值升高,与结直肠癌风险增加显著相关;-前列腺癌:磁共振波谱(MRS)检测前列腺组织中Citrate、Cho(胆碱)、Cr(肌酸)的比值,Citrate/Cho比值降低可作为前列腺癌诊断的重要依据。基于代谢组学的肿瘤诊断与预后标志物在预后判断方面,代谢组学标志物可补充传统临床病理指标的不足。例如,胶质母细胞瘤患者脑脊液中2-羟基戊二酸(2-HG)水平升高与IDH突变相关,而IDH突变患者预后显著优于野生型;乳腺癌患者血清中溶血磷脂酰胆碱(LPC)水平降低与不良预后相关,其机制可能与LPC抑制PI3K/AKT信号通路有关。靶向代谢通路的治疗策略:从“老药新用”到“新药研发”基于肿瘤代谢靶点富集的研究,多种靶向代谢通路的药物已进入临床应用或研发阶段:1.糖酵解通路抑制剂:2-脱氧-D-葡萄糖(2-DG,己糖激酶抑制剂)是最早进入临床试验的糖酵解抑制剂,与放疗或化疗联合可增强疗效;LDHA抑制剂(如GSK2837808A)在临床试验中显示出对KRAS突变肺癌的活性。2.谷氨酰胺代谢抑制剂:GLS抑制剂CB-839(Telaglenastat)在IDH突变白血病、胰腺癌等临床试验中显示出一定疗效,尤其在联合免疫检查点抑制剂时,可通过减少谷氨酰胺摄取,抑制TAMs的M2极化,增强抗肿瘤免疫。3.脂肪酸代谢抑制剂:FASN抑制剂TVB-2640已完成I/II期临床试验,联合PD-1抑制剂治疗HER2阴性乳腺癌,客观缓解率(ORR)达32%;脂肪酸氧化(FAO)抑制剂Etomoxir在临床试验中显示出对转移性去势抵抗前列腺癌(mCRPC)的疗效。靶向代谢通路的治疗策略:从“老药新用”到“新药研发”4.氨基酸代谢抑制剂:PHGDH抑制剂NCT-503可抑制丝氨酸合成,诱导肿瘤细胞周期阻滞,在临床前模型中与紫杉醇联合具有协同作用;氨基酸转运体抑制剂V-9302(靶向SLC7A5)在临床试验中显示出对胶质母细胞瘤的穿透性和安全性。代谢组学指导的个体化治疗:实现“代谢精准医疗”肿瘤代谢的异质性要求治疗策略需“因人而异”,而代谢组学可通过分析患者特定代谢特征,指导个体化治疗:-药物敏感性预测:通过检测肿瘤组织中的代谢物谱,可预测患者对特定靶向药物的敏感性。例如,卵巢癌组织中甘氨酸水平升高提示对PARP抑制剂的敏感性增加,可能与甘氨酸参与DNA修复有关;-治疗反应动态监测:通过液体活检(血液、尿液)检测治疗过程中代谢物的变化,可实时评估疗效。例如,接受GLS抑制剂治疗的胰腺癌患者,若血清中谷氨酰胺水平持续升高,提示药物敏感性降低,需调整治疗方案;-耐药机制解析:代谢组学可揭示耐药相关的代谢重编程。例如,奥希替尼(EGFR抑制剂)耐药的非小细胞肺癌中,脂质合成通路显著激活,此时联合FASN抑制剂可逆转耐药。04挑战与展望:从“单一维度”到“系统整合”的未来方向挑战与展望:从“单一维度”到“系统整合”的未来方向尽管肿瘤代谢组学与靶点富集的关联研究取得了显著进展,但仍面临诸多挑战,未来需从多维度进行突破。当前面临的主要挑战1.代谢组学技术的局限性:现有技术难以全面覆盖所有代谢物(如不稳定代谢物、低丰度代谢物),且样本处理过程中的代谢物降解(如ATP被ATP酶快速分解)可能导致数据偏差;012.肿瘤代谢异质性的复杂性:单细胞代谢组学技术虽已兴起,但仍面临灵敏度低、通量不足等问题,难以解析肿瘤内部不同细胞亚群的代谢差异;023.代谢网络建模的不足:现有代谢模型(如GENOME、Recon)多基于正常细胞,对肿瘤代谢网络的动态性与调控逻辑的模拟仍不完善;034.临床转化的瓶颈:代谢靶向药物常面临“选择性差”“毒性大”等问题,如2-DG在临床试验中可导致高血糖、神经毒性等副作用,限制了其广泛应用。04未来研究方向与展望1.多组学整合分析:联合代谢组学、基因组学、蛋白质组学、转录组学数据,构建“多维度肿

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