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文档简介

现代生化分离技术 Separation Methods in Biochemistry,2,第二章 生物样品前处理,第二章 生物样品前处理,3,第二章 生物样品前处理,第一节 样品分离的预提取 第二节 细胞的破碎与分离,第一章 绪论,4,第二章 生物样品前处理,第一节 样品分离的预提取(前处理),前处理的目的:对目标组分进行初步富集,对干扰成分进行去除;,2.1.1 概述,预处理材料的种类和特点,动物细胞反应液 植物细胞反应液 微生物细胞反应液 植物组织提取液 动物组织提取液,“发酵液” “产物”,胞内or胞外?,组织,5,第二章 生物样品前处理,2.1.2 植物组织提取物的制备,植物组织材料来源部位不同,前处理方法不同。 叶片、根、茎清洗去泥沙、灰尘等杂质(-4C -30C低温保存备用); 种子(大豆、莲子)、中药提取的原材料等泡涨,粉碎。,6,第二章 生物样品前处理,一些酶必须从富含酚、多酚的绿叶、水果和其它组织中提取,大量的分类化合物给提取带来困难。在完整的细胞组织中,酶和酚类物质处于彼此隔离的状态,细胞组织被破坏后,彼此接触,很容易发生酶促反应,反应产物苯醌和单宁类还会继续和酶蛋白质反应,破坏目的酶的活性。所以要在预处理阶段去除酚类化合物。,2.1.2.1 植物组织中酶的提取,7,第二章 生物样品前处理,例子:植物组织中二磷酸核酮糖碳酸酶的提取,1. 步骤:,100g新鲜叶片切成小片(打孔器、切片)置入提取液中(稳定酶活性)PVPP预浸泡(不溶性聚乙烯聚吡咯烷酮,可溶性PVP聚乙烯吡咯烷酮,)间歇高速搅拌(充分接触混匀)纱布过滤滤液加入PVPP重复轻搅(重复一次)离心去除PVPP酶粗提液。,8,第二章 生物样品前处理,2. 条件讨论,低温(45度),器皿、溶液预冷、操作要快; 57倍于固形材料的提取液,搅拌不产生气泡(气泡不利于酶活稳定); PH6.57.0,中性,未知蛋白酶要远离等电点; PVPP优良,不溶性; PPO抑制剂,DTT、2-ME; 蛋白酶抑制剂PMSF(苯甲磺酰氟)酒精溶解,剧毒。,9,第二章 生物样品前处理,2.1.2.2 多糖提取,重要活性多糖 步骤:原料粉碎醇醚回流脱脂水提取粗提液 去蛋白策略:Sevag法,蛋白质在氯仿等有机溶剂中变性 TCA法,低浓度的TCA可沉淀蛋白质,离心后即可除去蛋白质。,10,第二章 生物样品前处理,2.1.2.3 细菌重组蛋白的提取,重组蛋白:工程菌可表达大量的重组目的蛋白,40%总蛋白含量,但易形成包涵体(蛋白质以不溶形式包涵在细胞质中)。,11,第二章 生物样品前处理,例:E. coli.中提取重组蛋白,1. 步骤:,酶解菌体细胞:离心收集菌体溶菌酶去核酸(DNase)电泳检测; 清洗包涵体:去除杂蛋白,保证包涵体蛋白不被溶解; 溶解包涵体:释放目的蛋白; 目的蛋白再折叠:恢复活性,12,第二章 生物样品前处理,第二节 细胞的破碎与分离,微生物代谢产物: 胞外产物(氨基酸、细菌碱性蛋白酶、糖化酶等) 胞内产物(大多数蛋白质、类脂) 微生物代谢产物大多数分泌到胞外,但有些目标产物存在细胞内部。目前重组DNA技术,表达的产品(如胰岛素、干扰素、白细胞介素等),都是胞内产物。首先必须将细胞破碎,使产物得以释放,才能进一步提取。,2.2.1 概述,13,第二章 生物样品前处理,2.2.2 常用破碎方法,机械法:珠磨法、高压匀浆法、超声波破碎法、X-press法等;对物料的挤压和剪切作用 非机械法:酶溶法、化学渗透法、冻融法、干燥法等;,14,第二章 生物样品前处理,2.2.2.1 珠磨法,原理:,进入珠磨机的细胞悬浮液与极小的研磨剂(玻功小珠、石英砂、氧化铝d1mm)一起快速搅拌,细胞与研磨剂之间互相碰撞、剪切,使细胞破碎,释放内含物。 玻璃珠(石英砂、氧化铝等研磨剂)+ 细胞悬浮液研磨释放胞内物,15,第二章 生物样品前处理,破碎过程产生热能,要注意热交换,温度控制夹套冷却,实验室预冷器皿; 适用于绝大多数微生物细胞的破碎 高破碎率,但难以实现固液分离,浆状,特点:,16,第二章 生物样品前处理,高压匀浆器; 细胞悬浮液受高压作用快速从针形阀射出经历剪切、碰撞、高压至常压变化后导致细胞壁和细胞膜的破坏释放胞内物,2.2.2.2 高速匀浆法,原理,17,第二章 生物样品前处理,特点,增大压力和破碎次数,对于高浓度的细胞或难破碎的细胞常采用多次循环操作的方法 3060Mpa最佳 易造成堵塞的团状或丝状真菌不适合 较小的革兰氏阳性菌(细胞壁厚20-80nm,肽聚糖成分多40-90%)不适合,18,第二章 生物样品前处理,2.2.2.3 超声破碎法,可听波(次:地震、海啸)2020KHz(超)。 空化现象指超声波在传播过程中与组织中的气核或微气泡相互作用,使其突然爆破,产生巨大的瞬间压力,从而改变组织结构的现象。 空化现象引起的冲击波和剪切力使细胞破碎,工作原理,19,第二章 生物样品前处理,适应于实验室规模的应用(操作简单、液量损失少,可加冰或加冷水) 工作频率25130 KHz 功率正比于破碎效果 细胞浓度低有利于空化泡的形成及爆破,破碎效果好于粘稠液 不同的微生物需采用不同的破碎参数(功率、破碎时间、间隔时间、循环次数),G-G+酵母。 易失活物质不宜用(超声波可促使产生一些化学自由,基因使敏感活性物质失活),可加入保护剂N2、PMSF等,特点:,20,第二章 生物样品前处理,溶菌酶(细菌),-3,3-葡聚糖酶,-1,6-葡聚糖酶,蛋白酶,甘露糖酶,糖苷酶,肽键内切酶,壳多糖酶,细胞壁溶解酶(复合酶),酵母。酶有专一性。 特点: 条件温和,核酸泄出量少,选择性释放产物(可从细胞不同位置) 价格高,限制了大规模应用 通用性差,不同菌种需选择不同的酶,最佳条件不易确定; 产物抑制的存在:在溶酶系统中,甘露糖蛋白酶,葡聚糖葡聚糖酶,2.2.2.4 酶溶法,外加酶,21,第二章 生物样品前处理,将新鲜的生物材料存放于一定的pH和适当的温度下,细胞结构在自身所具有的各种水解酶(如蛋白酶和酯酶等)的作用下发生溶解,使细胞内含物释放出来。 特点: 对不稳定的微生物,易引起所需蛋白质变性。 自溶后,细胞悬浮液粘度上升,过滤速率下降。,自溶法,22,第二章 生物样品前处理,2.2.2.5 化学渗透法,原理:使用某些可以改变细胞壁或膜的通透性(渗透性)的化学试剂,使胞内物质有选择地渗透出来,称为化学渗透法。,23,第二章 生物样品前处理,表面活性物质:促使细胞某些组分溶解,其增溶作用有助于细胞破碎 EDTA螯合剂:与结构中ca2+或Mg2+螯合,使其原有结构破坏而破裂 有机溶剂:甲苯、苯、二甲苯、氯仿、高级醇等,能被细胞壁中的类脂吸收,使胞壁膜溶胀,导致细胞破碎; 变性剂:与水中氢键作用,减弱水的极性,使疏水性化合物溶于水,24,第二章 生物样品前处理,特点,选择性释放产物。可使一些较小分子量的溶质,如多肽和小分子的酶蛋白透过,而核酸等大分子量的物质仍滞留在胞内。 细胞外形保持完整,碎片少,浆液粘度低,易于固液分离和进一步提取。 通用性差,某种试剂只能作用于某种特定类型细胞; 时间长、效率低,胞内物一般释放率不超过80%; 有些化学试剂有毒,在其后产物提取精时,需分离除去。,25,第二章 生物样品前处理,将细胞放在低温下突然冷冻而在室温下缓慢融化,反复多次而达到破壁作用。由于冷冻,一方面使细胞膜的疏水键结构破裂,另一方面胞内水结晶,使细胞内外溶液浓度变化,引起细胞膨胀而破裂。 适用于细胞壁较脆弱的菌体,破碎率较低,需反复多次,此外,在冻融过程中可能引起某些蛋白质变性。,2.2.2.6 反复冻结融化法,原理:,26,第二章 生物样品前处理,使细胞结合水分丧失,从而改变细胞的渗透性。当采用丙酮、丁醇或缓冲液等对干燥细胞进行处理时,胞内物质就容易被抽提出来。 热空气干燥、真空干燥、冷冻干燥,2.2.2.7干燥法,27,第二章 生物样品前处理,X-press法:将浓缩的菌体悬浮液冷却至-25形成冰晶体,利用500MPa以上的高压冲击,使冷冻细胞从高压阀小孔中挤出。细胞破碎是由于冰晶体的磨损,使包埋在冰中的微生物变形而引起的。此法主要用于实验室,适应范围广、破碎率高、细胞碎片粉碎程度低及活性保留率高等优点,但不适应于对冷冻敏感的生化物质。,2.2.2.

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