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文档简介
灰黄霉素超声波提取工艺研究(1)【摘要】 目的 探讨超声波提取灰黄霉素的优化工艺条件。方法 用紫外分光光度法(UV)测定灰黄霉素的含量。以灰黄霉素的提取率为评价指标,在单一影响因素考察的基础上,采用正交实验确定超声波提取灰黄霉素的优化工艺条件。结果 超声波提取灰黄霉素的优化工艺条件为:10倍量的丙酮为提取溶剂,功率300W,单次辐射时间3s,间歇时间5s,提取时间40min,灰黄霉素提取率为85.58%。通过验证实验表明,本实验所得工艺条件为优化工艺条件。结论 本实验所得工艺条件可行,具有一定的实际应用价值。 【关键词】 灰黄霉素 超声提取 正交实验 Study on the ultrasonic extraction process of griseofulvin ABSTRACT Objective To study the optimal extraction conditions of griseofulvin by ultrasonic extraction methods. Methods The content of griseofulvin in extractor is determined by UV spectrophotometry and the content of griseofulvin used as quality control criteria. Utilizing orthogonal test to gain an optimum extraction conditions, based on the result of single factor algorithm. Result The best extraction conditions are as follows: the extracting solvent is acetone (10V/W), the power is 300W, the extraction time is 40min, and the ultrasonic radiation time is 3s at a time. The validate experiment indicates that the condition gained by experiment is an optimum one. Conclusion The ultrasonic extraction process of griseofulvin is feasible, and could be used in routine operation. KEY WORDS Griseofulvin; Ultrasonic extraction; Orthogonal experiment 灰黄霉素(griseofulvin)是1939年从灰黄青霉(Penicillium griseofulvin)培养液中得到的一种含氯代谢产物,1958年开始用于临床。1960年中国医学科学院抗生素研究所从我国土壤中得到灰黄霉素的生产菌,并研究试制成功灰黄霉素1。 灰黄霉素是非多烯类抗真菌抗生素,已广泛用于治疗皮肤及角质层的真菌感染。对红色发癣菌、断发癣菌、硫毛发癣菌、小孢子菌和絮状表皮菌等有抑制作用1。临床用于头癣、迭瓦癣、皮肤癣及手(足,甲)癣等体表真菌感染,特别对头癣的疗效显著,国内治愈率在90%以上2。 灰黄霉素是存在于菌丝体内部的抗生素。目前工业上采用溶剂连续浸泡干菌体的提取方法,溶剂大多为丙酮1,3,4。考虑到常规提取所需时间较长,提取率较低,溶剂用量较大,本研究探讨采用超声波技术提取灰黄霉素的工艺,利用超声波的空化5作用、热效应、机械作用破坏菌体细胞壁,使溶剂易于渗透至细胞内,有效成分更多的转移到溶剂中,达到缩短提取时间,提高提取率的目的68。 1 仪器与材料 1.1 仪器 U1810型紫外可见分光光度计(北京普析通用仪器公司),ALC210.4型电子天平(德国Sartorius公司),JY922D超声波细胞粉碎机(宁波新芝生物科技股份有限公司),HF2.5B超声波循环提取器(北京宏祥隆生物技术开发有限公司)。 1.2 材料 灰黄霉素菌体(赤峰制药集团生产,编号:NI88),对照品(中华制药厂产品,纯度为99.8%),丙酮(天津市博迪化工有限公司),95%乙醇(沈阳化学试剂厂),氯仿(天津市博迪化工有限公司),所用试剂均为分析纯。 2 实验方法 2.1 标准曲线的制备 精密称取灰黄霉素对照品25mg,25ml丙酮溶液定容,配制标准溶液(初始浓度1.0mg/ml)。精密量取标准溶液2ml于25ml容量瓶,用95%乙醇定容。取丙酮2ml置于25ml容量瓶中,95%乙醇定容,作为空白溶液。紫外光谱200400nm全波长扫描,在326nm处有最大吸收峰。 精密量取0.2、0.3、0.4、0.5、1.0和1.2ml的标准溶液分别置于25ml容量瓶中,用95%乙醇定容。取丙酮0.2、0.3、0.5、0.4、1.0和1.2ml分别置于25ml容量瓶中,用95%乙醇溶液定容,作为空白对照。在326nm处测其吸光度A值,测定结果计算得回归方程: A=14.782C+0.0017 r=0.9998 2.2 灰黄霉素含量测定 称取灰黄霉素菌体(含水AC。 2.5 优化工艺的验证实验 按优化工艺条件重复3次实验进行验证,结果灰黄霉素的收率平均值为85.58%,表明实验所确定的工艺条件为优化工艺条件。 2.6 超声波循环提取实验 超声波循环提取器中加入丙酮2200ml(10倍),开启搅拌转子,调节转速为1000r/min。缓慢加入菌体220g,待料液完全循环后,开启超声波发射器,按正交实验确定的优化工艺条件(功率300W,单次辐射时间3s,提取时间40min)进行实验,所得提取率为87.65%,略高于验证实验所得提取率。循环放大实验表明该优化工艺条件可应用于灰黄霉素提取。 3 结论 本研究通过正交设计实验,对灰黄霉素的超声波提取工艺条件进行了优化。确定了超声波提取灰黄霉素的优化工艺条件为:10倍量的丙酮为提取溶剂,功率300W,单次辐射时间3s,提取时间40min。验证实验所得提取率为85.58%,超声波循环放大提取实验所得提取率为87.65%,表明了该优化工艺条件应用于灰黄霉素的提取是可行的。【参考文献】 1 Yu W H. New Edited Antibiotic Technology M(新编抗生素工艺学). Beijing: Chinese Building Material Publishing House(北京:中国建材工业出版社),1996:2352 Liu X F, Deng X. Research to enhance solubility of griseofulvin J. Chin J Antibiot(中国抗生素杂志),1999,24(6):4173 Hu G Q, Chen H Y, Liu X W, et al. Study on the solubility of griseofulvin in solvents J. Chin J Antibioti(中国抗生素杂志),2003,28(2):744 Barbara D G, Patrick J, Pascale S. Antisolvent and cosolvent effect of CO2 on the solubility of griseofulvin in acetone and ethanol solutions J. J Supercrit Fluids,2004,29(1):495 Zhao B, Wang Y C, Ou Y P. The application of ultrasonic wave in plant extraction J. Chin Trad Herb Drugs(中草药),1999,30(9):1216 Zhang H H, Qiu A Y, Liu J H, et al. Supersonic extraction for anthraquinone in Chinese Rhubarb J. Chin Trad Patent Med(中成药),2005,27(9):10757 Guo X W. Ultrasonic extraction and application M(超声提取及其应用). Xian: Shaanxi Normal University Press(西安:陕西师范大学出版社),20038 Zhao Q, Li B T, Liu X, et al. Study on strengthening extraction of glycyrrhizic acid by ultrasound field J. Food Sci Technol(食品科技),2000,(5):389 National Pharmacopoeia Committee. Peoples Republic of China pharmacopoeia (Volume II)(中国药典, 第二部)S. Beijing: Chemical industry publishing house(北京:化学工业出版社),2000:231.1.2 发酵制药的基本过程 发酵制药就是利用制药微生物,通过发酵培养,在一定条件下,生长繁殖,同时在代谢过程中产生药物,然后,从发酵液中提取分离、纯化精制,获得药品。菌株选育(mutation and selection breeding)、发酵(fermentation)和提炼(isolation and purification)是发酵制药的三个主要工段。主要过程如下。 工艺过程包括发酵和分离纯化两个阶段。 生产菌种选育与保存:菌种选育使青霉素的产量由最初20单位提高到80000单位以上。优良菌种应该高产、性能稳定、容易培养。 发酵阶段包括生产菌、孢子制备、种子制备、发酵培养,是生物加工工程过程。 孢子制备:保存的菌株,在固体培养基上,复苏,生长产生孢子。 种子制备:将制备的孢子接到摇瓶或小发酵罐内,培养,使孢子发芽繁殖。对于大型发酵,普遍采用2次扩大培养制备种子,最后接入发酵罐。 发酵:将种子以一定的比例接入发酵罐,培养,是生产药物的关键阶段和工序。需要通气,搅拌,维持适宜的温度和罐压。发酵一定周期。期间,取样分析,无菌检查,产量测定。加入消泡剂、酸碱控制pH,补充碳源、氮源和前体,促进产量。 分离纯化阶段包括发酵液处理与过滤、分离提取、精制、成品检验、包装、出厂检验,是化学分离工程过程。发酵液的预处理与过滤:使发酵液中蛋白质和杂质
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