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实验二 血清球蛋白的分离纯化与鉴定,层析技术 实验原理 实验思路 实验流程及操作注意事项,层 析 技 术,1层析法:又称色谱法,是一种广泛运用的物质分离纯化、分析鉴定技术.,2. 依据:混合物中各组分的理化性质差异吸附力、分子形状、大小、酸碱性或分子极性、分子亲和力以及分配系数。,固定相固定不动 流动相对固定相作单向相对运动,推动样品中各组分通过固定相向前移动。各组分理化性质不同,对流动相和固定相具有不同的作用力,因此在流动相推动样品通过固定相的过程中,通过不断地吸附、解吸、吸附、解吸作用,造成混合物中各组分在固定相中的迁移距离不等,达到分离。,3基本原理:固定相和流动相,4分类: 流动相的物理状态:气相和液相 气液/固,液固/液 方式:纸、薄层、柱 原理:吸附、分配、凝胶、离子交换、亲和、金属螯合、疏水、反相,5凝胶层析 (凝胶过滤、凝胶色谱、分子筛层析、分子排阻层析) 定义:指混合物随流动相流经固定相的层析柱时,混合物中各组分按其分子大小不同而被分离的技术。,基本原理: 固定相:凝胶,惰性三维空间多孔网状结构,故称分子筛,包括琼脂糖、交联葡聚糖、聚丙烯酰胺、琼脂糖-葡聚糖复合凝胶。 流动相:洗脱液,交联葡聚糖凝胶,多聚葡萄糖与环氧丙烷交联而成,网状结构珠状颗粒,商品名为Sephadex G系列 G交联度:G后面的阿拉伯数字表示不同的规格型号,有G-10,G-15,G-25,G-50,G-75,G-100,G-150,和G-200八种,具体含义为凝胶得水值的10倍或吸水量(g)/10g干胶 交联度与孔径大小成反比:交联度越大,孔径越小,吸水性小;交联度越小,孔径越大,吸水性大。因此,“G”反映凝胶的交联程度,膨胀程度及分部范围。,长链状葡聚糖分子间以环氧丙烷连接,凝胶层析的基本原理,样品加于柱上,样品随洗脱液的流动而向下移动,同时作垂直向下运动和不定向扩散运动小分子可进入凝胶空内部,流程长,速度慢,后流出;大分子不能进入凝胶空内部,颗粒间移动,流程短,先流出大小分子彼此分开,l 分子大小不同混合物上柱; 2 洗脱开始,小分子扩散进人凝胶颗粒内,大分子被排阻于颗粒之外;3 大小分子分开: 4大分子行程较短,已洗脱出层析柱,小分子尚在进行中,数学模型,Vo Vi Vt,Vi凝胶孔内水(内水) Vo颗粒间水(外水) Vg凝胶体积 总体积Vt= Vi +Vo+Vg,Kd分配系数:精确衡量混合物中某一待分离成分在凝胶柱内的洗脱行为,反映物质分子进入凝胶颗粒的程度,是溶质分子大小的一个函数 Ve洗脱体积:分离物被洗脱时所用的洗脱液体积 Ve=Vo+KdVi 洗脱曲线:以洗脱体积为横坐标,各物质浓度/吸光度为纵坐标作图,(1)完全被排阻的极端大分子,Ve=Vo,Kd=0 (2)中等分子,Ve=Vo+KdVi,01,影响因素 *层析柱的选择及装填: 柱大小分离样品量 凝胶型号分辨率:各种分子筛的孔隙大小分布有一定范围,有最大极限和最小极限。凝胶分离范围之外的分子,难以分离。如大小不同的两种全排阻分子/完全渗透分子。 *洗脱液:溶解待分离物质,不变性 *加样量:1%5% *凝胶的再生,交联葡聚糖凝胶层析介质的有关技术参数,实验原理,透析及超滤法 盐析、有机溶剂/免疫沉淀 电泳 凝胶层析 离子交换层析 超离心,共性: *生命高分子:透析、超滤、超离心、凝胶层析 *蛋白质溶液是亲水胶体:稳定因素为水化膜和电荷盐析/有机溶剂沉淀 *两性电解质和等电点:pH pI,蛋白质带负电;反之带正电电泳、离子交换层析 *有一定的功能:抗原性 免疫沉淀 个性:蛋白质的分子量、等电点、亲水程度、形状不同,分离依据:蛋白质理化性质的和个性,实验思路,分段盐析去除杂蛋白,凝胶层析脱盐,交联葡聚糖吸水浓缩,醋酸纤维素薄膜电泳鉴定,上午完成,下午完成,先粗后细,分段盐析: 常用中性盐:硫酸铵、硫酸镁、硫酸钠、氯化钠、磷酸钠等。 硫酸铵:温度系数小,溶解度大,蛋白谱广,分段盐析效果好,不易引起变性。溶液pH约4.55.5,可用硫酸/氨水按需要调节pH值。 分段盐析:各种蛋白大小、亲水程度、pI不同,所需的盐浓度、pH也不一样。如清蛋白分子小,亲水性强,需高盐浓度才沉淀,球蛋白分子大,亲水性弱,较低盐浓度即可沉淀。因此调节盐浓度及pH可使各种蛋白质分段沉淀。,实验流程及操作注意事项,影响因素: 温度:温度与溶解度成正比。一般室温即可,少数温度敏感型蛋白质需4度操作,而血红蛋白、肌红蛋白、清蛋白在25度比0度时溶解度低,更易盐析。 pH值:大多数蛋白质在pI时溶解度最低。pH=pI效果更好。 蛋白质浓度:浓度高时产生共沉。盐析前血清加等量生理盐水稀释,控制蛋白质含量在2.5-3.0%。,凝胶层析脱盐:常用透析,需时较长,最好低温。也可用葡萄糖凝胶G-25/50过柱,用时较短。 固定相:sephadex G-25 流动相:pH7.4的0.01M磷酸盐缓冲液(0.9%NaCl) 原理同前,蛋白质大分子,硫酸铵小分子。,浓缩:sephadex G-25吸水,利用高分子性质。,注意事项: 1硫酸铵的滴加,边摇边逐滴加入 2流洗柱子:34个柱长 3上样:转圈滴加,起跑线一致 4防止柱上液层干涸 5洗脱液收集无需分部,用载玻片检测蛋白,无纳氏试剂 6G-25干胶用纸条少量多次加入,液层高0.5ml 7. 用过的G-25干胶倒入收集缸,回收利用。,鉴定:醋酸纤维素薄膜电泳,电泳:带电粒子在电场的作用下,向着与其电性相反的电极移动的现象。 电泳技术:利用电泳现象对混合物进行分离分析的技术。 电泳系统:电泳支持介质、电泳缓冲液、电场,COO- COO- COOH + H+ + H+ Pr Pr Pr + OH- + OH- NH2 NH3+ NH3+ PHPI PH=PI PHPI,电泳用于分离物质的原理:,蛋白质为两性电解质,有一定的等电点,在大于其等电点的溶液中带负电,在电场中向阳极移动,由于各种蛋白质的分子大小与结构不同,所带表面电荷的多少不同,因而在电场中向阳极移动的速度不同。经过一定的电泳时间后可形成许多蛋白质区带,每一个区带代表一组迁移率相近似的蛋白质。,醋酸纤维素薄膜电泳 介质:醋酸纤维素薄膜,纤维素的羟基经乙酰化所形成的纤维素醋酸酯。溶于有机溶剂后涂成薄膜,具均一的泡沫状结构,有强渗透性。 电泳缓冲液:pH8.6的巴比妥缓冲液,清蛋白 1 2 ,清蛋白(albumin,A):3848g/L 球蛋白(globulin,G):1530g/L A/G:正常值1.52.5,【操作步骤】 1点样:取经巴比妥缓冲液浸透的28cm薄膜,滤纸吸去表面多余水分,在无光泽面距一端2cm处用铅笔划一加样线,写上编号。小滤纸片蘸取血清/样品,垂直压在加样线上,待样品渗入薄膜,无光泽面向下平贴在电泳槽支架的盐桥上,静置510分钟平衡。点样端置阴极,盖上盖子。 2通电:接通电源,调节电

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