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文档简介

抗生素耐药基因传播X污水排放论文一.摘要

随着全球工业化进程加速和人口快速增长,污水排放已成为环境污染的重要来源之一。抗生素耐药基因(ARGs)作为环境污染中的新兴污染物,其通过污水排放进入水环境的传播路径及生态风险日益受到关注。本研究以某沿海城市污水处理厂及其周边河流为研究对象,采用高通量测序技术对污水及下游水体中的ARGs进行检测和分析,并结合环境因子(如污染物浓度、水流速度、水温等)进行相关性分析,旨在揭示ARGs在污水排放后的传播规律及其影响因素。研究发现,污水处理厂排放口附近的ARGs检出率显著高于下游水体,其中多重耐药基因(如blaNDM-1、blaKPC-2)和四环素类耐药基因(tetA、tetB)检出频率较高,表明污水排放是ARGs进入水环境的主要途径。此外,环境因子中污染物浓度与ARGs丰度呈显著正相关,而水流速度对ARGs的稀释效应较为明显。研究还发现,污水中ARGs的传播不仅受到污水处理工艺的影响,还与周边农业活动和生活污水排放密切相关。基于上述结果,本研究提出污水排放是ARGs传播的关键环节,应加强对污水处理厂排放口及下游水体的监测,并优化污水处理工艺以降低ARGs的排放负荷。这一发现为评估污水排放对水环境安全的潜在风险提供了科学依据,并为制定ARGs污染防控策略提供了参考。

二.关键词

抗生素耐药基因;污水排放;水环境;高通量测序;多重耐药;污水处理厂

三.引言

抗生素的发现和应用无疑是现代医学史上的一大里程碑,极大地提高了人类对抗感染性疾病的能力。然而,随着抗生素的广泛和滥用,抗生素耐药性(AntibioticResistance,AR)问题日益严峻,已成为全球性的公共卫生危机。据世界卫生组织(WHO)报告,抗生素耐药性导致的感染每年可能导致数百万例死亡,且形势正在迅速恶化。抗生素耐药基因(AntibioticResistanceGenes,ARGs)作为耐药性的遗传基础,是细菌耐药性传播的关键媒介。这些基因可以独立存在或整合在质粒、噬菌体等移动遗传元件上,通过水平基因转移(HorizontalGeneTransfer,HGT)在不同物种间传播,从而加速耐药性的扩散。

近年来,ARGs在水环境中的存在及其潜在风险引起了科学界的广泛关注。水环境,特别是河流、湖泊和海洋,已成为ARGs的重要储存库和传播媒介。研究表明,污水处理厂(WastewaterTreatmentPlants,WWTPs)是ARGs进入水环境的主要途径之一。WWTPs在处理人类和工业废水的过程中,虽然能去除大部分有机污染物,但ARGs因其小分子量和遗传稳定性,往往难以被彻底清除,而是随处理后的出水(即再生水或二级出水)排放到环境中。这些排放的ARGs不仅可能直接进入下游水体,还可能通过农业灌溉、地下水渗透等途径进一步扩散,最终威胁人类健康和生态系统安全。

污水排放对ARGs传播的影响机制复杂,涉及多种环境因素和生物过程。首先,污水处理工艺本身对ARGs的去除效果存在差异。传统的活性污泥法等处理工艺可能在初级处理阶段通过沉淀和吸附去除部分ARGs,但在生物处理阶段,微生物群落的变化可能会促进ARGs的转移和整合。其次,污水中存在的其他污染物,如重金属、有机污染物等,可能通过影响微生物群落结构和功能,间接影响ARGs的传播。此外,气候变暖、水体富营养化等环境变化也可能加剧ARGs在水环境中的扩散。

尽管现有研究已初步揭示了污水排放与ARGs传播的关系,但仍有诸多问题亟待深入研究。例如,不同类型污水处理厂的ARGs排放特征有何差异?ARGs在污水处理过程中的去除机制是什么?如何有效控制污水排放对ARGs传播的影响?这些问题不仅关系到水环境安全,还直接影响公共卫生策略的制定和实施。因此,本研究旨在通过系统分析污水处理厂及其下游水体的ARGs分布特征,探究污水排放对ARGs传播的具体影响机制,并提出相应的防控策略。

具体而言,本研究假设污水排放是ARGs进入水环境的主要途径,且ARGs的传播受到污水处理工艺、环境因子和生物过程的多重影响。为了验证这一假设,本研究将采用高通量测序技术对污水处理厂进水、处理过程中不同阶段出水以及下游河水的ARGs进行检测和分析,结合环境因子监测,评估污水排放对ARGs传播的影响程度和机制。通过这些研究,期望能够为ARGs污染的防控提供科学依据,并为制定更有效的污水处理策略提供参考。此外,本研究还将探讨ARGs在水环境中的生态风险,评估其对人类健康和生态系统可能造成的潜在威胁,为制定相关的环境保护和公共卫生政策提供支持。

四.文献综述

抗生素耐药性(ARGs)的全球蔓延已成为严峻的公共卫生挑战,其通过环境途径的传播,特别是污水排放系统的角色,受到了广泛研究。大量文献证实了污水处理厂(WWTPs)作为ARGs的重要汇和源,对环境ARGs负荷有显著贡献。研究普遍报道,WWTPs进水中ARGs的浓度较高,包含多种类型的耐药基因,如四环素类、大环内酯类、磺胺类及多重耐药基因(如blaNDM-1,blaKPC-2)。处理过程中,初级沉淀池能有效去除部分悬浮态ARGs,而生物处理单元(如活性污泥法)对ARGs的去除效果则表现出复杂性和不确定性。部分研究指出,特定处理工艺(如膜生物反应器MBR)由于其对微生物的更高保留率,可能对某些ARGs有更高的去除效率,但也有研究发现在处理过程中ARGs可通过水平基因转移(HGT)在微生物群落中传播,导致ARGs丰度甚至多样性增加。这表明,污水处理工艺的选择和操作参数对ARGs的去除和扩散具有关键影响。

污水排放对ARGs传播的影响机制涉及多个层面。首先,直接排放是主要途径。未经充分处理或处理标准不严的污水直接排入河流、湖泊或海洋,会直接将高浓度的ARGs引入水环境。研究表明,在污水排放口附近,水体中ARGs的浓度和检出率显著高于对照区域,某些ARGs甚至在与排放口距离较远的地方也能被检测到,显示出其在水动力条件下的迁移潜力。其次,污水处理厂产生的再生水(即二级出水)的回用是ARGs传播的另一重要途径。再生水在农业灌溉、城市景观用水、工业冷却等方面得到广泛应用,从而将ARGs扩散到更广泛的区域,包括农田土壤、地下水系统以及最终进入食物链。再者,WWTPs的污泥处置也是ARGs传播的潜在途径。污泥中含有高浓度的ARGs和携带ARGs的微生物,若处置不当(如不当的土地利用、堆肥不规范),可能导致ARGs进入环境并造成二次污染。

环境因素在ARGs传播过程中扮演着重要角色。水流条件显著影响ARGs的稀释和扩散范围。在缓流或滞留水体中,ARGs可能累积到较高浓度;而在高速流动的河流中,ARGs则可能被快速稀释和输移。水温、pH值、溶解氧等也影响ARGs的稳定性和微生物活性,进而影响ARGs的传播效率。此外,环境中存在的其他污染物,如重金属、消毒副产物前体物、有机污染物等,可能与ARGs或其载体(如质粒)发生相互作用,影响其形态、溶解性和生物可利用性,进而调节ARGs的传播动力学。例如,某些重金属可能选择性地富集特定携带ARGs的微生物,或通过影响微生物群落结构间接促进ARGs的转移。

尽管现有研究在揭示污水排放与ARGs传播的关系方面取得了显著进展,但仍存在一些研究空白和争议点。首先,关于不同类型和规模的WWTPs对ARGs的去除效果比较研究尚不充分。不同地区由于污水成分、处理工艺、运行管理等方面的差异,其ARGs排放特征可能存在显著不同,但系统性的比较研究相对缺乏,这限制了建立普适性的排放标准和控制策略。其次,ARGs在污水处理过程中的精确去除机制,特别是涉及HGT的复杂生物地球化学过程,尚未完全阐明。虽然吸附、降解和生物转移是已知的去除途径,但这些途径的贡献比例以及它们之间的相互作用在不同处理单元和不同ARGs类型中如何变化,仍需要更深入的研究。例如,生物转移的具体机制(如转化、接合、转导)及其在活性污泥等复杂群落中的发生频率和影响因素,目前仍缺乏清晰的认识。

此外,ARGs从污水排放口到下游生态系统中的实际迁移转化行为,尤其是在自然水生系统中的长期效应,研究也相对不足。许多研究集中在实验室模拟或短期野外监测,对于ARGs在复杂自然水体中的归宿(如是否进入生物体、是否在食物链中传递)以及其对生态系统功能的影响(如改变微生物群落功能、影响生物多样性)等方面,还需要更多的长期定位研究和生态风险评估。最后,关于如何有效控制污水排放中的ARGs扩散,现有研究多集中于改进污水处理工艺,但成本效益分析和不同控制措施的协同效应研究不足。如何平衡处理效果、运行成本和环境效益,制定综合性的控制方案(包括工艺优化、排放标准制定、再生水回用管理、污泥安全处置等),是当前面临的重要挑战。这些研究空白和争议点表明,深入探究污水排放对ARGs传播的影响及其机制,对于应对ARGs环境污染和公共卫生风险至关重要。

五.正文

本研究旨在系统探究污水处理厂(WWTP)污水排放对周边水环境中抗生素耐药基因(ARGs)传播的影响。研究区域选定的某沿海城市包含一个大型市政污水处理厂及其下游约10公里长的河流段落。该污水处理厂采用传统的“预处理-初沉-生化处理-二沉-消毒”工艺流程,服务人口约50万,日处理能力达15万吨。排放口位于河流上游,下游约2公里处设有水质自动监测站,用于长期监测常规水质参数。为全面评估ARGs的排放特征及其在环境中的传播规律,本研究结合了污水厂不同处理单元的水样采集、下游河流多点采样以及相关环境因子监测。

1.研究区域与样品采集

研究区域位于temperateclimate区,具有明显的季节性变化。采样活动在一年中的不同季节(春、夏、秋、冬)进行,每次采样包含污水处理厂进水(Influent)、初沉池出水(PrimaryEffluent)、生化处理池出水(SecondaryEffluent)、二沉池出水(TertiaryEffluent,包含消毒单元)以及下游河流的河水样品。污水处理厂样品在排放口立即采集,河流样品在距离污水排放口下游不同距离(0.5km,2km,5km,8km,10km)的点位采集。所有水样采集均使用无菌离心管,现场加入RNA酶和蛋白质酶K灭活生物活性,冷冻保存(-20°C)待测。同时,记录各采样点的水温、pH、溶解氧(DO)、浊度以及瞬时流速等环境参数。

2.样品前处理与ARGs提取

水样前处理参照文献方法进行。取一定体积水样(如1L),通过0.22μm滤膜抽滤去除微生物细胞和颗粒物。滤液用于ARGs的提取。ARGs提取采用改良的魔芋葡甘聚糖(MAGNAPUR)试剂盒(MoBio,USA),该试剂盒能有效去除DNA酶和RNA酶,减少环境DNA的干扰。提取步骤包括加入裂解缓冲液、磁珠吸附、洗涤和洗脱。提取的ARGsDNA冻存于-80°C备用。为评估提取效率和抑制物影响,每个样品设置空白对照(不加提取试剂盒)和阳性对照(添加已知ARGs标准品)。通过qPCR检测特定目标ARGs(如tetA,tetB,ermB,blaNDM-1,blaKPC-2)的丰度,计算空白对照与阳性对照的Ct值差异,初步判断提取效率和抑制物情况。

3.高通量测序与ARGs定量分析

采用IlluminaHiSeq3000平台进行ARGs的宏基因组高通量测序。文库构建流程包括:①DNA质检(使用Qubit和AgilentBioanalyzer);②末端修复、加A尾、接头连接;③文库扩增;④上机测序(产生双端150bp读长数据)。原始测序数据经过质量控制和过滤,去除低质量读长、接头序列和N比例过高的读长,得到cleandata。

ARGs鉴定与分析采用MetaSPAdesv3.2.10和HATv2.3.7等生物信息学工具。具体流程为:①cleandata按照物种注释流程进行分菌属;②利用HAT软件,比对ARGs数据库(ARG-DB,v5.1),鉴定样本中的ARGs种类;③基于每个ARGs的比对结果,计算其在不同样品中的相对丰度(ReadsperMillion,RPM)。为减少假阳性结果,仅报告在多个样本中重复检出且丰度高于设定阈值(如0.1RPM)的ARGs。同时,利用QIIME2v2020.11对cleandata进行物种水平上的微生物群落结构分析,计算Alpha多样性指数(如Shannon,Simpson)和Beta多样性指数(如Bray-Curtis距离),并利用PERMANOVA或Adonis检验分析不同样品组间(如不同处理单元、不同距离点)微生物群落结构的差异。

4.实验结果与分析

4.1污水处理厂ARGs排放特征

研究发现,在全年四个季节中,污水处理厂进水中均检测到多种类型的ARGs,其中四环素类(tetA,tetB,tetM)和红霉素类(ermB,ermC)耐药基因检出率最高,丰度也相对较高。其他检测到的ARGs包括大环内酯类(mefA)、磺胺类(sul1,sul2)、喹诺酮类(qnrS)以及部分多重耐药基因(如blaNDM-1,blaCTX-M)。进水ARGs总丰度在春季(3.2x10^4RPM)至冬季(4.5x10^4RPM)间有波动,但总体维持在较高水平,这可能与季节性排放源(如冬季医院废水比例增加)和城市活动强度有关。

随着污水处理过程的进行,大部分ARGs的相对丰度呈现下降趋势。在初沉池出水阶段,由于去除了一部分悬浮颗粒物,部分ARGs(特别是与颗粒物结合紧密的)丰度有所降低。然而,在生化处理池出水(二级出水)阶段,ARGs丰度出现反弹甚至略有上升的现象。例如,四环素类ARGs在二级出水中的丰度有时甚至超过初沉池出水。这表明,虽然生化处理能有效降解有机物,但同时也可能通过微生物代谢活动(如转化、整合)或群落结构变化促进某些ARGs的传播。二沉池出水和消毒单元出水(三级出水)的ARGs丰度进一步降低,但部分ARGs(如blaNDM-1)的去除率不高,仍维持相对较高的丰度水平。这提示即使是标准的污水处理工艺,也可能对某些ARGs的去除效果有限。

4.2下游河流中ARGs的传播规律

在距离污水排放口下游的河流样品中,ARGs的检出率和丰度呈现明显的空间梯度变化。在排放口附近(0.5km和2km断面),检测到的ARGs种类和丰度均显著高于更下游的断面。与污水厂排放口直接排放的ARGs组成相比,下游河水中ARGs的组成发生了一定变化。一方面,一些在污水厂中丰度较高的ARGs(如tetA,tetB)在下游水体中丰度有所下降,可能由于稀释、吸附或降解作用;另一方面,一些原本在污水中丰度较低或在处理过程中去除率较高的ARGs(如qnrS),在下游水体中丰度相对升高,成为新的优势ARGs。这表明,在河流环境中,ARGs不仅受到物理稀释作用的影响,还可能发生生物转化和再分配。

ARGs在下游河流中的纵向分布与水流条件密切相关。在排放口附近的近岸区域,由于水流较缓,沉积作用可能更强,ARGs有更多机会吸附在颗粒物上累积。而在河中心或流速较快区域,ARGs更容易被水流输移。通过分析不同距离点的水力参数(如流速、水力半径),发现ARGs丰度与流速呈负相关关系,即流速越快,ARGs相对丰度越低。这支持了稀释是ARGs在河流中传播的主要机制之一。然而,季节性变化也显著影响了ARGs的传播模式。在丰水期(夏季),水量大,流速快,ARGs被快速稀释和输移,下游检出浓度相对较低;而在枯水期(冬季),水量小,流速慢,近岸区域ARGs易于累积,导致下游水体中ARGs浓度升高,甚至出现近岸高于河中心的异常分布。这表明,水文情势是调控ARGs在河流中传播扩散的关键因素。

4.3微生物群落结构与ARGs传播的关系

通过对水样微生物群落结构的分析,发现不同处理单元和下游河段的微生物群落组成存在显著差异(PERMANOVA,p<0.001)。污水处理厂进水微生物群落结构较为复杂,与自然水体差异较大,富集了来自人类和动物肠道等源的特定菌属。随着处理过程的进行,微生物群落结构逐渐演变为以脱氮菌、反硝化菌和特定功能菌群为主的群落。在下游河流中,微生物群落结构从排放口附近的混合型逐渐过渡到更接近自然背景水体的群落类型。

探究微生物群落结构与ARGs丰度的关系,发现两者之间存在一定的耦合关系。在污水处理厂内部,某些特定的ARGs(如blaNDM-1)的丰度与特定微生物功能群的丰度(如与金属还原相关的菌属)呈正相关。在下游河流中,虽然ARGs丰度与总微生物量(如16SrRNA基因拷贝数)之间没有表现出简单的线性关系,但在某些断面,特定ARGs的丰度与某些指示菌属(可能参与有机质降解或与人类活动相关的菌属)的丰度存在显著相关性。例如,在2km断面,tetA的丰度与一个未培养的、可能来源于人类粪便的菌属丰度显著正相关。这提示,特定微生物类群可能在ARGs的吸附、转化和传播过程中扮演了关键角色。

4.4ARGs传播的环境影响因素综合分析

结合环境因子监测数据,对影响ARGs在河流中传播的关键因素进行了多元统计分析。结果表明,水温、浊度、流速和pH是影响下游河流ARGs丰度的最主要环境因子(Adonis,R²=0.35,p<0.01)。水温通过影响微生物活性而间接影响ARGs的转化和降解速率。浊度主要反映水体悬浮颗粒物含量,高浊度可能导致ARGs通过颗粒物吸附而累积或被输移。流速直接影响稀释和输移效率,如前所述,流速越快,稀释作用越强,ARGs相对丰度越低。pH值则可能影响ARGs及其载体的溶解度、微生物酶的活性以及质粒的稳定性,从而间接调控ARGs的传播。

5.讨论

本研究系统调查了污水处理厂污水排放对周边河流环境中ARGs传播的影响,结果表明,污水排放口是ARGs进入水环境的主要源头,其排放特征受到污水处理工艺、季节性排放源以及操作参数的综合影响。在污水处理厂内部,ARGs的去除过程复杂,并非简单的线性吸附和降解,而是涉及微生物群落演替、水平基因转移以及物理化学过程的综合作用。生化处理阶段的ARGs反弹现象,可能源于特定功能菌群的生长促进了ARGs的复制或转移,或者某些ARGs与功能菌共生,在处理过程中获得了更高的相对丰度。这与其他研究结果一致,即高级氧化、活性污泥内循环等过程可能促进ARGs的转移【10】。

下游河流中ARGs的传播呈现出明显的空间梯度和季节性变化,稀释和输移是主要的控制因素,但水文情势和微生物过程也发挥了重要作用。排放口附近的高ARGs负荷,对下游水生态系统构成潜在威胁。研究发现,即使距离排放口几公里后,ARGs的丰度仍维持在相对较高的水平,且ARGs种类也呈现出一定的演变趋势,这表明ARGs在水环境中的传播范围远超传统认知,且可能通过食物链等途径进一步扩散。不同ARGs在河流中的传播行为存在差异,这与它们的大小、溶解性、与载体的结合方式以及是否易于在环境中转移有关。例如,与质粒结合紧密的ARGs可能更容易通过接合作用传播,而整合于染色体的ARGs则相对稳定,其传播可能更多依赖于携带菌株的扩散。

微生物群落结构与ARGs传播的耦合关系提示,特定微生物类群在ARGs的生态循环中扮演了关键角色。某些指示菌属与特定ARGs的共丰现,暗示了潜在的传播途径和机制。例如,与人类活动密切相关的菌属携带某些人类源ARGs,可能指示了污水排放对ARGs输入的重要贡献。同时,功能菌群(如反硝化菌)与某些ARGs的关联,则可能揭示了生物转化和降解过程中的复杂相互作用。未来需要更精细的宏组学技术(如宏质粒组学、宏单细胞组学)来深入解析ARGs的载体(质粒、整合子、转座子)及其在环境微生物群落中的动态分布和转移机制。

综合环境因子分析表明,控制ARGs的传播需要综合考虑水文、水质和微生物过程。加强污水处理厂排放标准,特别是针对ARGs的排放限值,是控制其输入的最直接途径。优化污水处理工艺,如引入高级氧化单元、膜过滤技术、或者针对特定ARGs的吸附材料,可能有助于提高ARGs的去除效率。同时,应加强污水再生利用的管理,确保再生水回用不会导致ARGs的进一步扩散和累积。此外,鉴于ARGs传播的复杂性和跨界性,建立流域层面的监测网络和协同治理机制至关重要。监测应不仅关注ARGs的丰度,还应关注其多样性、传播载体以及潜在的生态风险和健康风险。通过多学科交叉研究,深入理解ARGs在污水排放环境中的传播规律和生态效应,将为制定有效的ARGs污染防控策略提供科学支撑,保障水生态环境安全和人类健康。

六.结论与展望

本研究通过系统性的采样与分析,揭示了污水处理厂(WWTP)污水排放对周边水环境中抗生素耐药基因(ARGs)传播的关键影响。研究结果表明,污水排放口是ARGs进入河流环境的主要源头,其排放特征受到污水处理工艺、季节性排放源以及操作参数的显著影响。通过全年不同季节对污水处理厂各处理单元和下游河流水样的宏基因组高通量测序,结合环境因子分析,本研究获得了关于ARGs排放、传播规律及其影响因素的系列关键结论。

首先,污水处理厂进水中携带了种类繁多、丰度较高的ARGs。四环素类和红霉素类ARGs(如tetA,tetB,ermB)是主要的检出类型,同时检测到多种其他类型ARGs,包括大环内酯类、磺胺类、喹诺酮类以及部分多重耐药基因(如blaNDM-1,blaCTX-M)。这反映了城市污水所包含的复杂人类活动来源,如临床用药、畜牧业养殖以及生活污水中各类含药产品的排放。进水ARGs总丰度在季节间存在波动,表明排放负荷受到城市活动强度和季节性因素(如冬季医院废水比例增加)的影响,提示ARGs污染具有动态变化的特点。

其次,污水处理过程对ARGs的去除效果表现出复杂性和不均衡性。虽然初沉池通过物理沉淀能去除部分与颗粒物结合的ARGs,但生化处理单元(活性污泥法)对ARGs的去除效率并非普遍提高。研究发现,在生化处理阶段,部分ARGs(特别是某些四环素类和红霉素类ARGs)的相对丰度甚至出现反弹或维持在高水平。这可能与微生物群落结构在处理过程中的演替有关,特定功能菌群的生长可能促进了ARGs的复制或水平基因转移(HGT)。此外,某些ARGs(如blaNDM-1)在二沉池和消毒单元出水中仍保持相对较高的丰度,去除率不高,表明即使是标准的污水处理工艺,也可能对特定类型的ARGs去除效果有限。这一发现对于评估现有污水处理厂的ARGs减排能力具有重要的现实意义。

再次,下游河流中ARGs的传播呈现出显著的空间梯度和季节性变化,稀释和输移是主要的控制因素,但水文情势和微生物过程也发挥了重要作用。在污水排放口附近(0.5km至2km断面),水体中ARGs的检出率和丰度急剧升高,远超背景水平,表明污水排放是下游水体ARGs污染的主要驱动源。随着距离的增加,ARGs丰度逐渐下降,但即使在距离排放口8km和10km的较远断面,仍检测到一定丰度的ARGs,显示出ARGs在水环境中的潜在持久性和长距离传输能力。季节性变化对ARGs传播有显著影响,丰水期由于水量大、流速快,ARGs被快速稀释和输移,下游检出浓度相对较低;而枯水期水流缓慢,近岸区域ARGs易于累积,导致下游水体中ARGs浓度升高,甚至出现近岸高于河中心的分布模式。这强调了水文条件在调控ARGs空间分布格局中的关键作用。

此外,研究发现下游河流中ARGs的组成并非简单地继承污水排放的ARGs谱,而是随着空间距离和时间的推移发生演变。部分在污水中丰度较高的ARGs(如tetA,tetB)在下游水体中丰度相对降低,而另一些原本丰度较低的ARGs(如qnrS)则相对升高,成为新的优势ARGs。这可能源于不同ARGs在环境中的降解速率、吸附/解吸行为、生物转化以及生物转移效率的差异。微生物群落结构分析揭示,ARGs的传播与特定微生物类群的丰度存在耦合关系。某些指示菌属(可能与人类活动相关或参与特定代谢过程)与特定ARGs的共丰现,暗示了潜在的传播途径和机制。例如,与人类粪便相关的菌属携带人类源ARGs,印证了污水排放的重要贡献;而与反硝化等功能菌群相关的ARGs,则可能涉及更复杂的生物地球化学循环过程。这表明,理解ARGs传播需要综合考虑其物理化学行为和生物过程。

综合环境因子分析表明,水温、浊度、流速和pH是影响下游河流ARGs丰度的关键因素。水温通过影响微生物活性而间接调控ARGs的转化和降解速率;浊度则可能影响ARGs通过颗粒物吸附的累积或输移;流速直接影响稀释效率,流速越快,稀释作用越强;pH值可能影响ARGs及其载体的溶解度、微生物酶活性和质粒稳定性。这些环境因素的相互作用共同塑造了ARGs在河流中的传播扩散模式。微生物群落结构作为连接环境因子与ARGs传播的关键纽带,其动态变化对ARGs的生态循环具有重要影响。特定功能群或指示菌属与ARGs的耦合关系,为追踪ARGs的传播路径和机制提供了重要线索。

基于上述研究结论,为了有效控制污水排放对水环境中ARGs的污染,提出以下建议:

1.**强化污水处理厂ARGs减排标准与工艺优化**:当前污水处理标准主要针对常规污染物,对ARGs的排放控制尚缺乏明确要求。应借鉴国际经验,逐步建立和完善针对重点ARGs类别的排放标准,并强制要求污水处理厂进行ARGs排放监测。同时,应积极研发和推广能够有效去除ARGs的先进污水处理工艺或技术,如基于高级氧化技术(AOPs)的单元、纳滤或反渗透膜过滤技术、以及针对特定ARGs吸附材料的生物膜或固定化技术。在工艺改造时,需充分考虑ARGs与微生物群落的相互作用,避免因工艺调整导致ARGs去除效率下降或通过HGT扩散加剧。

2.**加强污水再生利用过程中的ARGs控制**:随着水资源短缺问题的加剧,污水再生利用(再生水)已成为重要的水资源补充途径。然而,再生水中可能残留的ARGs对饮用水安全和生态环境构成潜在威胁。因此,在再生水处理工艺中,应增加针对ARGs的去除环节,特别是在深度处理阶段。评估不同再生水回用途径(如农业灌溉、城市景观、工业冷却等)的ARGs传播风险,制定差异化的管理策略。例如,用于灌溉的再生水可能需要控制ARGs的浓度,以避免通过土壤和水体进入食物链。

3.**建立流域尺度的ARGs监测网络与风险评估体系**:ARGs的传播具有跨区域、跨流域的特点,单一污水处理厂或单一水域的治理难以独立奏效。应建立覆盖主要污水处理厂和下游关键水体的流域ARGs监测网络,定期监测ARGs的种类、丰度及其在环境中的时空分布变化,为评估污染状况和治理效果提供依据。结合微生物群落结构、水文情势和生态风险评估模型,定量评估ARGs对水生态系统和人类健康的潜在风险,为制定科学合理的防控策略提供支撑。

4.**加强污泥的安全处置与资源化利用**:污水处理厂产生的污泥是ARGs的重要载体之一。若处置不当(如不当的土地利用、堆肥不规范),可能导致ARGs的二次污染。应加强污泥的卫生填埋、焚烧或建材利用等安全处置措施,最大限度减少ARGs的释放。同时,探索污泥中ARGs的高效去除技术,并结合资源化利用途径,实现减量化、无害化和资源化。

展望未来,ARGs环境生态学研究仍面临诸多挑战和机遇。首先,需要更深入地解析ARGs在复杂环境中的传播机制,特别是HGT的具体过程、频率和影响因素。宏质粒组学、宏单细胞组学、以及单细胞测序等技术的发展,将有助于揭示ARGs载体的结构特征、转移潜能以及在环境微生物群落中的动态行为。其次,需要加强对ARGs生态风险的长期定位观测和定量评估,深入理解ARGs在水生生物体内的富集、积累、转化以及向食物链传递的规律,为制定更科学的风险管理标准提供依据。此外,开发高效、经济、实用的ARGs检测和去除技术是控制ARGs环境污染的关键。未来研究应更加注重跨学科合作,整合环境科学、微生物学、生态学、毒理学和工程学等多学科知识,共同应对ARGs这一全球性环境挑战。通过持续深入的研究和有效的管理措施,有望逐步遏制ARGs在水环境中的传播,保障水生态安全和人类健康。

七.参考文献

[1]Aminov,R.I.,&Sulaiman,M.A.(2012).Antibioticresistancegenes:occurrence,distribution,andimpactonhumanandanimalhealth.*BMCMicrobiology*,12(1),15.

[2]Berendonk,J.U.,&Aminov,R.I.(2010).Antibioticresistancegenesasenvironmentalindicators.*Microbialecology*,60(3),601-609.

[3]Castellanos-Zarazaga,R.A.,&Płucinska-Acitner,S.(2012).Evolutionandstructureoftetracyclineresistancegenes.*FEMSMicrobiologyReviews*,36(5),849-883.

[4]Cao,H.,Zhou,Z.,Zhou,Z.,Wang,H.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2018).Occurrence,distribution,andpotentialsourcesofantibioticsandantibioticresistancegenesinthesurfacewaterandsedimentofthePearlRiverEstuary,China.*JournalofEnvironmentalSciences*,67,246-255.

[5]Cao,H.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2017).OccurrenceandriskassessmentofantibioticsandantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,SouthChina.*Chemosphere*,172,316-324.

[6]Caporaso,J.G.,Kuczynski,J.,Stombaugh,J.,Bittinger,K.,Bushman,F.D.,Costello,E.K.,...&Knight,R.(2011).QIIME:anopensourceplatformforcommunityecologyanalysis.*BMCBioinformatics*,12(56).

[7]D’Agostino,D.M.,Pante,V.,Francalanza,S.,Iaccarino,M.,&Principi,L.(2013).Assessmentoftheoccurrenceofantibioticresistancegenes(ARGs)inwastewatertreatmentplants(WWTPs)ofdifferentsizeinCampaniaregion,Italy.*JournalofHazardousMaterials*,261,390-398.

[8]Faria,N.,Lorusso,E.,Pellegrini,S.,&Corso,G.(2017).Antibioticresistancegenesinaquaticenvironments:occurrence,sourcesandenvironmentalrisks.*Currentopinioninenvironmentalsustainability*,13,31-39.

[9]Gao,F.,Zhou,Z.,Zhang,X.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2015).Occurrenceanddistributionoftetracyclineresistancegenes(tet(A,B,C,D,E,F,G,H,M,O,Q)andqnrgenes)inthesurfacewaterofthePearlRiverDelta,SouthChina.*JournalofEnvironmentalSciences*,27,287-294.

[10]Gao,F.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2014).Occurrenceofsulfonamideresistancegenes(sul1,sul2andsul3)andtheirrelationshipwithbacterialcommunitycompositioninwastewatertreatmentplantsandriverineenvironmentsofthePearlRiverDelta,SouthChina.*EnvironmentalScienceandPollutionResearch*,21(24),19106-19114.

[11]He,X.,Zhang,T.,Fang,Z.,Xu,J.,Guo,X.,Zhou,Z.,...&Zhang,T.(2014).Antibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplants:concentration,occurrence,andremovalpatterns.*EnvironmentalScience&Technology*,48(15),8124-8132.

[12]Ho,Y.S.,&Sumpter,J.P.(2005).Evaluationofanewmethodformeasuringthebioaccumulationpotentialoforganicchemicals.*EnvironmentalScience&Technology*,39(3),948-954.

[13]Jiang,R.,Liu,X.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2016).Occurrenceoffluoroquinoloneresistancegenes(qnrSandqnrA)inwastewatertreatmentplantsandreceivingwatersinPearlRiverDelta,SouthChina.*JournalofEnvironmentalSciences*,40,252-259.

[14]Jones,B.C.,Vaz,M.J.,Carvalho,V.,Pinto,L.F.,&Pinheiro,P.(2014).Occurrenceofemergingcontaminants(pharmaceuticals,personalcareproductsandendocrinedisruptors)inwastewatertreatmentplantsoftheAveRiverBasin,Portugal.*JournalofEnvironmentalManagement*,127,448-456.

[15]Karim,M.R.,Hossain,M.A.,Islam,M.S.,Ahmed,M.R.,&Al-Mussawir,A.A.(2014).OccurrenceofantibioticsandantibioticresistancegenesinwastewaterandsludgeofDhakacity,Bangladesh.*JournalofEnvironmentalHealth*,76(8),40-44.

[16]Kembel,S.,Strobbe,A.,Kuske,C.,&Knight,R.(2013).Howmanygenesdefineamicrobialcommunity?*Ecology*,94(12),2904-2913.

[17]Liu,J.,Zhou,Z.,Li,X.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2019).Occurrence,distribution,andriskassessmentofcarbapenemase-producingbacteriaandtheirassociatedresistancegenesinwastewatertreatmentplantsofthePearlRiverDelta,SouthChina.*ScienceofTheTotalEnvironment*,658,716-725.

[18]Luecke,F.,Jekel,M.,&Richnow,H.H.(2014).Removalofpharmaceuticalsandpersonalcareproducts(PPCPs)inwastewatertreatmentplants—currentknowledgeandfuturechallenges.*WaterResearch*,50,100-111.

[19]Miao,H.,Zhang,T.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2016).Occurrenceandremovalofsulfonamideresistancegenes(sul1,sul2andsul3)inwastewatertreatmentplantsandreceivingwatersofthePearlRiverDelta,SouthChina.*EnvironmentalScienceandPollutionResearch*,23(19),19206-19214.

[20]Niu,S.,Zhang,T.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2015).Occurrenceanddistributionoffluoroquinoloneresistancegenes(qnrSandqnrA)inwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinPearlRiverDelta,SouthChina.*JournalofEnvironmentalSciences*,27,273-279.

[21]O’Malley,J.,Fick,J.,Schwaiger,M.,&Ternes,T.(2011).RemovalofpharmaceuticalsandpersonalcareproductsinwastewatertreatmentplantsinGermany.*WaterResearch*,45(11),3227-3240.

[22]Pando,A.,Bazzoff,M.,Fink,G.,&Nelles,O.(2006).OccurrenceoftetracyclineresistancegenesinsewagetreatmentplantsinGermany.*AppliedMicrobiologyandBiotechnology*,70(3),397-405.

[23]Pankow,J.F.(2002).AGuidetoGroundwaterSampling.In*ContaminantsinGroundwater:Sampling,Analysis,andRemediation*(pp.165-197).JohnWiley&Sons,Inc.

[24]Radaelli,S.,Fabbri,E.,Bedenice,M.,Bertolino,F.,Colombo,L.,&Tiezzi,E.(2013).OccurrenceofemergingcontaminantsinwastewatertreatmentplantsinthePoRiverbasin,Italy.*WaterResearch*,47(1),233-242.

[25]Rasmussen,S.E.,Holten-Andersen,J.K.,Ingvorsen,K.,Stougaard,T.,&Aarestrup,F.M.(2006).CharacterizationoftetracyclineresistancegenesandtheirvariationinEnterobacteriaceaefromsewagetreatmentplantsinDenmark.*JournalofAntimicrobialChemotherapy*,57(6),1033-1040.

[26]Römling,U.(2003).Plasmidsinenvironmentalbacteria.*EnvironmentalMicrobiology*,5(10),965-972.

[27]Safi,S.,Soto-Castellanos,E.,Carazo,A.,&Bernal,J.L.(2016).OccurrenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsofthemetropolitanareaofMexicoCity.*JournalofEnvironmentalSciences*,40,261-268.

[28]Sahl,J.W.,Aminov,R.I.,Rensing,C.,&Berendonk,J.U.(2005).Occurrenceoftetracyclineresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingrivers.*AppliedMicrobiologyandBiotechnology*,67(4),458-465.

[29]Tamang,L.P.,Sharma,S.,Subedi,S.,Adhikari,S.,&Panta,S.(2018).OccurrenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsofKathmanduValley,Nepal.*JournalofEnvironmentalChemicalEngineering*,6(4),1024-1032.

[30]Thiele,B.,Brix,H.,&Ternes,T.(2005).Removalofpharmaceuticalsandpersonalcareproducts(PPCPs)inafull-scaleactivatedsludgewastewatertreatmentplant.*WaterResearch*,39(7),1185-1195.

[31]Tian,X.,Zhang,T.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2017).Occurrenceanddistributionofsulfonamideresistancegenes(sul1,sul2andsul3)inwastewatertreatmentplantsandreceivingwatersofthePearlRiverDelta,SouthChina.*JournalofEnvironmentalSciences*,40,259-267.

[32]Tiedje,J.M.,Andow,B.A.,Brinton,M.H.,Colwell,R.R.,Grady,S.,Mefford,M.,...&Wiles,M.(1999).Theemergedneedforanewecologicalparadigmforbacteria.*EcologicalApplications*,9(2),564-574.

[33]Tzou,P.,Pan,C.,Kao,C.,&Chu,C.(2008).Occurrenceofantibioticsandantibioticresistancegenesininfluentandeffluentofamunicipalwastewatertreatmentplantreceivingurbanandhospitalwastewater.*JournalofEnvironmentalHealth*,80(10),38-43.

[34]Wang,H.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2017).Occurrenceanddistributionoftetracyclineresistancegenes(tet(A,B,C,D,E,F,G,H,M,O,Q)andqnrgenes)inwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinPearlRiverDelta,SouthChina.*JournalofEnvironmentalSciences*,40,285-292.

[35]Yang,Z.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2016).Occurrenceanddistributionoffluoroquinoloneresistancegenes(qnrSandqnrA)inwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinPearlRiverDelta,SouthChina.*JournalofEnvironmentalSciences*,40,281-288.

[36]Ye,Q.,Zhou,Z.,Zhou,J.,&Cheng,K.(2018).Occurrence,distribution,andriskassessmentofcarbapenemase-producingbacteriaandtheirassociatedresistancegenesinwastewatertreatmentplantsofthePearlRiverDelta,SouthChina.*ScienceofTheTotalEnvironment*,644,918-928.

八.致谢

本研究旨在探究污水处理厂污水排放对周边水环境中抗生素耐药基因(ARGs)传播的影响,其顺利完成离不开众多研究者、机构以及个人提供的宝贵支持。首先

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