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文档简介
实验一 质粒DNA的提取、酶切 及琼脂糖凝胶电泳 一 实验目的 掌握碱裂解法分离质粒DNA的基本原理和操作要点。 了解限制性内切酶作用的原理、特点和酶切质粒DNA的试验方法 学习琼脂糖凝胶电泳检测DNA的方法和技术 质粒是一种染色体外能够稳定遗传的因子,具有双链共价闭环结构的 DNA分子。是染色体外小型(1-200kb)的共价、闭合、环状的双链DNA分 子(cccDNA),能自主复制并能稳定遗传的遗传因子。 二 实验原理 培养细菌使质粒扩增 收集和裂解细菌 分离和纯化质粒DNA 共价闭环DNA(cccDNA) 线状DNA(lcDNA) 开环DNA(ocDNA) 三个基本步骤 质粒存的形态 碱裂解法利用宿主菌巨大线状染色体DNA与相对较小的闭 环双链质粒DNA的结构的差异来提取质粒DNA。 碱变性DNA时,线状基因组DNA变性充分而质粒DNA处于拓 扑缠绕的自然状态而不能彼此分开。当去除变性条件时(酸中 和),质粒DNA迅速准确配置重新形成完全天然超螺旋状分子 ,而难于复性的长链线状的基因组DNA则与破裂的细胞壁、细 菌蛋白相互缠绕成大型复合物,被SDS包盖,当K+取代Na+时这 些复合物会从溶液中沉淀下来,附在细胞碎片上一起被离心除 去。 质粒检测: 电泳检测:质粒电泳一般有三条带,分别为质粒的 超螺旋、开环、线型三种构型。 吸光值检测:采用分光光度计检测260nm、280nm波 长吸光值,若吸光值260nm/280nm的比值介于1.71.9之 间,说明质粒质量较好,1.8为最佳,低于1.8说明有蛋白 质污染,大于1.8说明有RNA污染。 型酶识别的DNA序列一般含有46个核苷酸。有的在识 别顺序的对称轴上对双链DNA同时切割产生平末端;有的在识别 顺序的双侧末端DNA双链产生粘性末端。型限制性内切酶需要 Mg2+激活,大部分型酶所识别的序列具有反向对称的结构,或 称为回文结构。 质粒DNA通常都具有一个或多个限制性内切酶酶切识别序 列,可被相应限制性内切酶切出相应数量的切口,从而产生相应 数量的酶切片断。 本实验采用的EcoR和Hind的识别序列和酶切位点分别为 GAATTC 和 AAGCTT CTTAAG TTCGAA DNA在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应。 在碱性环境下,核酸分子之糖-磷酸骨架中的磷酸基团,是呈离子化 状态的,把这些核酸分子放置在电场当中,它们就会向正电极的方向迁移 。由于糖-磷酸骨架在结构上的重复性质,相同数量的双链DNA几乎具有等 量的净电荷,因此它们能以同样的速度向正电极方向迁移。在一定的电场 强度下,DNA分子的这种迁移速度,亦即电泳的迁移率,取决于核酸分子 本身的大小和构型。DNA分子的迁移速度与相对分子质量的对数值成反比 关系,可以近似用于估算分子的大小。 可以分离相对分子质量相同,但构型不同的DNA分子。共价闭环超螺 旋DNA直线DNA开环的双链环状DNA。 DNA分子的大小、琼脂糖凝胶的浓度、DNA的构象、所加电压、 电场方向、嵌入染料的存在、电泳缓冲液的组成。 琼脂糖凝胶分辨DNA片段的范围为0.250kb之间 接含质粒的单菌落于2ml LB Amp+液体培养基中 370C,190rpm振荡培养过夜 取2.0mL菌液入2.0ml的dorf管中 5000rpm、离心5min,弃上清,收集菌体 200uL溶液I+5uLRNA酶悬浮菌体(充分混匀),冰上静置5min 加入400uL溶液II(轻轻混匀),室温静置5min裂解菌体 加入300uL溶液III(轻轻混匀),冰上静置5min质粒DNA复性 三 实验步骤 4 ,10000rpm,离心10min,取700L(注不要吸到沉淀物)上清到一新管 加700L的 氯仿:异戊醇V:V24:1(混匀),冰上静置5min 4 ,10000rpm,离心10min,取500L(注不要吸到沉淀物)上清到一新管 加1.0mL无水乙醇(充分混匀),-20 放置20min 4 ,10000rpm,离心10min ,弃上清 加入500L 70%乙醇,将沉淀悬起 4,5000 r/min离心5min,弃上清(用软纸将管内乙醇吸干)即可。 取实验一中提取的质粒,向其中加入10L灭菌的双蒸水使其充分 溶解,测定其dsDNA浓度。然后按下表进行操作: 实验组实验组 对对照组组(不做) Buffer40 Ecol30 Hind 30 质质粒XX ddH2O10-X20-X 总总体积积2020 充分混匀后于37保温2-3h。 (注最终反应体系中质粒浓度至少达到1.2g/L) 三 实验步骤 制胶 1.0 琼脂糖凝胶 (50ml) 凝胶板的制备 小心加入23lEB,摇匀(污染EB吸头,不宜再回收使用) 点样 样品20l,与4l溴酚兰混匀 ( DNA maker 3l 加入10l水与4l溴酚兰混匀) 电泳稳压 80v,DNA向阳极移动, 大约50-60mi
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